Name: Quantificação de ácidos humicos e fulvic em minérios humados, DOC, materiais humificados e produtos comerciais que contêm substâncias hínicas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 55 s
Description: Aprenda a quantificação gravimétrica de ácidos húmicos e fúlvicos em amostras ambientais usando extração alcalina. Este método padronizado oferece maior precisão e recuperação em análises de química ambiental.

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Os autores gostariam de reconhecer a Associação Comercial de Produtos Humic (HPTA) por seu apoio no financiamento do trabalho que resultou na padronização dos métodos descritos neste artigo e também Lawrence Mayhew e Drs. Dan Olk e Paul Bloom para suporte técnico durante o trabalho de padronização.

1. Preparação sólida da amostra
<ol><li>Esmague aproximadamente 5 g da amostra a ser analisada, utilizando uma argamassa e pilão, de modo que 100% da amostra esmagada passe por uma malha de peneira padrão dos EUA tamanho nº 200 (ou seja, 74 μm) certificando-se de que o pó está bem misturado.</li>
	<li>Determine o teor de umidade do pó gravimetricamente.<ol>
<li>Pesar um barco de pesagem de alumínio e registrar a massa (Wwb).</li>
		<li>Transfira aproximadamente 2 g de pó de amostra para o barco de pesagem e registe a massa (Wws+wb).</li>
		<li>Coloque o barco de pesagem em forno de secagem por 24h a 102 °C (não ultrapasse 102 °C). Depois de 24 horas, retire o barco de pesagem do forno de secagem e coloque em um desiccador para esfriar por pelo menos 1h.</li>
		<li>Pese e grave a massa do barco de pesagem e pó de amostra seca (Wds+wb).</li>
		<li>Determine o teor de umidade usando a fórmula 1.1. Fórmula 1.1 Teor de umidade de pó de amostra sólida % umidade = (((Wws+wb- Wwb) – (Wds+wb - Wwb)/ (Wws+wb - Wwb)) * 100</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Procedimento de extração
<ol><li>Amostras sólidas<ol>
<li>Pesar aproximadamente 2,5 g do pó de amostra peneirada (Wsamp) em um barco de pesagem de plástico ou alumínio e registrar o peso em quatro locais decimais.</li>
		<li>Carregue a amostra em um cilindro graduado de 1 L e encha o cilindro a 1 L com 0,1 M NaOH (4 g NaOH x L-1).</li>
		<li>Adicione uma barra de mexiça magnética (por exemplo, 5 - 7 cm de comprimento) e mexa rapidamente (ou seja, 300 – 400 rpm) em uma placa de mexida até que a amostra esteja completamente misturada.</li>
		<li>Transfira todo o conteúdo do cilindro graduado em um frasco 1 L Erlenmeyer, evacue o espaço da cabeça do frasco com gás N2 e cubra a abertura do frasco com uma tampa hermética.</li>
		<li>Coloque o frasco de Erlenmeyer em uma placa de mexida e misture a 300 - 400 rpm para 16 - 18 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Amostras líquidas<ol>
<li>Para materiais líquidos, misture bem a amostra tremendo para garantir que o líquido de ensaio seja misturado de forma homogênea. Certifique-se de que qualquer resíduo que possa ter caído no fundo do recipiente esteja completamente misturado.</li>
		<li>Adicione aproximadamente 5 g do líquido de teste, pesado a 4 casas decimais (WTL), a um cilindro graduado em 1 L.</li>
		<li>Encha o cilindro graduado com 0,1 M NaOH para um volume final de 1 L.</li>
		<li>Adicione uma barra de agitação magnética (por exemplo, 5 – 7 cm de comprimento) e mexa rapidamente (por exemplo, 300 - 400 rpm) em uma placa de agitação até que a amostra de ensaio esteja completamente misturada.</li>
		<li>Transfira a mistura para um frasco de 1 L Erlenmeyer, evacue o espaço da cabeça com gás N2 e cubra a abertura do frasco com uma tampa hermética.</li>
		<li>Coloque o frasco de Erlenmeyer em uma placa de mexida e misture a 300 - 400 rpm por 1h. NOTA: Após este ponto, o manuseio de amostras sólidas e líquidas é o mesmo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Remoção de materiais não solúveis de extratos alcalinos
<ol><li>Ao final da agitação, retire o frasco da placa de mexida, transfira a mistura para tubos de centrífugas adequados e centrifugar todo o volume a 4.921 x g por 30 min.</li>
	<li>Colete o supernanato alcalino contendo o HA e fa em um frasco limpo 1 L Erlenmeyer contendo uma barra de agitação magnética. Descarte o material insolúvel. A filtração através da lã de vidro ou papel filtro qualitativo de tamanho de poros de 2,5 μm é recomendada se partículas residuais não forem precipitadas após a centrifugação.</li>
</ol>4. Precipitação e separação de HA de FF
<ol><li>Ao mexer o extrato alcalino a 300 - 400 rpm em uma placa de mexida, insira uma sonda de pH na porção média da solução (verticalmente) e adicione conc. HCl dropwise ao extrato alcalino até que um pH estável de pH 1.0 ± 0.1 seja atingido.</li>
	<li>Uma vez que um pH de pH 1 é atingido e permanece estável, remova a sonda pH do frasco, recupere a barra de agitação, cubra o frasco com uma tampa hermética e deixe o frasco sentar até que o HA precipitado tenha se estabelecido no fundo do frasco. NOTA: O tempo que um HA leva para precipitar e abandonar a solução vai variar dependendo da fonte e quantidade de HA na amostra. Normalmente leva 1-6 h para o HA precipitar totalmente e sair da solução.</li>
	<li>Centrifugar o extrato e precipitado HA em 4921 x g por 1 h. Após a centrifugação, despeje o FF supernante em um Erlenmeyer erlenmeyer limpo e cubra com uma tampa hermética. NOTA: Um tempo de centrífuga mais longo pode ser necessário para embalar o HA firmemente o suficiente para permitir decantar o FF sem a inclusão de qualquer um dos HA precipitados.</li>
	<li>Coloque os tubos de centrífuga em um forno de secagem mantido a 100 °C por 24 h.</li>
	<li>Após a secagem, retire os tubos do forno de secagem e coloque em um desiccador para esfriar até a temperatura ambiente. Após o resfriamento, transfira quantitativamente o resíduo do tubo raspando-o dos lados e do fundo do tubo com uma espátula, transfira para um barco de pesagem tared e registe a massa (WEHA). Este resíduo é o "HA Extraído". NOTA: Se tubos de centrífugas superiores a 50 mL foram utilizados na separação de HA e FF, é conveniente transferir o HA precipitado para tubos de centrífugas resistentes à temperatura de 50 mL para o processo de secagem. Além disso, se houver um secador congelado, o HA precipitado pode ser congelado. A coleta do HA em um estado congelado é mais fácil porque o HA não gruda na lateral dos tubos plásticos e não precisa ser sucateado.</li>
</ol>5. Determinação do conteúdo de cinzas
NOTA: O procedimento para determinação do teor de cinzas das amostras secas de HA e FA é o mesmo. O procedimento que utiliza notação para HA é mostrado.
<ol><li>Transfira aproximadamente 30 mg da HA seca (WHA) para um prato cerâmico limpo e pré-pesado (WCD) que já havia sido seco anteriormente em um forno de secagem a 100 °C e depois resfriado em um dessecador à temperatura ambiente. Depois de registrar a massa combinada do HA ponderado e do prato (WHA+CD), combustão o HA em um forno de muffle por 2 h a 600°C. NOTA: Para cada amostra ha, três réplicas devem ser processadas e o teor médio de cinzas utilizado no cálculo do HA puro.</li>
	<li>Depois de 2h, retire o prato e o conteúdo do forno abafado e coloque em um desiccador para esfriar. Uma vez frio, pese o prato com cinzas (WASH+CD) e calcule a razão de cinzas (Ashrat) usando a fórmula 1.2: Fórmula 1.2 Ashrat = (WASH+CD - WCD) / (WHA+CD - WCD)</li>
</ol>6. Determinação da porcentagem de HA extraído purificado
<ol><li>Determine a massa final do HA puro (WPHA) corrigindo o conteúdo de cinzas usando a Fórmula 1.3: Fórmula 1.3 WPHA = WEHA * (1- Ashrat)</li>
</ol>7. Determinação da concentração (%) de HA pura na amostra de fonte original
<ol><li>Determine a concentração de HA puro usando Fórmula 1.4 e 1.5: Fórmula 1.4: % HA puro em amostra sólida = (WPHA/Wsamp) * 100 Fórmula 1.5: % HA puro na amostra líquida = (WPHA/WTL) * 100</li>
</ol>8. Preparação da coluna para purificação do HFA
<ol><li>Prepare uma coluna de cromatografia de baixa pressão embalada com resina DEX-8 de polimetilmetato. Se a resina não tiver sido usada anteriormente, mergulhe a resina em metanol por 2h e enxágue completamente com H2O desionizado até que todo o metanol seja removido.<ol>
<li>Remova pequenas partículas de resina que flutuam na água neste momento. Se a resina tiver sido usada anteriormente, regenerá-la conforme descrito na seção 10.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Uma vez completamente enxaguado, despeje a resina em uma coluna de cromatografia de vidro de 5 x 25 cm equipada com uma peça final com um frit de 10 μm para suporte de cama de resina. Deixe de 2,5 a 5 cm no topo da coluna para uma solução sem resina para permitir a mistura do FF antes de entrar na cama de resina. Coloque a peça superior na coluna e bombeie H2O desionizado através da parte superior da coluna para embalar a cama de resina DAX-8 usando uma bomba peristáltica.</li>
</ol>9. Isolamento do HFA
<ol><li>Uma vez que a cama de resina esteja embalada, carregue o FF na coluna usando uma bomba peristáltica, sob baixa pressão, através da parte superior da coluna. Use uma vazão de 35 a 40 mL/min. É fundamental que a parte superior da resina na coluna permaneça coberta com solução durante todo o procedimento de carga e lavagem para evitar a secagem da resina e canalização do extrato através do leito de resina.</li>
	<li>Uma vez que a fração fulvic tenha sido completamente carregada na resina, lave a resina com água desionizada, para remover a "fração de fulvic hidrofílico" não adsorvida (HyFF) bombeando-a através da parte superior da coluna usando a bomba peristáltica sob baixa pressão. Use uma vazão de 35 a 40 mL/min. Descarte o efluente contendo HyFF, a menos que seja usado para análise.</li>
	<li>Lave a coluna com H2O desionizado até que a absorção a 350 nm do efluente da coluna seja igual (por exemplo, dentro de 0,015 unidades de absorção) à do H2O desionizado usado para lavar a coluna. Use água deionizada a zero (ou seja, em branco) o espectrômetro.</li>
	<li>Desorb o HFA por eluição traseira bombeando 0,1 M NaOH através da parte inferior da coluna usando a bomba peristáltica. Use uma vazão de 35 a 40 mL/min. Capture o efluente da bomba (o Na-fulvate em um recipiente limpo de tamanho suficiente (por exemplo, 2 L Erlenmeyer). NOTA: A maioria dos adsorbs HFA para o topo da cama de resina DAX-8. A desorção introduzindo o NaOH de 0,1 M da parte inferior da coluna minimiza a quantidade de 0,1 M NaOH necessária para desorb totalmente a FA.</li>
	<li>Todo o HFA foi desordado quando a absorção do efluente da coluna é igual à absorvância de 0,1 M NaOH influente a 350 nm. Use 0,1 M NaOH como o espaço espectrofotométrico em branco. Adicione o efluente levado para verificar a absorção da solução FA desordenada para garantir que toda a FA seja capturada.</li>
</ol>10. HFA desabred por protonação
<ol><li>Passe a solução Na-fulvate, repetidamente, por alimentação gravitacional, através de forte resina de cation H+-exchange (Tabela de Materiais) contida em uma coluna de 5 × 50 cm, com frit de vidro para reter a resina, até que a condutividade elétrica do efluente seja <120 μS/cm, medida com um medidor de condutividade elétrica. Antes de cada passe, a resina H+-exchange requer reforma conforme descrito na Seção 11.<ol>
<li>Para garantir que toda a FA seja removida da resina após a passagem final, lave a resina com água deionizada até que a absorção de efluentes a 350 nm seja a mesma (por exemplo, dentro de 0,015 unidades de absorção) como a água desionizada usada para lavar a coluna. Use H2O deionizado como o espaço espectrofotométrico. Adicione a lavagem e todas as porções de efluentes levadas para verificar a absorvência à solução FA purificada. Para ajudar na remoção de toda a FA, a resina pode ser agitada (por exemplo, usando um copo longo ou vara de plástico) várias vezes.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Concentre a FA em um volume de aproximadamente 15 ± 2 mL usando um evaporador rotativo a 55 °C.</li>
	<li>Transfira completamente o concentrado fa de 15 mL para um tubo de centrífuga de plástico de 50 mL e seque a 60±3 °C para ressecamento constante em um forno de secagem. A secagem congelada é uma alternativa à secagem do forno. Depois de secar transfira o tubo para um desiccador para esfriar.<ol>
<li>Remova a FA do tubo raspando as laterais e o fundo do tubo com uma espátula e pese a FA coletada no papel de pesagem pré-tared. Este material é o "Fa Extraído" (WEFA).</li>
		<li>Determine a razão de cinzas (ASHrat) da FA extraída conforme descrito no Passo 6 para HA e calcule a razão de cinzas usando a Fórmula 1.2. Determine o peso da FA extraída sem cinzas (WPFA) usando a Fórmula 1.3, substituindo o WEFA pelo peso de WEHA. Finalmente determine a % FA pura na amostra usando Fórmula 1.4 substituindo WPFA por WPHA.</li>
	</ol>
</li>
</ol>11. Regeneração de resina DAX-8
<ol><li>Regenerar a resina DAX-8 bombeando 0,1 M HCl (8,33 mL concentrado HCl/1000 mL volume final desionizado H2O) a uma vazão de 35 – 40 mL/min através da parte inferior da coluna até que o pH do efluente seja igual ao pH do influente. Use a bomba peristáltica para bombear todos os reagentes através da coluna DAX-8 durante a regeneração.</li>
	<li>Enxágüe a coluna com água DI bombeando-a para a parte superior da coluna até que o pH do efluente seja igual ao pH do influente (ou seja, água DI).</li>
</ol>12. Regeneração de resina de câmbio H+-cation
<ol><li>Regenerar a resina de troca de cáção H+ em um processo de lote, despejando a resina em um grande béquer (por exemplo, 4 L béquer plástico), enxágue várias vezes cobrindo a resina com DI H2O, misturando e depois derramando a água.</li>
	<li>Cubra a resina com 1 M HCl (83,3 mL concentrado HCl/1000 mL de água DI do volume final). Deixe ficar por um mínimo de 2h com agitação ocasional (por exemplo, uma vez a cada 30 min).</li>
	<li>Remova o excesso de ácido da resina derramando o ácido e cobrindo a resina com água DI. Mexa vigorosamente com uma haste de agitação por 15 s, depois deixe a resina cair para o fundo do frasco e, em seguida, despeje a água. Repita o processo até que a condutividade elétrica da água enxágue esteja ≤ 0,7 μS/cm.</li>
	<li>Coloque a resina regenerada de volta na coluna. Cubra com H2O desionizado para garantir que a resina permaneça molhada entre os usos.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores não têm conflitos de interesse para declarar.

As etapas iniciais de extração e isolamento do HA neste método são relativamente simples. Como o isolamento do HFA envolve cromatografia de coluna, a obtenção de resultados repetitivos vem com estrita adesão aos detalhes de cada etapa e prática. Em particular, a preparação correta das resinas é de importância primária. É extremamente importante que a resina de polimetilmetato DAX-8 seja preparada e embalada adequadamente. A embalagem correta da resina afeta tanto o rendimento quanto a qualidade do HFA. Se a canalização existir, então nem o pré-tratamento (ou seja, acidificação) ou a adsorção do HFA estarão completos, e a separação levará a resultados imprecisos. Se os canais ou espaços da resina forem observados antes do carregamento da amostra, a coluna deve ser removida e abalada para redistribuir as contas de resina, permitindo que elas se instalem sem canais e, em seguida, reembaladas por bombear DI H2O limpo através da resina. Além disso, como mencionado no protocolo, manter um volume de líquido acima da resina ao carregar o FF na resina, permitirá que o FF se misture antes de entrar na resina e resultará em adsorção mais eficaz. Para a forte resina de cation H+-exchange (Tabela de Materiais), a regeneração completa não pode ser apressada. A troca na+/H+ leva tempo e, portanto, isso é melhor feito em um tratamento em massa para que a resina possa ser misturada enquanto é re-acidificada. Misturar a resina enquanto enxagua com DI H2O ajuda a remover o excesso de HCl. Ao aumentar a resina acidificada para remover o excesso de ácido, misturar a resina ajuda a remover o HCl. É extremamente importante remover o ácido ao ponto de atingir uma condutividade elétrica de ≤ 0,7 μS/cm. Se não, o HCL será levado com o HFA.
Finalmente, ao desordenar o HFA da resina DAX-8, uma vez que a absorção do influente é igual à absorção do efluente, é uma boa prática deixar a coluna sentar por algumas horas para ver se algum HFA adicional será liberado. Se assim for, será visto como um amarelamento do líquido acima da resina. Se isso ocorrer, o HFA adicional pode ser removido por desorção contínua até que as absorvências defluentes/efluentes sejam iguais novamente.
Uma das desvantagens do isolamento do HFA é que todo o processo é demorado. A desorção completa do HFA da resina DAX-8 e a remoção completa da resina H+-exchange resultam em um volume significativo de HFA que deve ser reduzido por evaporação rotativa. Isso é definitivamente um gargalo na análise. Em um esforço para reduzir este tempo, a desordenação do HFA da resina DAX-8 usando acetona em vez de 0,1 M NaOH foi sugerida14. Os autores alegaram que, utilizando 50% de acetona como desorbente no lugar de NaOH, obteve-se um resultado semelhante de HFA e o DAX-8 foi adequadamente regenerado e, portanto, a etapa H+-exchange poderia ser eliminada. Esta modificação resultou em um tempo de análise muito reduzido como resultado da diminuição do volume produzido e evaporação rotativa mais rápida de acetona em comparação com a água. Essa modificação merece mais estudos.
Este método limita-se à análise da matéria orgânica que passou pelo processo de humificação, e no caso da turfa e das brasas macias, os novos processos de turfização e de turfização e coalização, respectivamente. A humificação é o processo pelo qual os mortos, principalmente o material vegetal, é decomposto por uma sequência de micróbios que consomem e modificam substratos cada vez mais recalcitrantes. Processos abióticos também participam de reações de decomposição e resíntese. A humificação resulta, em última análise, na produção de materiais relativamente recalcitrantes que compreendem misturas heterogêneas de milhares de moléculas que formam uma gama de peso molecular e conteúdo de carbono, oxigênio e hidrogênio que formam HS. O HS é ainda modificado pela peatificação e pela coalificação. Portanto, este método não é adequado para materiais de plantas que foram modificados por processos químicos. Por exemplo, lignosulfonate é amplamente usado como um adúltero HFA. Lignosulfonate é um subproduto do processo de polpa de sulfite. Portanto, este material não foi produzido pelo processo de humificação. Além disso, existem muitas substâncias que se ligam à resina DAX-8. Por exemplo, a resina DAX-8 tem sido usada para adsorb pesticidas a partir da solução15. Obviamente, pesticidas não são HS. Assim, a vinculação de um material à resina DAX-8 não justifica uma alegação de que se trata de um HFA. Os pré-requisitos são tanto produção por humificação quanto vinculação à resina DAX-8.
À medida que se aprende mais sobre a contribuição dos diversos componentes do SS em diferentes aplicações, pode tornar-se vantajoso para fracionar ainda mais o HS fracionado e, assim, modificar o método nesse caso. Como existe, o método não quantifica o HYFA. No entanto, essa fração também pode ter atividade, por exemplo, na bioestimulação vegetal, onde toda a FF é geralmente aplicada em tratamentos agrícolas em vez de HFA purificada.

As substâncias hínicas (SH) são resíduos dinâmicos que resultam da decomposição microbiana e transformação de tecidos vegetais mortos1,2,3 aumentados com subprodutos microbianos e biomassa3,4,5 através de um processo chamado de humificação6. O HS está presente em solos, águas naturais, sedimentos do lago, turfas, carvão macio e xistos húricos e representam cerca de 25% do carbono orgânico total na terra7. Essas substâncias são misturas complexas de milhares de moléculas únicas que são fracionadas em três frações principais baseadas em suas diferentes solubilidades em soluções fortemente básicas e ácidas. Estas frações são ácidos húlicos (A. ), que compreendem a fração solúvel em alcalina, mas ácida-insolúvel; ácidos fulvic (FAs), a fração solúvel tanto em álcali quanto em ácido; e a fração de humin, que é insolúvel em todos os valores de pH6,8. A fração fulvic (FF) é ainda subdividida nas frações hidrofóbica FA (HFA) e hidrofílica (HyFA). Essas frações são definidas como a parte do FF que se liga a uma resina HIDROfóbica DAX-8 (HFA) e a parte que não se liga à resina (HyFA).
O HS está sendo cada vez mais utilizado na agricultura, onde são amplamente utilizados como bioestimulantes de cultura, na pecuária, em particular como aditivo de ração animal, na mineração em lamas de perfuração, e remediação ambiental como escotinas eletrônicas. A pesquisa sobre o uso de HS em aplicações médicas humanas também está aumentando.
Existem muitos métodos para a quantitação de HA e FA. No entanto, a maioria desses métodos não são nem precisos nem precisos. Por exemplo, os dois métodos mais utilizados para a determinação do HA nos EUA são o método colorimétrico9 e o método do Departamento de Alimentos e Agricultura da Califórnia (CDFA), ambos mostrados para superestimar a quantidade de HA em uma gama de minério e extrato de fontes do oeste dos EUA e Canadá10. O método colorimétrico ou espectrofotométrico é impreciso porque se baseia na absorção de extratos alcalinos que incluem, além de HA, FA e outros cromóforos que todos absorvem no comprimento de onda utilizado e o padrão não é representativo dos materiais que estão sendo testados10. O método CDFA não é preciso porque não fornece concentrações ha em uma base livre de cinzas. Como diferentes minérios possuem diferentes quantidades de cinzas, alguns dos quais são transportados com a extração e o próprio processo de extração adiciona cinzas, este método não fornece um valor preciso para as concentrações de HA10. Em resposta à necessidade de um método preciso e preciso, um procedimento gravimétrico padronizado baseado no detalhado by11 foi publicado em 2014 para abordar a quantitação tanto da HA quanto da FA em uma base livre de cinzas12. Esse método foi então adaptado, com pequenas modificações, pela Organização Internacional para a Padronização (ISO) em 2018 sob fertilizantes e condicionadores de solo como "Determinação das concentrações de ácidos húbicos e hidrofóbicos em materiais fertilizantes"13.
Este artigo descreve o protocolo de extração e quantitação de ácidos húbicos e hidrofóbicos e dá detalhes sobre a precisão e precisão dos dados produzidos a partir do método.

<table><tbody><tr><td>Amberlite IR 120 H+-exchange</td><td>resina Sigma-Aldrich</td><td>10322</td><td>H+ form</td></tr><tr><td>Balança Analítica</td><td>Ohaus</td><td>PA214</td><td>com escudo de vento de vidro</td></tr><tr><td>Centrífuga Beckman</td><td>Coulter</td><td>Allegra X-14</td><td>mínimo 4300 rpm</td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td>Para caber no rotor selecionado</td></tr><tr><td>Cerâmica Cadinhos de Combustão</td><td>Sigma</td><td>Z247103</td><td></td></tr><tr><td>Coluna de Cromatografia para DAX-8</td><td>Diba</td><td>Omnifit 006EZ-50-25-FF</td><td></td></tr><tr><td>Coluna de Cromatografia para IR 120</td><td>Chemglass</td><td>CG-1187-21 2 pol. por 24 pol.</td><td></td></tr><tr><td>Dessecador</td><td>Capitol Scientic</td><td>Kimax 21200-250</td><td>Forno de Secagem a Vácuo Fisher</td></tr><tr><td></td><td>Scientific</td><td>Isotemp</td><td>Precision&plusmn; 3? C</td></tr><tr><td>Medidor de condutividade elétrica</td><td>HM Digital</td><td>EC-3</td><td></td></tr><tr><td>Erlenmeyer Frascos</td><td>Amazon</td><td></td><td>1L, 2L</td></tr><tr><td>HCl concentrado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320331</td><td></td></tr><tr><td>Placa de agitação magnética</td><td>Barnstead-Thermolyne</td><td>Placa de identificação 721</td><td></td></tr><tr><td>Barras</td><td></td><td></td> de agitação magnética <td>Estes podem ser obtidos em muitos pontos de venda</td></tr><tr><td>Mufla Forno</td><td>Fisher scientific</td><td>Thermolyne Tipo 47900</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>795429</td><td></td></tr><tr><td>Gás nitrogênio</td><td>Praxair</td><td>UNI1066</td><td>99,99% de pureza</td></tr><tr><td>Bomba peristáltica</td><td>Cole Parmer</td><td>Masterflex 7518-00</td><td></td></tr><tr><td>Tubo perstáltico</td><td>Cole Parmer</td><td>Masterflex Pharmed 06508-17</td><td></td></tr><tr><td>medidor de pH</td><td>Oakton Instrumentos</td><td>WD-35618--03</td><td></td></tr><tr><td>Evaporador Rotativo</td><td>Buchi</td><td>R-210/R-215</td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotômetro</td><td>Healthcare SCiences</td><td>Ultrospec II</td><td>Feixe duplo 200 a 900 nm com precisão de comprimento de onda de &plusmn; 1 nm e reprodutibilidade de &plusmn; 0,5 nm.</td></tr></tbody></table>

quantificação de ácidos humicos e fulvic em minérios humados, doc, materiais humificados e produtos comerciais que contêm substâncias hínicas

Quantification of Humic and Fulvic Acids in Humate Ores, DOC, Humified Materials and Humic Substance-Containing Commercial Products

O objetivo deste método é fornecer uma concentração precisa e precisa de ácidos húricos (HA) e/ou fulvic (FA) em carvão macio, minérios úmidos e xistos, turfas, compostos e produtos comerciais contendo substâncias húricas. O método baseia-se na extração alcalina de materiais de teste, utilizando 0,1 N NaOH como extrator, e separação das substâncias húlicas solúveis alcalinas (HS) de produtos não solúveis por centrifugação. O pH do extrato alcalino centrifugado é então ajustado para pH 1 com conc. HCl, o que resulta em precipitação do HA. O HA precipitado é separado da fração fulvic (FF) (a fração de HS que permanece em solução,) por centrifugação. O HA é então forno ou congelamento seco e o teor de cinzas do HA seco determinado. O peso do HA puro (ou seja, livre de cinzas) é então dividido pelo peso da amostra e a fração resultante multiplicada por 100 para determinar o % HA na amostra. Para determinar o conteúdo fa, o FF é carregado em uma resina HIDROfóbica DAX-8, que adsorva a fração FA também referida como o ácido hidróbico fulvic (HFA). A fração restante de ácido não fulvico, também chamada de fração de fulvico hidrofílico (HyFF) é então removida lavando a resina com H2O desionizado até que todo o material não analisado seja completamente removido. A FA é então desorbed com 0.1 N NaOH. O Na-fulvate resultante é então protoado passando-o sobre uma forte resina H+-exchange. A FA resultante é forno ou congelamento seco, o teor de cinzas determinado e a concentração na amostra calculada como descrito acima para HA.

Os dados de desempenho do método são fornecidos nas Tabelas 1 – 5. A precisão do método de extração de HA e FAH a partir de amostras comerciais líquidas com concentrações muito diferentes de HA e FHA são dadas na Tabela 1.
Os desvios padrão relativos (RSDs) para HA foram inferiores aos do HFA, mas o RSD médio de HFA sobre as três amostras líquidas foi de 6,83%, o que indica um alto grau de precisão. A razão Horwitz (HorRat) é um parâmetro de desempenho normalizado que indica a adequação de um método de análise em relação à precisão laboratorial. Aqui foi usado para precisão intra-laboratorial. O valor < 0,5 pode indicar uma média não revelada ou um alto nível de experiência com o método. Valores > 2.0 indicam heterogeneidade das amostras de teste, necessidade de otimização de métodos ou treinamento mais extenso, operando abaixo do limite de detecção ou um método inaplicável. Para análise de amostras líquidas, o HorRat foi apenas > 2 para uma das análises do HFA (Tabela 1).
Dados de precisão para a extração de HA e HFA de três amostras de minério húlico são fornecidos na Tabela 2. Novamente, com exceção do HFA extraído do Minério 2 e do HA do Minério 3, todos os HorRat's estavam abaixo de 2. Isso demonstra um alto grau de precisão deste método de extração de HA e HFA para amostras de minério úmido.
Os fabricantes de bioestimulantes vegetais frequentemente formulam produtos que contêm HS, além de outros ingredientes como algas, fertilizantes inorgânicos, carvão ou melaço. A Tabela 3 dá os resultados de uma análise da inclusão desses tipos de aditivos na precisão do método. Nenhum dos aditivos efetuou significativamente a recuperação de HA ou HFA (Tabela 3).
A Tabela 4 e a Tabela 5 relatam as recuperações de HA e HFA, respectivamente, a partir de amostras líquidas que simularam produtos comerciais com concentrações muito baixas. As recuperações foram excelentes e variaram entre 88% e 97% para HA (Tabela 4) e 92% e 104% para HFA (Tabela 5). As recuperações médias de HA e HFA foram de 93% e 97%, respectivamente e % RSD para ambos os HS foram inferiores a 5%. Embora a precisão seja excelente, esses dados indicam a necessidade de realizar réplicas laboratoriais. O limite de detecção do método (MDL) e o limite de quantitação do método foram de 4,62 e 1,47 mg/L para HA e 4,8 e 1,53 mg/L para HFA.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td colspan="8">Substâncias hínicas, %</td>
		</tr>
<tr>
<td>Material</td>
			<td colspan="2">L16</td>
			<td colspan="2">L17</td>
			<td colspan="3">L2</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 1</td>
			<td>1.44</td>
			<td>17</td>
			<td>6.59</td>
			<td>7.76</td>
			<td>0.36</td>
			<td colspan="2">4.46</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 2</td>
			<td>1.39</td>
			<td>16.03</td>
			<td>6.25</td>
			<td>7.79</td>
			<td>0.42</td>
			<td colspan="2">4.93</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 3</td>
			<td>1.34</td>
			<td>16.44</td>
			<td>6.02</td>
			<td>7.55</td>
			<td>0.4</td>
			<td colspan="2">4.46</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 4</td>
			<td>1.54</td>
			<td>16.75</td>
			<td>6.2</td>
			<td>7.69</td>
			<td>0.33</td>
			<td colspan="2">4.53</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significar</td>
			<td>1.43</td>
			<td>16.56</td>
			<td>6.27</td>
			<td>7.7</td>
			<td>0.38</td>
			<td colspan="2">4.6</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">SD</td>
			<td rowspan="2">0.09</td>
			<td rowspan="2">0.42</td>
			<td>0</td>
			<td rowspan="2">0.11</td>
			<td rowspan="2">0.04</td>
			<td colspan="2" rowspan="2">0.23</td>
		</tr>
<tr>
<td>24</td>
		</tr>
<tr>
<td>RSD, %</td>
			<td>6.29</td>
			<td>2.53</td>
			<td>3.8</td>
			<td>1.39</td>
			<td>10.4</td>
			<td colspan="2">4.91</td>
		</tr>
<tr>
<td>Hor Rat(r)</td>
			<td>1.58</td>
			<td>0.72</td>
			<td>1.25</td>
			<td>0.47</td>
			<td>2.31</td>
			<td colspan="2">1.55</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="8">
um As condições de extração foram de 1 g em 1 L 0,1 M NaOH.</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 1. Precisão do método de extração e quantitação de HA e HFA a partir de amostras comerciais líquidas. As condições de extração foram de 1 g em 1 L 0,1 M NaOH.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td colspan="7">Substâncias hínicas, %</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td colspan="2">Minério 1</td>
			<td colspan="2">Minério 2</td>
			<td colspan="2">Minério 3</td>
		</tr>
<tr>
<td>Material</td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
			<td>HFA</td>
			<td>HA</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 1</td>
			<td>1.75</td>
			<td>67.4</td>
			<td>1.31</td>
			<td>27.01</td>
			<td>1.55</td>
			<td>8.95</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 2</td>
			<td>1.69</td>
			<td>67.63</td>
			<td>1.25</td>
			<td>27.48</td>
			<td>1.41</td>
			<td>7.2</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 3</td>
			<td>1.63</td>
			<td>67.1</td>
			<td>1.27</td>
			<td>27.34</td>
			<td>1.47</td>
			<td>8.35</td>
		</tr>
<tr>
<td>Rep 4</td>
			<td>1.77</td>
			<td>67.59</td>
			<td>1.55</td>
			<td>26.89</td>
			<td>1.51</td>
			<td>7.98</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significar</td>
			<td>1.71</td>
			<td>67.53</td>
			<td>1.35</td>
			<td>27.18</td>
			<td>1.49</td>
			<td>8.12</td>
		</tr>
<tr>
<td>SD</td>
			<td>0.06</td>
			<td>0.94</td>
			<td>0.14</td>
			<td>0.28</td>
			<td>0.06</td>
			<td>0.73</td>
		</tr>
<tr>
<td>RSD, %</td>
			<td>3.7</td>
			<td>1.39</td>
			<td>10.33</td>
			<td>1.02</td>
			<td>4.02</td>
			<td>9.02</td>
		</tr>
<tr>
<td>HorRat(r)</td>
			<td>0.99</td>
			<td>0.66</td>
			<td>2.71</td>
			<td>0.42</td>
			<td>1.07</td>
			<td>3.09</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 2. Precisão do método de extração e quantitação de HA e HFA a partir de minérios úmidos. As condições de extração foram de amostra de 1 g em 1 L 0,1 M NaOH. (Dados extraídos de Lamar et al., 2014)
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td>Replicar</td>
			<td>Adulterant</td>
			<td>HA, %</td>
			<td>Fa, %</td>
			<td>Recuperação Relativa HA, %</td>
			<td>Recuperação Relativa HFA, %</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>Nenhum</td>
			<td>81.61</td>
			<td>12.86</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>Nenhum</td>
			<td>80.16</td>
			<td>12.78</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>Alga</td>
			<td>80.21</td>
			<td>12.85</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>Alga</td>
			<td>80.72</td>
			<td>12.79</td>
			<td>99.5</td>
			<td>99.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>Fertilizante</td>
			<td>80.25</td>
			<td>12.98</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>Fertilizante</td>
			<td>79.57</td>
			<td>123.77</td>
			<td>98.8</td>
			<td>101.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>Carvão</td>
			<td>78.79</td>
			<td>12.92</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>Carvão</td>
			<td>81.27</td>
			<td>12.84</td>
			<td>98.9</td>
			<td>101.8</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>Melaço</td>
			<td>79.38</td>
			<td>12.99</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>Melaço</td>
			<td>81.02</td>
			<td>12.72</td>
			<td>99.2</td>
			<td>100.9</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significar</td>
			<td></td>
			<td>80.3</td>
			<td>12.85</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>SD</td>
			<td></td>
			<td>0.885</td>
			<td>0.09</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">
uma concentração final de FA + HA de 2,5 g/L adicionado a 0,1 M NaOH. (dados extraídos de Lamar et al., 2015)</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 3. Efeito de adúlteros na quantitação de HA e HFA de um leonardite Gascoyne. (Dados extraídos de Lamar et al., 2015)
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">HA</td>
		</tr>
<tr>
<td>ID de amostra</td>
			<td>Extraído, mg</td>
			<td>Recuperado, mg</td>
			<td>Recuperado, %</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>24.6</td>
			<td>23.7</td>
			<td>96.3</td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>22.6</td>
			<td>19.9</td>
			<td>88.1</td>
		</tr>
<tr>
<td>3</td>
			<td>25.2</td>
			<td>23.6</td>
			<td>93.7</td>
		</tr>
<tr>
<td>4</td>
			<td>22.5</td>
			<td>21.5</td>
			<td>95.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>5</td>
			<td>23.9</td>
			<td>21.8</td>
			<td>91.2</td>
		</tr>
<tr>
<td>6</td>
			<td>23.2</td>
			<td>20.8</td>
			<td>89.7</td>
		</tr>
<tr>
<td>7</td>
			<td>24</td>
			<td>23.2</td>
			<td>96.7</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significar</td>
			<td>23.7</td>
			<td>22.1</td>
			<td>93</td>
		</tr>
<tr>
<td>SD</td>
			<td>1.01</td>
			<td>1.52</td>
			<td>3.43</td>
		</tr>
<tr>
<td>RSD, %</td>
			<td>4.35</td>
			<td>6.88</td>
			<td>3.67</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">(dados extraídos de Lamar et al., 2014)</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 4. Recuperação de HA de espaços em branco cravados. (Dados extraídos de Lamar et al., 2014)
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">FA</td>
		</tr>
<tr>
<td>ID de amostra</td>
			<td>Extraído, mg</td>
			<td>Recuperado, mg</td>
			<td>Recuperado, %</td>
		</tr>
<tr>
<td>1</td>
			<td>19.9</td>
			<td>19</td>
			<td>95.48</td>
		</tr>
<tr>
<td>2</td>
			<td>23.1</td>
			<td>22.9</td>
			<td>99.13</td>
		</tr>
<tr>
<td>3</td>
			<td>20.7</td>
			<td>19.4</td>
			<td>93.72</td>
		</tr>
<tr>
<td>4</td>
			<td>20.5</td>
			<td>19.8</td>
			<td>96.39</td>
		</tr>
<tr>
<td>5</td>
			<td>20.8</td>
			<td>21.6</td>
			<td>103.85</td>
		</tr>
<tr>
<td>6</td>
			<td>21.9</td>
			<td>20.1</td>
			<td>91.78</td>
		</tr>
<tr>
<td>7</td>
			<td>22.7</td>
			<td>22.3</td>
			<td>98.24</td>
		</tr>
<tr>
<td>Significar</td>
			<td>21.37</td>
			<td>20.73</td>
			<td>96.94</td>
		</tr>
<tr>
<td>SD</td>
			<td>1.21</td>
			<td>1.53</td>
			<td>3.95</td>
		</tr>
<tr>
<td>RSD, %</td>
			<td>5.64</td>
			<td>7.36</td>
			<td>4.07</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">(Dados extraídos de Lamar et al., 2014)</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 5. Recuperação do HFA de espaços em branco cravados. (Dados extraídos de Lamar et al., 2014)

Este método fornece uma quantificação gravimétrica de substâncias umedecidas (por exemplo, ácidos ummônicos e fulvic) em uma base livre de cinzas, em materiais secos e líquidos de carvão macio (ou seja, lignite oxidada e não oxidada e carvão sub-betume), minérios e xistos humate, turfas, compostos e fertilizantes comerciais e solos de alteração.

Quantificação de ácidos humicos e fulvic em minérios humados, DOC, materiais humificados e produtos comerciais que contêm substâncias hínicas

The purpose of this method is to provide an accurate and precise concentration of humic (HA) and/or fulvic acids (FA) in soft coals, humic ores and ...

O novo método padrão de quantitação de ácidos húricos fornece uma análise mais precisa e precisa em comparação com os métodos regulamentares existentes, e também fornece um método padrão para a quantificação pura de ácido hidrábico fulvic. A vantagem deste protocolo é que ele fornece uma análise gravimétrica das concentrações de ácidos ácidos húbicos e hidrofóbicos em uma base livre de cinzas, e o processo de extração foi otimizado para obter as maiores recuperações de ácidos úmidos e fulvic de amostras. Demonstrando o procedimento estará Ryan Fountain, um químico analítico do nosso laboratório de química húmica.Para preparar uma amostra sólida, use uma argamassa e pilão para esmagar aproximadamente cinco gramas da amostra a ser analisada até que 100% da amostra bem misturada possa passar por uma peneira padrão dos EUA, tamanho da malha número 200. Para determinar gravimetricamente o teor de umidade do pó, transfira aproximadamente dois gramas do pó da amostra em um barco de pesagem de alumínio pré-ponderado, e registe a massa do barco e da amostra. Em seguida, coloque o barco de pesagem em um forno de secagem a 102 graus Celsius por 24 horas.No dia seguinte, coloque o barco em um dessecador para esfriar por pelo menos uma hora antes de pesar e registrar a massa do barco de pesagem e da amostra seca, em seguida, use a fórmula para determinar o teor de umidade como indicado. Para realizar uma extração de uma amostra sólida, pesar aproximadamente 2,5 gramas da amostra restante e registrar o peso em quatro locais decimais. Em seguida, carregue a amostra em um frasco de um litro Erlenmeyer e enxágue o barco de pesagem com água deionizada para remover todo o minério.Encha o béquer de um litro com hidróxido de sódio de 0,1 molar e adicione uma barra de agitação magnética de cinco a sete centímetros para facilitar uma agitação rápida da amostra em 300 a 400 revoluções por minuto em uma placa de agitação. Quando a amostra estiver completamente misturada, evacue o espaço da cabeça do frasco com gás nitrogênio, depois sele a abertura do frasco com uma tampa hermética e coloque o frasco em uma placa de agitação para misturar de 300 a 400 rotações por minuto durante 16 a 18 horas. Para extração de material líquido, agite completamente a amostra para garantir que o líquido de ensaio seja homogêneo misturado, incluindo qualquer resíduo que possa ter caído no fundo do recipiente.Pese aproximadamente cinco gramas do líquido de teste e regista o peso em quatro locais decimais. Em seguida, adicione o líquido a um cilindro graduado de um litro e encha o cilindro com hidróxido de sódio de 0,1 molar a um volume final de um litro. Use uma barra de agitação magnética para misturar rapidamente a amostra como demonstrado até que a amostra de teste seja completamente misturada antes de transferir a mistura para um frasco de um litro Erlenmeyer, em seguida, evacuar o espaço da cabeça com gás nitrogênio e agitar o conteúdo do frasco em 300 400 revoluções por minuto durante uma hora, como demonstrado.Para remover materiais não solúveis de extratos alcalinos, no final da incubação de agitação, transfira a mistura para tubos de centrífugas adequados e centrifugar todo o volume da amostra a 4.921x G por 30 minutos à temperatura ambiente. No final da centrifugação, colete o supernanato alcalino contendo o ácido hórico e a fração fulvica, que contém o ácido hidróbico fulvico, em um frasco erlenmeyer limpo de um litro com uma barra de agitação magnética. Para precipitação de ácido húrico da fração fulvic, enquanto mexe o extrato alcalino coletado a 300 a 400 rotações por minuto em uma placa de agitação, insira uma sonda de pH na porção média da solução e adicione o ácido clorídrico concentrado de gota sábia até que um pH estável de pH 1.0 mais ou menos 0,1 seja atingido.Uma vez que o pH esteja estável, remova a sonda e mexa, enxágue-as com água desionizada e sele o frasco com uma tampa apertada de ar. Deixe o frasco sentar-se por uma a seis horas até que o ácido húlico precipitado tenha se estabelecido até o fundo antes de centrifugar o extrato e precipitar ácido húlico a 4,921x G por uma hora. No final da centrifugação, despeje os supernantes contendo frações fulvic em um frasco erlenmeyer limpo de um litro e sele o frasco com uma tampa hermética.Coloque os tubos de centrífuga contendo ácido húrico em um forno de secagem de 100 graus Celsius por 24 horas e certifique-se de que as tampas estejam soltas ou removidas para garantir a secagem. Depois de secar, esfrie os tubos em um desiccador até atingirem a temperatura ambiente. Após o resfriamento, use uma espátula para transferir o resíduo de cada tubo para um único barco de pesagem tared para determinar a massa da amostra de ácido hólico extraído.Para determinar o teor de cinzas dentro da amostra, transfira aproximadamente 30 miligramas do ácido húlico seco para um prato cerâmico limpo e pré-pesado para determinar a massa da amostra de pesar e do prato. Em seguida, combustão o ácido húrico em um forno muffle por duas horas a 600 graus Celsius antes de esfriar o prato no desiccator. Uma vez frio, pese o prato e use a fórmula para calcular a razão das cinzas.Para determinar a massa final do ácido puro húlico, use a fórmula para corrigir o teor de cinzas. Em seguida, use as fórmulas para determinar a concentração de ácido humico puro. Para preparar uma nova coluna de cromatografia de polimetila de baixa pressão DAX8, mergulhe a resina no metanol por duas horas em um béquer antes de enxaguar a resina completamente com água desionizada até que todo o metanol seja removido.Em seguida, remova qualquer pequena partícula de resina flutuando na água. Uma vez completamente enxaguada, despeje a resina enxaguada ou regenerada em uma coluna de cromatografia de vidro de 5 por 25 centímetros equipada com uma peça final com um frit de 10 mícrons para suporte à cama de resina, deixando de 2,5 a 5 centímetros na parte superior da coluna e substitua a peça superior na coluna. Para reformar uma resina usada anteriormente, ou preparar uma nova resina recém-lavada, use a bomba peristáltica para bombear ácido clorídrico de 0,1 molar a uma taxa de fluxo de 35 a 40 mililitros através do fundo da coluna até que o pH do efluente seja igual ao pH do influente, em seguida, bombeie água desionizada para o topo da coluna até que o pH do efluente seja igual ao pH do influente.Uma vez que a cama de resina esteja embalada, use uma bomba peristáltica para carregar a fração fulvic na coluna sob baixa pressão através da parte superior da coluna a uma taxa de fluxo de 35 a 40 mililitros. Uma vez que a fração fulvic tenha sido completamente carregada sobre a resina, lave a resina com água desionizada para remover a fração de fulvic hidrofílico não adsorvida. Lave a coluna com água deionizada até que a absorção do efluente da coluna a 350 nanômetros seja igual à da água deionizada usada para lavar a coluna.Para desordenar o HFA, bombeie hidróxido de sódio 0,1 molar através do fundo da coluna e capture o efluente fulvate de sódio da bomba em um recipiente limpo e de tamanho suficiente. Todo o HFA foi dessordado quando a absorção do efluente da coluna é igual à absorvência de 0,1-molar fluido de hidróxido de sódio a 350 nanômetros. Para desarbrar o HFA por protonação, primeiro despeje a resina de troca de próton/cáção em um grande béquer e cubra e misture a resina com água desionizada fresca várias vezes, derramando a água após cada lavagem até que a cor vermelha tenha sido completamente removida.Após a última lavagem, cubra a resina com um ácido clorídrico molar e deixe a mistura descansar por pelo menos duas horas, mexendo a cada 30 minutos. No final do tratamento de acidificação, substitua o ácido por água desionizada e mexa vigorosamente com uma haste de agitação por 15 segundos antes de deixar a resina cair para o fundo do frasco e derramar a água. Repita o processo até que a condutividade elétrica da água enxágue seja menor ou igual a 0,7 microSiemens por centímetro e carregue a resina regenerada em uma coluna de 5 por 50 centímetros com um frit de vidro para reter a resina.Em seguida, cubra a resina com água deionizada fresca e passe repetidamente o fulvato de sódio através da forte resina de cátion/prótons trocada por alimentação gravitacional até que a condutividade elétrica do efluente seja inferior a 120 microSiemens por centímetro. Para garantir que toda a FA seja removida da resina, após a passagem final, lave a resina com água desionizada até que a absorção do efluente a 350 nanômetros seja a mesma da água deionizada usada para lavar a coluna. Adicione a lavagem e qualquer efluente usado para verificar a absorvência à solução FA purificada.Para ajudar na remoção da FA, a resina pode ser agitada várias vezes. Use um evaporador rotativo a 55 graus Celsius para concentrar a FA em um volume de aproximadamente 15 mais ou menos dois mililitros e transfira completamente todo o volume de concentrado fa para um tubo de centrífuga de plástico de 50 mililitros. Seque a amostra para 60 mais ou menos três graus Celsius para ressecamento constante no forno de secagem e transfira o tubo para o desiccador esfriar.Quando a amostra tiver esfriado, use uma espátula para raspar a FA extraída em um pedaço de papel de peso pré-pesado e determinar a razão de cinzas, o peso extraído da FA e por cento de FA pura na amostra original, como demonstrado para o ácido húlico. Nesta tabela, são mostrados dados de precisão para o método de extração de HA e HFA a partir de amostras comerciais líquidas com concentrações muito diferentes de HA e HFA. O desvio padrão residual para HA foi inferior ao do HFA, mas o desvio padrão residual médio de HFA sobre três amostras líquidas foi de 6,83%, indicando um alto grau de precisão.A razão Horowitz também foi maior que duas para apenas uma das análises da HFA. Nesta tabela, são mostrados dados de precisão para a extração de HA e HFA a partir de três amostras de minério húlico. Semelhante à análise anterior, com exceção do HFA extraído do minério dois e do HA do minério três, todas as razões horowitz estavam abaixo de duas, demonstrando o alto grau de precisão deste método para a extração de HA e HFA a partir de amostras de minério úmido.Nesta análise, não foram observados aditivos bioestimulantes vegetais que afetaram significativamente a recuperação de HA ou HFA. Nestas tabelas, mostram-se as recuperações de HA e HFA a partir de amostras líquidas que estimularam produtos comerciais com concentrações muito baixas. As recuperações foram excelentes, variando entre 88% e 97% para HA, e 92% e 104% para HFA, mas também indicando a necessidade de realizar réplicas laboratoriais.Após este procedimento, os ácidos úmidos secos e fulvic obtidos podem ser usados para fins de caracterização, como o carbono-13 e a ressonância eletrônica de próton NMR, e a espectrometria de massa de resolução ultra-alta, entre outras técnicas úteis. E isso pode ser usado para a caracterização da química do húmus, bem como ferramenta útil para aprofundar a relação estrutura-atividade com a aptidão das plantas e os mecanismos de defesa das plantas subjacentes.

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

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Quantificação de ácidos humicos e fulvic em minérios humados, DOC, materiais humificados e produtos comerciais que contêm substâncias hínicas (Vídeo) | JoVE Journal

Quantificação de ácidos humicos e fulvic em minérios humados, DOC, materiais humificados e produtos comerciais que contêm substâncias hínicas

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