16 de julho de 2020
Neste trabalho, fornecemos um protocolo para biofuncionalizar nanomateriais magnéticos com anticorpos para direcionamento celular específico. Como exemplos, utilizamos nanofios de ferro para atingir células cancerígenas.
A principal característica deste protocolo, ele pode ser aplicado em uma ampla gama de nanomateriais de óxido de ferro-ferro. Além disso, pode ser aplicado em nanomateriais multi-segmentados, como nanofios de ferro-ouro. Este protocolo pode ser realizado com segurança em qualquer laboratório biológico padrão.
As principais vantagens desta técnica de biofuncionalização é a capacidade de produzir um nanomaterial especificamente direcionado com base em uma forte ligação covalente entre o nanofio e os anticorpos. Comece cortando os discos de alumínio em pedaços pequenos com uma lâmina de borda única e um pequeno martelo. Coloque as peças cortadas em um tubo de dois mililitros e encha-o com um mililitro de hidróxido de sódio de um molar, certificando-se de que todas as peças de alumínio estejam cobertas.
Deixar o tubo à temperatura ambiente numa hotte química durante 30 minutos. Após a incubação, remova as peças de alumínio com uma pinça e mantenha os nanofios liberados em hidróxido de sódio por mais 30 minutos. Coloque o tubo em uma cremalheira seca magnética, aguarde dois minutos e substitua a solução por hidróxido de sódio fresco.
Sonicar o tubo de dois mililitros com os nanofios por 30 segundos e deixá-lo por uma hora dentro de uma capela química. Repita esta etapa pelo menos quatro vezes. Quando terminar, coloque o tubo de dois mililitros no rack magnético, descarte o hidróxido de sódio e substitua-o por um mililitro de etanol absoluto.
Sonicar os nanofios por 30 segundos, colocar o tubo no rack magnético e substituir o etanol. Repita a lavagem com etanol pelo menos quatro vezes. Depois de lavar os nanofios, transfira-os para um tubo de vidro de cinco mililitros com uma pipeta de um mililitro.
Adicione 100 microlitros de APTES à solução de nanofios e vórtice o tubo de vidro por 20 segundos. Coloque o tubo em um banho ultrassônico e sonice-o por uma hora. Em seguida, retire o tubo do banho e adicione 400 microlitros de água deionizada e 20 microlitros de hidróxido de sódio monomolar.
Repita a sonicação de uma hora. Depois de retirar o tubo de vidro do banho ultrassônico, coloque-o ao lado de um ímã para coletar os nanofios. Substituir o sobrenadante por um mililitro de etanol absoluto fresco e sonicar o tubo durante 10 segundos.
Repita a lavagem com etanol e a sonicação duas vezes. Dissolva 0,4 miligramas de EDC e 1,1 miligramas de Sulfo-NHS e um mililitro de MES em um tubo de dois mililitros. Em outro tubo de dois mililitros, adicione 960 microlitros de PBS 0,1 molar e adicione 30 microlitros de anticorpo anti-CD44.
Em seguida, adicione 10 microlitros da mistura EDC/Sulfo-NHS previamente preparada a este tubo. Coloque o tubo de anticorpos em um agitador e agite-o a 10 vezes G por 15 minutos em temperatura ambiente. Enquanto isso, coloque um ímã próximo ao tubo com os nanofios revestidos com APTES por dois minutos, descarte o etanol e substitua-o por PBS.
Sonicar os nanofios por 10 segundos. Após a última lavagem com PBS, colete os nanofios e transfira a solução de anticorpos ativados para o tubo dos nanofios. Em seguida, sonice por 10 segundos.
Substitua o tubo no rotador durante a noite a quatro graus Celsius. No dia seguinte, colete os nanofios com o ímã e descarte o sobrenadante. Adicione um mililitro de 2% BSA e incube o tubo por uma hora a quatro graus Celsius para bloquear a reação.
A espectroscopia de perda de energia de elétrons ou mapas EELS podem ser usados para visualizar os átomos de silício na superfície do nanofio e confirmar a presença do revestimento APTES. Nos nanofios não revestidos, os átomos de ferro aparecem em azul escuro e os átomos mistos de ferro e oxigênio são em azul claro. O mapeamento EELS correspondente de nanofios não revestidos mostra uma intensidade mais alta de ferro versus oxigênio no centro do que na superfície, indicando uma estrutura de óxido de ferro-ferro.
O mapeamento demonstrou que a camada de óxido de ferro consiste em mais óxido de ferro (II, III) do que óxido de ferro (III). A antigenicidade dos anticorpos anexados foi confirmada usando os ensaios de imunoprecipitação e western blot. O ensaio BCA foi utilizado para quantificar o número de anticorpos nos nanofios.
A medição do potencial zeta foi usada para elucidar a funcionalização da superfície. O grupo amina terminal no APTES reduziu a carga negativa em comparação com nanofios não revestidos. A funcionalização do anticorpo reduziu ainda mais a carga.
O direcionamento celular específico dos nanofios funcionalizados por anticorpos foi confirmado usando microscopia confocal. As Figuras A e B representam as imagens de microscopia de campo claro dos espécimes C e D, respectivamente. A cor vermelha corresponde à representação da membrana celular, o azul representa o núcleo e os aglomerados verdes representam a presença de nanofios CD44 direcionados e anexados.
Além disso, o ensaio de viabilidade celular foi usado para verificar se os nanofios não revestidos, revestidos com APTES e revestidos com anticorpos eram biocompatíveis. No revestimento do processo APTES, é muito importante adicionar a água deionizada antes da solução de hidróxido de sódio para melhorar a ligação entre a molécula APTES e os nanofios. Além disso, durante o processo de biofuncionalização, é necessário lavar o nanofio com tampão PBS algumas vezes para aumentar a ligação covalente entre o anticorpo e os nanofios.
Este estudo apresenta um protocolo para biofuncionalizar nanomateriais magnéticos com anticorpos, visando obter direcionamento celular específico, particularmente utilizando nanofios de ferro para direcionar células cancerígenas.
Este protocolo permite a produção de nanomateriais magnéticos especificamente direcionados por meio da ligação covalente de anticorpos, apoiando o desenvolvimento de terapêuticas e diagnósticos de precisão. Ao aumentar a especificidade do alvo e permitir o controle magnético remoto, o método contribui para a redução de riscos mecanicistas em programas oncológicos de fase inicial. A abordagem melhora a confiança preditiva em intervenções baseadas em nanomateriais ao validar tanto a eficiência de direcionamento quanto a biocompatibilidade.
O método insere-se no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos líderes, permitindo a avaliação confiável de compostos por meio de nanomateriais quantificáveis e magneticamente responsivos.