11 de junho de 2020
Este manuscrito descreve um método para gravações contínuas de EEG de vídeo usando eletrodos de profundidade múltiplos em camundongos neonatais submetidos à hipoxia-isquemia.
A encefalopatia hipóxico-isquêmica é a causa mais comum de convulsões neonatais. Este modelo de camundongo de convulsões hipóxico-isquêmicas e videoeletroencefalografia contínua ou EEG pode ajudar a aprofundar nossa compreensão e caracterização das convulsões neonatais. Essa técnica facilita a aquisição de gravações de eletroencefalografia em vídeo de alta qualidade em um modelo de lesão neonatal e pode auxiliar em estudos futuros dos mecanismos de convulsões neonatais, resultados e testes terapêuticos.
Demonstrando o procedimento estará Pravin Wagley. Um especialista de laboratório do meu laboratório. Para cirurgia de implantação de eletrodo.
Depois de confirmar a falta de resposta ao reflexo da dor em um camundongo pós-parto anestesiado, coloque o camundongo em um estágio estereotáxico com um cone de nariz e use o verso da barra auricular para manter a cabeça firme. Esterilize a área da incisão no crânio com três esfoliantes alternados de betaína e etanol a 70% e use uma cortina fenestrada para cobrir o mouse, mantendo a região da incisão visível. Abra o couro cabeludo ântero-posterior ligeiramente acima dos olhos e retraia aproximadamente meio centímetro de pele.
Reposicione a cabeça no estágio estereotáxico para que a pele se puxe para fora para expor o crânio e use um cotonete para aplicar peróxido de hidrogênio. Use uma lâmina de bisturi para raspar cuidadosamente o crânio. E aplique uma gota de adesivo de aproximadamente 50 microlitros no osso.
Use o aplicador para espalhar o adesivo sobre o crânio e coloque o adesivo sob luz ultravioleta por 40 segundos. Quando o adesivo estiver endurecido, meça as coordenadas usando o bregma exposto como referência. E use uma agulha de calibre 32 para criar orifícios de eletrodo bilateralmente na região CA1 do hipocampo, bilateralmente no córtex parietal e no cerebelo.
Limpe o sangue da superfície do crânio e use o braço estereotáxico para abaixar os eletrodos presos ao conector do soquete fêmea no cérebro. Implante cada eletrodo no cérebro e fixe os eletrodos no lugar com acrílico dental. Cole o fone de ouvido no crânio com acrílico dental adicional.
Injete subcutaneamente cinco miligramas por quilograma de cetoprofeno em cada filhote. Quando todos os eletrodos estiverem presos em pelo menos metade da ninhada, devolva os filhotes à mãe. 24 horas após a implantação do eletrodo, coloque cada animal em uma câmara de acrílico personalizada de 37 graus Celsius para a gravação do EEG e use um cabo amplificador operacional flexível feito sob medida para conectar os filhotes a um sistema de monitoramento de vídeo EEG.
Use um amplificador diferencial multicanal para digitalizar os dados de EEG a 1000 Hertz com um ganho de um quilo e revise o sinal de EEG no software de análise apropriado. Em seguida, registre um EEG basal pré-lesão por 30 minutos, antes de desconectar os animais para o procedimento de litígio da artéria carótida. Após registrar os dados basais do EEG, esterilize a pele entre a mandíbula e a clavícula no lado esquerdo do pescoço com betaína e etanol, conforme demonstrado.
E faça uma incisão de aproximadamente um centímetro no lado esquerdo do pescoço. Coloque o filhote sob um microscópio de dissecação e retraia cuidadosamente o tecido subcutâneo e a pele para expor a artéria carótida. Coloque um pedaço de cinco centímetros de sutura de seda estéril sob a artéria.
Identifique o nervo vago e delicadamente separe e retraia o nervo da artéria. Manobre a sutura para que fique apenas sob a artéria. Depois de identificar o nervo vago, separe e retraia delicadamente o nervo da artéria e use uma micropinça para enfiar um pedaço de cinco centímetros de sutura de seda estéril sob a artéria.
Amarre uma sutura com nó duplo ao redor da artéria para ocluir o fluxo e cortar o excesso de sutura. Substitua o tecido subcutâneo e a pele sobre a artéria exposta e use Vetbond para selar a incisão. Em seguida, coloque o animal de volta no monitoramento contínuo de EEG em uma câmara à temperatura ambiente, colocada em um colchão de aquecimento e faça verificações pontuais de temperatura infravermelha da temperatura central do filhote para evitar abrir a câmara.
Depois de permitir que os filhotes se recuperem por uma hora com monitoramento contínuo de fração inspirada de oxigênio, lave a câmara com 60 litros por minuto de nitrogênio a 100% e 0,415 litros por minuto de oxigênio a 100%. Quando a saturação de oxigênio na câmara atingir 12%, diminua o fluxo de nitrogênio para 10 litros por minuto, mantendo o fluxo de oxigênio inalterado. Fazendo pequenos ajustes conforme necessário, mantenha a fração inspirada de oxigênio em 8% por 45 minutos.
Após 45 minutos de exposição à hipóxia, retorne a fração inspirada de oxigênio a 21% e permita que os filhotes se recuperem na câmara com monitoramento de EEG por duas horas. No final do período de gravação, desconecte os camundongos do sistema de EEG e devolva os filhotes à mãe. As gravações de EEG em vídeo permitem que os achados eletrográficos sejam correlacionados ao comportamento em vídeo.
A maioria dos eventos observados neste modelo envolve comportamentos focais unilaterais ou mistos. Durante o período hipóxico, um subconjunto de camundongos normalmente exibe atividade convulsiva não compulsiva, durante a qual os filhotes ficam imóveis com atividade convulsiva sustentada no EEG. Nesta análise, a atividade basal foi semelhante ao fundo descrito anteriormente em filhotes de camundongos P 10.
Após o litígio e antes do início da hipóxia, um subconjunto de camundongos exibiu convulsões convulsivas. Após a indução da hipóxia, a amplitude de fundo no EEG foi reduzida. E explosões intermitentes de descargas de ondas de pico foram exibidas, seguidas de supressão.
Os camundongos exibiram convulsões eletrográficas que emergem de um fundo suprimido como descargas rítmicas de ondas de pico que progrediram para se tornarem mais complexas e frequentes com ondas de pico polis. Durante a hipóxia, a análise do espectrograma de potência é notável por assimetrias entre os hemisférios isquêmico e contralateral. O hemisfério isquêmico exibe um padrão de supressão de explosão e o hemisfério contralateral exibe um fundo suprimido.
Durante a reoxigenação e recuperação, um subconjunto de camundongos continua a ter convulsões durante o restante do período de gravação. O fundo do EEG é suprimido em comparação com a linha de base após a hipóxia, com uma recuperação gradual observada durante o período de registro pós-hipóxia. Ao trabalhar com filhotes neonatais, a precisão é fundamental.
Além disso, atenção especial deve ser dada para colocar os filhotes de volta com a mãe em grupos após os procedimentos cirúrgicos. A eletroencefalografia por vídeo pode ser usada em filhotes neonatais em conjunto com histopatologia, imagem e comportamento para examinar o impacto das convulsões neonatais na cirurgia de lesão e nos resultados comportamentais.
Veja a transcrição completa e aceda a milhares de vídeos científicos
Este manuscrito descreve um método para gravações contínuas de EEG em vídeo utilizando múltiplos eletrodos de profundidade em camundongos neonatos submetidos à hipóxia-isquemia. Esta técnica auxilia na compreensão das crises neonatais ao permitir a correlação entre achados eletrográficos e eventos comportamentais.
A monitorização contínua por EEG em vídeo em camundongos neonatos fornece uma plataforma translacional para reduzir riscos de hipóteses terapêuticas relacionadas a convulsões no desenvolvimento pré-clínico. Ao permitir a análise sincronizada de padrões eletrográficos e comportamentais durante hipóxia-isquemia, o método apoia a validação mecanicista de compostos anticonvulsivantes e biomarcadores. Essa abordagem aumenta a confiança preditiva na fase inicial de descoberta ao modelar a semiologia de crises neonatais humanas e a evolução do EEG em um sistema relevante para a doença.
O método se integra aos fluxos de trabalho de descoberta inicial ao estabelecer modelos de convulsão validados por EEG antes das fases de triagem de compostos e otimização de compostos líderes.