6 de agosto de 2020
Este protocolo apresenta ensaio de brotos de choroide, um modelo ex vivo de proliferação microvascular. Este ensaio pode ser usado para avaliar caminhos envolvidos na proliferação de micro vasos choroidais e avaliar tratamentos medicamentosos usando tipo selvagem e tecido de camundongos geneticamente modificados.
Este ensaio de coróide é altamente reprodutível e pertinente à pesquisa de angiogênese coroidal e degeneração macular relacionada à idade, DMRI Pode complementar estudos in vivo do comportamento microvascular. Este ensaio pode ser usado para rastrear compostos como tratamentos potenciais para DMRI neovascular ou para avaliar as vias envolvidas na Neovascularização Coroidal usando tecido de camundongo selvagem e geneticamente modificado. Para começar, adicione cinco mililitros de penicilina, estreptomicina e 10 e cinco mililitros de suplementos disponíveis comercialmente a 500 mililitros de meio clássico completo com soro e, em seguida, alíquota de 50 mililitros do meio, descongele o extrato de membrana basal ou BME durante a noite em uma geladeira a dois a oito graus Celsius.
Coloque uma alíquota de meio clássico completo no gelo. Limpe o microscópio de dissecação, fórceps e tesoura com etanol a 70%. Preparar para placas de cultura de células e colocar uma no microscópio de dissecação e a outra no gelo.
Em seguida, adicione 10 mililitros de meio clássico completo a cada prato. Mantenha os olhos em meio clássico completo no gelo antes da dissecação. Remova o tecido conjuntivo e o nervo óptico e, em seguida, use uma microtesoura para cortar circunferencialmente 0,5 milímetros posterior ao limbo da córnea.
Remova o complexo da córnea da íris, vítreo e para o cristalino. Faça uma incisão de um milímetro perpendicular à borda cortada em direção ao nervo óptico e, para cortar uma faixa circunferencial de um milímetro de largura, separe as regiões central e periférica do complexo. Use uma pinça para descascar a retina do complexo da esclera coróide do EPR.
Mantenha a banda coróide periférica em meio clássico completo no gelo. Isole o outro olho e repita o processo para cortar uma segunda faixa. Corte a faixa circular em cinco a seis pedaços quadrados aproximadamente iguais.
Adicione 30 microlitros do BME descongelado no centro de cada poço de uma placa de cultura de tecidos de 24 poços. Certifique-se de que a gota de BME forme uma cúpula convexa na parte inferior da placa sem tocar nas bordas. Coloque o tecido no meio do BME.
Não alise a planta X da coróide. Deixe o tecido se expandir dentro do BME. Incube a placa a 37 graus Celsius por 10 minutos para deixar o gel solidificar e, em seguida, adicione 500 microlitros de meio clássico completo em cada poço.
Mude o meio clássico a cada dois dias. O brotamento da coróide pode ser observado após três dias com um microscópio. Abra a imagem de brotamento de coróide com a imagem J e verifique a imagem, digite e oito bits com escala de cinza.
Em seguida, otimize o contraste selecionando imagem, ajuste, contraste de brilho e ajustando-o. Use a função de varinha mágica para delinear e remover o tecido coróide que está presente no centro dos brotos. Remova o fundo da imagem com as ferramentas de seleção gratuitas.
Em seguida, vá para a imagem, ajuste o limiar e use a função de limiar para definir os brotos microvasculares contra o fundo na periferia. Clique em F2 e um resumo aparecerá. Clique em salvar para salvar uma imagem da área selecionada na mesma pasta da imagem original para referência futura.
Depois que um grupo de amostras for medido, copie os dados registrados para análise. Este protocolo foi usado para examinar e quantificar o brotamento da coróide em C 57, camundongos J pretos seis do terceiro ao sexto dia. Em um caso representativo, a área de brotação da coroide foi de 0,38, 1,47, 5,62 e 10,09 milímetros quadrados nos dias três, quatro, cinco e seis, respectivamente.
Os efeitos da perda de FFAR4 na germinação vascular da coroide foram avaliados usando o ensaio de germinação da coróide em camundongos FFAR4 quatro knockout e FFAR4 do tipo selvagem. A área de brotamento em camundongos knockout para FFAR4 aumentou o crescimento vascular coroidal em comparação com o tipo selvagem FFAR4 no sexto dia. Além disso, o tratamento com um agonista micromolar FFAR4 reduziu a área de brotamento coroidal em comparação com camundongos não tratados no sexto dia.
Este ensaio permite a avaliação reprodutível do potencial antiangiogênico de compostos farmacológicos e a variação do papel de vias específicas na Neovascularização Coroidal utilizando tecido de camundongos geneticamente modificados.
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Este protocolo apresenta um ensaio de brotamento da coroide como um modelo ex vivo para o estudo da proliferação microvascular, especificamente em relação à angiogênese coroidal e à degeneração macular relacionada à idade de tipo neovascular (DMRI). O ensaio permite a avaliação das vias envolvidas na proliferação de microvasos coroidais e a análise de tratamentos farmacológicos utilizando tecidos de camundongos tanto do tipo selvagem quanto geneticamente modificados.
O ensaio de brotamento coroidal ex vivo fornece um modelo reprodutível para avaliar a proliferação microvascular coroidal, diretamente relevante para a descoberta de fármacos contra a degeneração macular relacionada à idade de tipo neovascular (DMAE). Ele permite a desvinculação mecanicista de vias angiogênicas utilizando tecidos de camundongos selvagens e modificados geneticamente, apoiando a validação de alvos e a identificação de compostos promissores em pipelines oftalmológicos. O ensaio conecta a biologia descritiva e a avaliação pré-clínica ao quantificar a dinâmica de brotamento em um sistema de explante tecidual fisiologicamente relevante.
O ensaio insere-se no continuum de descoberta em oftalmologia, desde a validação do alvo até a otimização do fármaco líder e os testes pré-clínicos de eficácia, especialmente para estratégias antiangiogênicas na DMAE.