27 de janeiro de 2021
Um sistema de recombinação mediado por λ-Red foi usado para criar um mutante de deleção de um pequeno micC de RNA não-codificante.
Este protocolo pode ser usado para inativar genes cromossômicos para isolar mutantes para estudo da função gênica e bactérias. Isso torna o processo de recombinação homóloga simples, rápido e altamente eficiente. Usando esta técnica, os genes relacionados à virulência do patógeno podem ser deletados para obter o mutante atenuado que pode ser usado como um candidato para a vacina atenuada.
Comece amplificando o de cloranfenicol contendo fragmentos hemológicos do gene micC. Projete primers para frente e para trás para amplificar o de cloranfenicol do plasmídeo PKD3, incluindo 50 extensões de homologia de pares de bases das cinco extremidades primos e três primos do gene micC. Realizar a PCR conforme descrito no texto manuscrito utilizando o plasmídeo PKD3 como molde para amplificar o de cloranfenicol.
Determinar o tamanho do produto da PCR com eletroforese em gel de agarose. Em seguida, purificar o produto com um kit de recuperação de gel de DNA e determinar a concentração de DNA por espectrofotometria. Realizar uma segunda reação de PCR para eliminar a interferência de recombinação adicional pelo plasmídeo PKD3.
Diluir o primeiro produto de PCR em uma proporção de 1 para 200 e usá-lo como um modelo para o PCR secundário. Para construir a primeira cepa recombinante 50336 delta micC dot cat, misture 100 microlitros de células competentes SE 50336 com cinco microlitros de plasmídeo PKD 46 e incube no gelo por 30 minutos. Choque térmico a mistura a 42 graus Celsius por 90 segundos e transferi-la rapidamente de volta ao gelo por dois minutos para transformar o plasmídeo nas células.
Rastreie colônias positivas cultivando as células durante a noite a 30 graus Celsius em uma placa resistente à ampicilina. No dia seguinte, adicionar mais 30 mili de L arabinose à cultura líquida SE 50336 PKD 46 e induzir a expressão da recombinase com uma hora de incubação a 30 graus Celsius enquanto agita. Misture 100 nanogramas do produto de PCR purificado e 40 microlitros de células competentes SE 50336 PKD 46 em um copo de choque elétrico.
Em seguida, realize a transformação do choque elétrico. Após a eletrotransformação, transferir a mistura para um mililitro de meio SOC e uma incubadora de cultura de agitação a 150 RPM e 30 graus Celsius por uma hora. Espalhe a mistura em uma placa LB resistente ao cloranfenicol e cultive a 37 graus Celsius durante a noite para rastrear colônias positivas.
Cultivar as colônias positivas a 42 graus Celsius por duas horas. Em seguida, rastreie a colônia quanto à sensibilidade à ampicilina e resistência ao cloranfenicol a 37 graus Celsius durante a noite para obter a primeira cepa recombinante sem PKD 46. Depois de extrair o DNA genômico do gato do ponto micC 50336 Delta micC usando PCR e eletroforese em gel, eletroplaca 100 nanogramas de PCP 20 plasmidial em 40 microlitros de 50336 células competentes do gato do ponto micC do delta.
Filtre transformadores positivos em placas resistentes à ampicilina e ao cloranfenicol a 30 graus Celsius. Transfira os transformadores positivos para meio líquido LB não resistente e cultive-os durante a noite a 42 graus Celsius. Em seguida, isole colônias únicas em uma placa LB a 37 graus Celsius.
Selecione a colônia que é sensível à ampicilina e ao cloranfenicol. Este mutante é o mutante de deleção micC SE 50336 Delta micC. Verifique 50336 Delta micC realizando PCR conforme descrito no manuscrito do texto.
Este protocolo foi usado para construir o mutante de deleção 50336 Delta micC no mutante complementado 50336 Delta micC, pmicC. O primeiro gato de ponto recombinante 50336 Delta micC foi validado por PCR com um tamanho de banda esperado de cerca de 1200 pares de bases de produtos de PCR com a inserção de cloranfenicol em comparação com 279 pares de bases na cepa selvagem. Na segunda recombinação, o de cloranfenicol foi eliminado pela PCP 20.
Os resultados da PCR combinados com o sequenciamento confirmaram que o mutante isogênico micC foi construído com sucesso. A expressão dos genes ompA, ompC e ompD nas linhagens 50336, 50336 Delta micC e 50336 delta micC pmicC foi analisada por PCR quantitativo em tempo real. A transcrição de ompA e ompC e 50336 delta micC aumentou cerca de 2,2 vezes e três vezes em comparação com a cepa selvagem.
Enquanto a transcrição de ompD aumentou apenas ligeiramente. Os ensaios LD 50 mostraram que, depois de infectar camundongos BALB/c de seis a oito semanas de idade com cada uma das três cepas, a maioria dos camundongos infectados por 50336 Delta micC apresentou lassidão, inapetência ou diarreia 48 horas após a infecção e morreu após 96 horas. Os camundongos infectados pela cepa selvagem e 50336 delta micC pmicC apresentaram os mesmos sintomas 72 horas após a infecção e morreram após 120 horas.
A LD 50s das três cepas indicou que a virulência do mutante 50336 Delta micC aumentou 2,5 vezes em comparação com o tipo selvagem. Essa técnica ajuda os pesquisadores a estudar a função dos genes bacterianos e obter a cepa projetada desejada excluindo os genes-alvo.
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Este artigo apresenta um protocolo utilizando um sistema de recombinação mediado por 位-Red para criar um mutante de deleção do pequeno RNA não codificante micC. Este método simplifica o processo de inativação gênica para isolamento de mutantes em estudos bacterianos.
Understanding virulence mechanisms in bacterial pathogens like Salmonella Enteritidis supports target validation in antimicrobial development. The study demonstrates how non-coding RNA regulation of outer membrane proteins influences pathogenicity, offering mechanistic insights for de-risking anti-infective strategies. This work highlights the value of genetic dissection in identifying virulence factors for preclinical target prioritization.
The λ-Red-mediated recombination system enables efficient gene deletion, supporting early-stage target validation and mutant library generation in antimicrobial discovery.