12 de maio de 2020
O objetivo do ensaio de substâncias reativas de ácido tiobarbitúrico é avaliar o estresse oxidativo em amostras biológicas medindo a produção de produtos de peroxidação lipídica, principalmente malondialdeído, utilizando espectrofotometria de comprimento de onda visível a 532 nm. O método descrito aqui pode ser aplicado ao soro humano, lises celulares e lipoproteínas de baixa densidade.
Portanto, o ensaio TBARS é melhor usado para avaliação geral intralaboratorial do estresse oxidativo em amostras biológicas, nas quais os níveis relativos de TBARS são comparados diretamente entre amostras que foram armazenadas e processadas juntas. Esses ensaios têm um custo extremamente baixo de cerca de 3 para testar 96 amostras em comparação com os kits disponíveis comercialmente, que custam cerca de 400, e permitem que apenas um único lote de amostras seja analisado. O método descrito aqui pode ser adaptado para aplicações específicas, incluindo estudos de estabilidade de bioespécimes e aqueles para os quais a adição de antioxidantes ou outros tipos de conservantes de amostra antes da análise é apropriada ou obrigatória.
Para evitar resultados muito variáveis, prepare reagentes frescos, certificando-se de que o pH não seja superior a quatro para os reagentes de cor e remova quaisquer bolhas na placa de inchaço de nidese antes de medir a absorbância. Comece preparando uma solução aquosa a 0,8% de ácido tiobarbitúrico. Prepare uma solução de hidróxido de sódio de cinco molares dissolvendo quatro gramas de esferas de hidróxido de sódio em 20 mililitros de água.
Armazene a solução em um recipiente de plástico. Deve ser preparado na hora para cada lote. Adicione quatro gramas de ácido tiobarbitúrico a 450 mililitros de água deionizada e use uma barra de agitação magnética para dissolvê-lo suavemente.
Adicione lentamente aproximadamente quatro mililitros da solução de hidróxido de sódio em incrementos de 100 microlitros, verificando o pH à medida que as partículas de ácido tiobarbitúrico se dissolvem. Continue adicionando o hidróxido de sódio até que todas as partículas se dissolvam. Verifique se o pH da solução não é superior a quatro com uma faixa de pH, depois leve o volume final para 500 mililitros com água deionizada e armazene a solução aquosa de ácido bárbaro tiobarbitúrico à temperatura ambiente.
Preparar soluções de curva padrão de MDA bis dimetilacetal em tubos de polipropileno com tampa de pressão de dois mililitros. Diluindo a solução estoque de 200 micromolares em água, conforme descrito no manuscrito do texto. Vórtice as amostras.
Rotule os tubos de vidro para as amostras a serem analisadas e, em seguida, adicione 100 microlitros da amostra preparada a cada tubo. Adicione 200 microlitros de 8,1% SDS a cada amostra e gire suavemente o tubo de vidro em movimentos circulares para misturar. Adicione 1,5 mililitros de tampão de acetato de sódio 3,5 molar a cada amostra e, em seguida, adicione 1,5 mililitros da solução aquosa de ácido tiobarbitúrico a 0,8%.
Traga o final em cada tubo para quatro mililitros adicionando 700 microlitros de água deionizada. Tampe bem os tubos de vidro e incuba-os em um bloco de aquecimento ajustado para 95 graus Celsius por uma hora. Cubra os tubos com papel alumínio para evitar a condensação, remova os tubos do bloco e incube-os no gelo por 30 minutos.
Após a incubação, centrifugue as amostras e os padrões a 1.500 vezes G por 10 minutos a quatro graus Celsius. Transfira 150 microlitros de sobrenadante de cada tubo para um poço em uma placa de 96 poços, removendo quaisquer bolhas de ar com a ponta da pipeta. Meça a absorbância das amostras em 532 nanômetros e, em seguida, subtraia a leitura média do absorvente das amostras em branco de todas as outras leituras dos absorventes.
Crie uma curva padrão e use-a para calcular concentrações de amostras desconhecidas. Curvas padrão de MDA bis dimetil acetol foram geradas para determinar os limites de detecção e sensibilidade do ensaio e os níveis de oxidação em três amostras biológicas diferentes. Um total de 9 ensaios TBARS foram realizados nas três amostras em dias diferentes.
Para determinar os limites de detecção, a absorbância das amostras em branco foi medida em três dias diferentes. A concentração mínima de substância TBARS necessária para fornecer um sinal não absorvente de ruído detectável é de 1,1 micromolar. E a sensibilidade do ensaio é de cerca de 0,0016 unidades absorventes por aumento micromolar na concentração.
O ensaio TBARS pode ser usado para detectar alterações na peroxidação lipídica de várias matrizes biológicas. Para demonstrar isso, dois cloretos de cobre foram usados para induzir a oxidação in vitro de lisados de células HEPG2 séricas humanas e lipoproteínas de baixa densidade. Um ensaio TBARS foi realizado em amostras de LDL contendo EDTA e os níveis de TBARS não mudaram entre as duas amostras de cobre tratadas e não tratadas de LDL.
No entanto, após a remoção do EDTA por filtração por spin, o LDL sofreu oxidação mediada por cobre dois. Para ilustrar a faixa dinâmica do ensaio TBARS no soro humano, uma concentração de dois íons milimolares de cobre foi adicionada às amostras, o que resultou em um aumento de seis a sete vezes no TBARS. Ao tentar este protocolo, não deixe as amostras no gelo por mais de 10 minutos e deixe-as em temperatura ambiente após a centrifugação.
Para lotes ou subconjuntos de bioespécimes que não foram originalmente coletados, processados e armazenados juntos, deve-se avaliar estatisticamente os dados para efeitos de lote para garantir que a oxidação artificial não contribuiu para os resultados. A oxidação invitro quantificável intencional da lipoproteína de baixa densidade torna possível entender como a oxidação afeta sua biologia funcional.
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O ensaio de substâncias reativas ao ácido tiobarbitúrico (TBARS) é um método econômico para avaliar o estresse oxidativo em amostras biológicas medindo produtos de peroxidação lipídica. Este método é particularmente útil para comparar níveis relativos de TBARS em amostras processadas juntas.
The TBARS assay provides a cost-effective, intra-laboratory method for relative oxidative stress assessment in biological samples, supporting early discovery workflows where comparative lipid peroxidation data informs target validation and mechanistic de-risking. Its low cost and adaptability enable reproducible screening of compound effects across sample sets, reducing false positives in lead identification. Proper reagent handling and pH control ensure data reliability for go/no-go decisions in preclinical prioritization.
The TBARS assay fits within the discovery continuum from early hypothesis testing to lead identification, providing oxidative stress readouts that help prioritize compounds before preclinical investment.