22 de dezembro de 2020
Fornecemos um protocolo passo-a-passo para a coloração por imunofluorescência de montagem completa do nó sinoatrial (SAN) e do nó atrioventricular (AVN) em corações murinos.
Este protocolo explica as etapas necessárias para realizar microdissecção, coloração de imunofluorescência de montagem total e microscopia especificamente para o nó sinusal e o nó AV no camundongo. A metodologia de montagem completa é vantajosa para abordar a localização 3D exata e a morfologia do seio e do nó AV e para examinar a relação com o tecido circundante. A morfologia do tecido é consideravelmente preservada com apenas o mínimo de desidratação do tecido e ruptura física.
Para começar, perfure o coração com uma agulha de calibre 27 na área do ápice, empurrando cuidadosamente a agulha para o ventrículo esquerdo e injetando suavemente de cinco a 10 mililitros de PBS gelado para profundir o coração. Levante cuidadosamente o coração usando uma pinça e corte os vasos grandes para remover o coração. Coloque o coração em uma placa de dissecação cheia de PBS gelado sob o microscópio de dissecação.
Após a determinação da orientação do coração, gire o coração para que a frente do coração fique no fundo do prato. Imobilize o coração colocando pequenos pinos através do ápice e do apêndice atrial na agarose na parte inferior da placa de dissecação. Usando pinças finas e tesouras, remova cuidadosamente o tecido não cardíaco ao redor das veias cava superior e inferior.
Para expor a região intercaval, remova a maioria dos ventrículos cortando paralelamente ao sulco entre os ventrículos e os átrios com uma microtesoura. Para fixação e desidratação, coloque a amostra em paraformaldeído a 4% durante a noite a quatro graus Celsius. No dia seguinte, transfira o coração para uma solução de sacarose a 15% e incube-o por 24 horas a quatro graus Celsius.
Após a incubação, transfira o coração para uma solução de sacarose a 30% por mais 24 horas a quatro graus Celsius. Lave o coração em 1% Triton X-100 diluído em PBS. Em seguida, bloqueie-o e permeabilize-o em solução de bloqueio durante a noite a quatro graus Celsius.
Coloque o coração em um tubo de 1,5 mililitro e incuba-o com anticorpos anti-camundongo Conexina 43 de coelho e anticorpos anti-camundongo HTN4 de rato diluídos com solução de bloqueio por sete dias a quatro graus Celsius. Após sete dias, remova a solução contendo anticorpos primários usando uma pipeta. Lave o coração com solução de Triton X-100 a 1% três vezes por uma hora por lavagem no agitador orbital.
Repita as etapas de lavagem após a incubação com anticorpos secundários e DAPI. Depois de preparar anéis de plástico e preenchê-los com plasticina, coloque o coração na ranhura de plasticina com a parte de trás do coração voltada para cima. Identifique o SAN, que está localizado no lado dorsal do coração com a região intercava.
Adicione PBS ao coração para deslocar todo o ar dentro da cavidade até que o coração esteja totalmente coberto com PBS. Aplique silicone nas bordas do anel de plástico. Pressione suavemente a parte circundante da amostra na plasticina para fixar o coração e cubra o coração com uma lamínula.
Em seguida, pressione suavemente a parte de trás da plasticina para espremer um pouco do PBS e prenda o coração à lamínula, tomando cuidado para evitar bolhas de ar na área de imagem. Posicione as amostras de coloração de montagem inteira de cabeça para baixo na plataforma do microscópio confocal e prossiga com a imagem conforme descrito no manuscrito do texto. Os parâmetros para cada canal do microscópio confocal são definidos usando o respectivo software.
Este protocolo foi usado para realizar imagens de microscopia confocal do nó sinoatrial e do nó atrioventricular em corações murinos. A coloração específica do sistema de condução e o miocárdio de trabalho com anticorpos fluorescentes, visando HCN4 e Conexina 43, respectivamente, tornam possível identificar o nó sinoatrial e o nó atrioventricular dentro da anatomia intacta. Este protocolo de coloração de montagem total torna possível estudar a interação de diferentes tipos de células usando vários anticorpos.
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Este protocolo descreve os passos para a coloração de imunofluorescência em preparação inteira do nó sinoatrial (SAN) e do nó atrioventricular (AVN) em corações de camundongos. A metodologia permite a localização tridimensional precisa e o exame da morfologia dessas estruturas cardíacas.
A visualização tridimensional de alta resolução dos nós sinoatrial e atrioventricular em modelos de camundongos preenche uma lacuna crítica na pesquisa de eletrofisiologia cardíaca, permitindo o mapeamento anatômico e celular preciso. Essa capacidade aumenta a confiança preditiva na validação precoce de alvos para mecanismos de arritmia e apoia a continuidade translacional desde a descoberta até estudos cardíacos pré-clínicos. A preservação da integridade do tecido e a possibilidade de análise multiplexada de tipos celulares posicionam este fluxo de trabalho como um recurso reutilizável para portfólios de P&D cardiovascular.
Este fluxo de trabalho de imunofluorescência em preparação de montagem inteira e imagem confocal integra a descoberta inicial, a validação de alvos e a pesquisa cardíaca pré-clínica, fornecendo dados anatômicos quantitativos de alto conteúdo.