11 de setembro de 2020
Aqui, descrevemos uma cepa 519/43 do sorotipo 1 de S. pneumoniae que pode ser geneticamente modificada usando sua capacidade de adquirir naturalmente DNA e um plasmídeo suicida. Como prova de princípio, um mutante isogênico no gene da pneumolisina (plys) foi feito.
Este protocolo é significativo porque permite a modificação genética de um sorotipo anteriormente não tratável, possibilitando a pesquisa e a compreensão do sorotipo. Isso abre caminhos para o trabalho biológico, como o desenvolvimento de vacinas. Demonstrando o procedimento estará Vanessa S.Terra, professora assistente da Escola de Higiene e Medicina Tropical de Londres.
Para começar, gere o plasmídeo pSD1 realizando uma ligação seguindo as instruções do fabricante do pGEM-T Easy System I. Incube a reação durante a noite a quatro graus Celsius. No dia seguinte, transforme E.coli Dh5-alfa quimicamente competente com pSD1, incubando 50 microlitros das células com três microlitros de reação de ligação pSD1 por 15 minutos no gelo, depois exponha as células ao choque térmico e coloque as células no gelo por dois minutos.
Remova as células do gelo e adicione 350 microlitros de meio SOC e incube a cultura por duas horas a 37 graus Celsius e 120 RPM. Placa a transformação em ágar Luria-Bertani suplementado com IPTG 0,4 milimolar, 0,24 miligramas por mililitro X-Gal para seleção azul-branca e 100 microgramas por mililitro de ampicilina para garantir que todas as colônias que crescem na placa tenham a espinha dorsal do plasmídeo. Escolha três colônias brancas que contenham pSD1 e estabeleça crescimentos noturnos em 10 mililitros de L-B suplementados com 100 microgramas por mililitro de ampicilina.
Incube as culturas durante a noite a 37 graus Celsius com agitação. No dia seguinte, centrifugar as culturas a 3 082 G e utilizar o sedimento para a extracção do plasmídeo. Depois de extrair o DNA do plasmídeo, configure uma digestão de restrição BamH1 para o plasmídeo pSD1 e o de espectinomicina.
Incube as reações de digestão de restrição e controles a 37 graus Celsius por três horas. Quando a restrição terminar, analise os produtos por eletroforese, excise a banda correta e purifique-a usando um kit comercial. Em seguida, execute uma reação de ligação usando o pSD1 digerido por BamH1 e a espectinomicina.
Isso gerará o plasmídeo pSD2. Transforme o pSD2 em E.coli DH5-alfa quimicamente competente, conforme descrito anteriormente. Em seguida, selecione os transformantes que transportam o plasmídeo pSD2 com base em sua capacidade de crescer em LBA suplementado com 100 microgramas por mililitro de espectinomicina e ampicilina e extraia o DNA do plasmídeo.
Prepare uma cultura noturna de S.pneumoniae 519/43 em BHI e deixe-a crescer estaticamente a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. No dia seguinte, diluir as culturas 1:50 e 1:100 em 10 mililitros de caldo BHI fresco. Incube a cultura estaticamente a 37 graus Celsius até que o OD a 595 nanômetros esteja entre 0,05 e 0,1.
Assim que o OD apropriado for atingido, pegue 860 microlitros de cultura e transfira-os para um tubo de microcentrífuga. Adicione 100 microlitros de hidróxido de sódio 100 milimolares, 10 microlitros de 20% BSA, 10 microlitros de cloreto de cálcio 100 milimolares, dois microlitros de 50 nanogramas por mililitro CSP1 e 500 nanogramas de pSD2. Incube a reação estaticamente a 37 graus Celsius por três horas.
Em seguida, coloque 330 microlitros em placas de ágar sangue a 5% suplementadas com 100 microgramas por mililitro de espectinomicina a cada hora durante um período de incubação de três horas. Em seguida, incube as placas durante a noite a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Colocar colônias resistentes à espectinomicina em outra placa de ágar sangue suplementada com 100 microgramas por mililitro de espectinomicina e em placas de ágar sangue suplementadas com 100 microgramas por mililitro de ampicilina, que testa a presença da estrutura do plasmídeo.
Incube os dois conjuntos de placas durante a noite. A montagem correta de pSD2 foi confirmada por digestão por restrição. O pSD2 foi então usado para transformar 519,43 células do tipo selvagem.
As colônias que cresceram em espectinomicina após uma incubação noturna foram consideradas transformantes positivas. A confirmação fenotípica da mutação da pneumolisina foi realizada avaliando a atividade hemolítica para D39, 519/43 tipo selvagem e 519/43 mutante delta ply. Isso foi comparado à hemólise de glóbulos vermelhos por 0,5% de saponina, que é considerada 100% O mutante perdeu sua capacidade de lisar glóbulos vermelhos.
Todas as colônias positivas foram confirmadas por sequenciamento para avaliar a localização da inserção. Foram utilizados primers com sítios de ligação fora da região de homologia. Ao realizar a reação de transformação, é importante adicionar os reagentes na ordem correta.
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Este artigo apresenta um método para modificar geneticamente uma cepa 519/43 do sorotipo 1 de S. pneumoniae, utilizando sua capacidade natural de adquirir DNA. O estudo demonstra a criação de um mutante isogênico no gene da pneumolisina (ply), abrindo caminho para pesquisas futuras.
Genetic modification of Streptococcus pneumoniae serotype 1 has been a longstanding barrier in infectious disease research, particularly for vaccine and therapeutic target validation in high-burden regions. This protocol enables functional genomics in a clinically relevant strain, supporting mechanistic de-risking of virulence factors like pneumolysin. By establishing a reliable mutagenesis system, it improves predictive confidence in target selection and accelerates preclinical evaluation pipelines.
The method fits within the discovery biology phase, enabling target validation through genetic manipulation prior to lead identification efforts.