13 de maio de 2020
Apresentamos aqui um ensaio de fluorescência sensível para monitorar a atividade da apolipoproteína N-aciltransferase usando peptídeo diacilglicerilo e alquino-fosfolipídios como substratos com click-química.
Este protocolo aborda dois aspectos importantes, a caracterização de uma membrana integral essencial, a apolipoproteína aciltransferase de bactérias, e o desenvolvimento do ensaio em formato HDS para triagem de inibidores da enzima. O método é muito sensível e adequado para fins de triagem. Pode contribuir para o desenvolvimento de potenciais novos antibióticos.
Este vídeo ajudará a destacar as etapas críticas deste protocolo, como mistura, vórtice, sonicação, enquanto trabalha com suspensões contendo lipídios e detergentes não homogêneos. Demonstrando o procedimento estarão Karine Nozeret, Aurelia Pernin, ambas bolsistas do meu grupo. Comece preparando a mistura de reagentes para o ensaio de apolipoproteína e aciltransferase ou LNT.
Misture o alcino POPE e a FSL-1-biotina com tampão de reação LNT em tubos de 1,5 mililitro a um volume final de 18 microlitros. Preparar misturas de reagentes triplicados para todas as condições ensaiadas. Sonicar as misturas de reagentes durante três minutos em banho-maria ultrassónico e incubá-las a 37 graus Celsius durante cinco minutos.
Em seguida, adicione LNT ativo ou inativo a uma concentração final de um nanograma por microlitro e pipete para cima e para baixo para misturar. Incube a reação a 37 graus Celsius por 16 horas em um misturador térmico com tampa aquecida. Enquanto isso, prepare uma solução estoque de dois miligramas por mililitro de estreptavidina.
E dilua-o para 10 microgramas por mililitro para criar uma solução de trabalho. Adicione 100 microlitros da solução a cada poço de uma placa de 96 poços. Em seguida, seque os poços ao ar durante a noite, incubando a placa a 37 graus Celsius sem tampa.
No dia seguinte, prepare soluções-mãe de cinco milimolares Azido-FAM, 50 milimolares de TCEP, dois milimolares de TBTA e 50 milimolares de sulfato de cobre pentahidratado. Execute a química do clique adicionando 0,2 microlitros de estoque Azido-FAM, 0,4 microlitros de estoque TCEP e 0,2 microlitros de estoque TBTA aos tubos de reação LNT de 1,5 mililitro. Vortex a solução por cinco segundos.
Em seguida, adicione 0,4 microlitros de sulfato de cobre. Vórtice por mais cinco segundos e incube a reação por uma hora em temperatura ambiente no escuro. Enquanto a mistura química do clique está incubando, lave os poços das placas revestidas com estreptavidina três vezes com 200 microlitros de PBST1.
Transfira 18 microlitros da mistura química do clique para um poço revestido com estreptavidina e adicione 100 microlitros de PBST1 para ligar o produto N-acil-FSL-1-biotina FAM à placa. Adicione fluoresceína de biotina à placa como um controle positivo para a ligação da estreptavidina e leitura de fluorescência. Em seguida, incube a placa em temperatura ambiente por uma hora no escuro, agitando a 300 RPM.
Após a incubação, use uma pipeta eletrônica multicanal para lavar manualmente a placa seis vezes com 200 microlitros de PBST2. Lave três vezes com a pipeta. Lave três vezes com 200 microlitros de PBS e lave mais três vezes.
Adicione 200 microlitros de PBS a cada poço e detecte a fluorescência a 520 nanômetros em um leitor de microplacas. Salve todos os resultados em uma planilha e calcule o desvio padrão para cada reação, bem como os valores P para controles negativos e amostras positivas com um teste T não pareado. O ensaio LNT in vitro descrito aqui usa fosfolipídios contendo um ácido graxo alcino e FSL-1-biotina como substratos para formar alcino FSL-1-biotina.
Após uma reação química de clique com Azido-FAM, este produto torna-se marcado com fluorescência e detectável por espectrometria de fluorescência. As condições de reação foram otimizadas para leitura máxima de fluorescência em 520 nanômetros. Os controles negativos incluíram reações sem enzima, com uma variante inativa da enzima ou com inibidor específico do tiol, MTSES.
A fluoresceína de biotina foi utilizada como controle interno para sinal de fluorescência máxima. Para desenvolver um ensaio de triagem de alto rendimento, as reações foram realizadas diretamente em placas de 384 poços. As etapas de lavagem foram automatizadas e a quantidade de reagentes foi reduzida.
A reação foi sensível e reprodutível com diferença significativa no sinal fluorescente entre o controle negativo e a enzima ativa. Para triagem de alto rendimento, o fator primo Z determina se uma resposta em um ensaio é grande o suficiente para fins de triagem. O fator primo Z médio foi maior que 0,6 para o ensaio LNT realizado em um formato de 384 poços, sugerindo que foi excelente.
O ensaio em tubo neste vídeo foi desenvolvido em um formato de placa múltipla compatível com HDS. Pode ser usado para estudar outras aciltransferases de uma variedade de organismos.
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Este protocolo apresenta um ensaio fluorescente sensível para monitorar a atividade da N-aciltransferase de apolipoproteína. Utiliza um peptídeo diacilgliceril e fosfolipídios alquino como substratos, empregando a química click para detecção.
Ensaios robustos e compatíveis com alto rendimento para enzimas embutidas em membranas, como a apolipoproteína N-aciltransferase (Lnt), são fundamentais para a validação de alvos antibacterianos e para a descoberta precoce de inibidores. Este ensaio fluorométrico baseado em química "click" permite a medição sensível e quantitativa da atividade de Lnt, reforçando a confiança preditiva em campanhas de triagem. Sua compatibilidade com formatos multipoços o posiciona como uma plataforma reutilizável para a identificação abrangente de compostos ativos antibacterianos.
Este ensaio conecta a fase inicial de descoberta à identificação de compostos líderes, fornecendo uma plataforma quantitativa e pronta para triagem em alta escala (HTS) para a triagem de inibidores da Lnt e validação mecanicista.