Name: Ensaio de fisiologia térmica baseada em campo: recuperação de choque frio em condições ambientais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-03-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 54 s
Description: Aprenda um protocolo de baixo custo para avaliar a recuperação de choque frio em borboletas em condições ambientais. Este método acessível utiliza materiais simples e fornece insights sobre respostas fisiológicas e ecológicas em campo.

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Graças a Jaret Daniels, Isabella Plummer, Brett Scheffers e Dan Hahn pela contribuição sobre o protocolo como ele foi desenvolvido pela primeira vez. Gratidão adicional a Jaime Haggard, Sebastián Durán e Indiana Cristóbal Róis-Málaver pela implementação de várias iterações deste protocolo e pela entrada em componentes-chave. Graças também a um revisor anônimo para feedback sobre o manuscrito como um todo. O apoio foi dado pelo Fundo de Publicação do McGuire Center for Lepidoptera and Biodiversity, o College of Agricultural and Life Sciences, School of Natural Resources and Environment e o Departamento de Ecologia e Conservação da Vida Selvagem da UF.

1. Identificação de espécies de interesse
<ol><li>Identifique espécies de interesse para determinar o tempo de recuperação do choque frio. Tenha em mente que cada grupo vai diferir no tempo que leva para induzir um coma frio (ou seja, o ponto em que o inseto ainda está vivo, mas não está se movendo e não respondendo). Da mesma forma, com base no organismo e no uso de dados, escolha diferentes pontos de corte para parar o experimento se o indivíduo focal não voar (ver seção 4). NOTA: Este protocolo foi projetado e desenvolvido para uso em Lepidoptera. No entanto, é aplicável a insetos grandes, volant, terrestres, em particular, aqueles que podem ser armazenados planas em envelopes de vidro restringindo o movimento e os danos (por exemplo, borboletas e libélulas/damselflies).</li>
</ol>2. Realização de um pré-julgamento
<ol><li>Realizar um pré-julgamento em uma pequena amostra de indivíduos para determinar os parâmetros-chave. Siga as seções 3 a 5 do protocolo abaixo com 5-10 indivíduos para um pré-julgamento.<ol>
<li>Teste o tempo necessário no gelo para induzir um coma frio (não se movendo), mas não mate as espécies focais seguindo o passo 5.1 usando tratamentos de 30 minutos, 60 min e 90 min. NOTA: O tempo necessário para induzir um coma frio dependerá do tamanho, localização e histórico/comportamento natural dos indivíduos.</li>
		<li>Com base nos resultados das etapas 4.1-4.4 e utilizando o conhecimento da ecologia dos insetos focais, escolha um tempo para concluir o ensaio se um determinado indivíduo não fizer uma recuperação completa. Basear este tempo de corte na ecologia da espécie também, tendo em mente que depois de muitos minutos de ser incapaz de voar, muitos insetos são predados. NOTA: Por exemplo, se a maioria dos testes preliminares terminar em voo após 15 minutos, pode-se decidir encerrar os testes após 25 minutos para garantir que mesmo os outliers tenham a chance de se recuperar totalmente (ou seja, voar). Este protocolo é baseado em um tempo de corte de 30 minutos (etapa 5.4).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Use parâmetros de dados pré-julgamento para informar a coleta de dados para os experimentos. Modifique o protocolo descrito abaixo com base nas necessidades dos organismos focais, incluindo tempo no chorume de gelo, tempo para chamar os ensaios ao fim, e comportamentos documentados na folha de dados (por exemplo, o arrepio pode ser um comportamento inadequado para o inseto de escolha).<ol>
<li>Defina perguntas específicas de pesquisa a serem respondidas com esses dados, refinando os parâmetros. NOTA: Por exemplo, se o pesquisador estiver interessado no efeito da exposição prolongada na recuperação, o tempo no gelo é uma variável chave para modificar. Se os pesquisadores estão interessados em diferenças na fisiologia entre espécies de cor clara e escura, eles podem escolher duas espécies distintamente coloridas ou modificar a cor da asa do inseto para medir o efeito da cor da asa no tempo de recuperação. É importante ressaltar que este método é altamente personalizável às necessidades e questões de pesquisa colocadas (ver a seção de discussão).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Coleta de insetos
<ol><li>Recolher insetos utilizando métodos apropriados, como armadilhas iscas e redes entomológicas,(Figura Suplementar 1). Após a coleta, coloque cada indivíduo em um envelope de vidro separado com uma ID única.</li>
	<li>Armazene animais em um lugar escuro e fresco depois de serem capturados e antes da exposição ao experimento de choque frio. Sempre exponha o animal ao tratamento experimental dentro de 24 horas após ser capturado, e padronize desta vez o máximo possível em ensaios.<ol>
<li>Embora as condições de armazenamento possam variar, mantenha os insetos fora do sol direto. Se possível, coloque-os dentro de um quarto fresco e escuro.</li>
		<li>No campo, certifique-se de que eles serão sombreados enquanto armazenados e são protegidos contra o vento (soprando) e outros predadores de insetos que podem entrar nos envelopes.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Configure o experimento de choque frio
<ol><li>Encha um refrigerador com gelo e água. Certifique-se de que há gelo suficiente para persistir por pelo menos uma hora, e adicione gelo periodicamente conforme necessário com o objetivo de manter o ambiente na água a 0 °C.</li>
	<li>Escolha entre 1 e 4 indivíduos focais para uma rodada de experimentação, certificando-se de que cada indivíduo é identificável.<ol>
<li>Se usar várias espécies, use apenas uma de cada para evitar confundir indivíduos na folha de dados. Se experimentar com apenas uma espécie, use apenas indivíduos que possam ser facilmente distinguidos, por exemplo por uma asa quebrada ou marcação distinta.</li>
		<li>Se o objetivo do experimento não estiver relacionado com a coloração das asas, marque as asas com IDs únicos (por exemplo, números) com um marcador fino de ponta de feltro para distinguir indivíduos.</li>
		<li>Se os experimentos não atenderem a nenhum dos critérios acima, realize o experimento em um indivíduo de cada vez.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preencha as linhas da ficha técnica com as informações pertinentes a cada inseto ensaio, incluindo seu ID exclusivo e um identificador útil nas notas, como nome da espécie ou caractere distinto(Tabela Suplementar 1).</li>
	<li>Coloque todos os indivíduos focais (ainda em seus envelopes marcados individualmente) em um saco plástico selado com peso (Tabela de Materiais),e coloque o saco em água gelada por 60 minutos (ou até que o coma frio tenha sido induzido; veja discussão) (Figura Suplementar 2).<ol>
<li>Certifique-se de que o peso é pesado (por exemplo, moedas grandes, arruelas grandes ou rochas lisas) e grande o suficiente para manter o saco de insetos submerso na água gelada e perpendicular à superfície da água. Use um peso que não cause vazamentos no saco plástico selado. NOTA: Enquanto os insetos ainda são capazes de se recuperar se forem expostos diretamente à água enquanto estão submersos, envelopes molhados complicam a remoção de cada indivíduo. É melhor manter os insetos secos em sua bolsa.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Registo de temperatura e luz.<ol>
<li>Use um gravador de dados (ver a Tabela de Materiais) para registrar dados de temperatura ambiente e luz usando a etapa 5.1 ou 5.2.<ol>
<li>Programe o data logger para coletar dados de temperatura e luz em intervalos de 10 s, começando no momento em que os insetos serão liberados.</li>
			<li>Basear o tempo de início do data logger sobre quando os insetos foram colocados na água gelada. Certifique-se de que as informações do data-logger (data, hora) sejam sincronizadas para que os dados sobre condições ambientais possam ser posteriormente combinados com cada inseto focal individual.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Use um termômetro simples para registrar dados de temperatura e luz em intervalos curtos à mão (por um segundo pesquisador).<ol>
<li>Decida sobre os parâmetros experimentais para associar ao tempo de recuperação que pode ser medido sem um data logger. Use tratamentos distintos: sombra/sol; crepúsculo/meio-dia.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Coloque uma gaiola de malha para os insetos em um local apropriado para que os ambientes de temperatura e luz sejam o mais homogêneos possível dentro da gaiola, e para que a base da gaiola seja elevada e possa ser aproveitada pelo observador.</li>
	<li>Coloque o data logger fora da gaiola, ou dentro da gaiola para que não seja derrubado ou afetado por pequenos movimentos dentro da gaiola. Se não estiver usando um data logger, posicione um termômetro adequadamente e/ou configure as gaiolas na configuração apropriada. NOTA: O gravador de dados deve ser colocado para que as condições ambientais registradas sejam o mais próximas possível daquelas que o inseto está experimentando.</li>
</ol>5. Comece o experimento de choque frio
<ol><li>Retire os animais do banho de água gelada após 60 min (ou tempo determinado apropriado; veja acima). Remova imediatamente os insetos do saco plástico e remova cada indivíduo do envelope o mais rápido possível, minimizando o manuseio(Figura Suplementar 3).</li>
	<li>Inicie o cronômetro assim que os animais estiverem nas gaiolas de malha (veja os dados do exemplo, Tabela Suplementar 1).</li>
	<li>Toque na base da gaiola com um lápis para agitar os insetos em recuperação. NOTA: Fornecer estímulos durante a recuperação garante que os insetos focais demonstrem estado de recuperação e comportamentos assim que forem fisiologicamente capazes(Vídeo Suplementar).<ol>
<li>Toque com frequência e força suficiente para garantir que um animal responda se possível, mas não cause uma resposta. NOTA: Por exemplo, ao tocar na gaiola, se um animal é catapultado para o ar e pousa ereto, mas não se move para ficar por conta própria, isso não é considerado um comportamento "stand", pois o organismo não se levantou sozinho.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Marque o teste como completo uma vez que um indivíduo tenha voado (ou seja, mostrado uma recuperação completa). Termine o teste e considere que o inseto conseguiu uma recuperação completa se ele não se mover após 30 min.</li>
	<li>Remova os insetos da gaiola de malha e coloque os indivíduos de volta em seus envelopes de vidro rotulados. Liberte os animais ou guarde-os para posterior coleta de dados (por exemplo, traços individuais de tamanho, peso).</li>
	<li>Se usar um data logger, pare a coleta de dados de data logger e salve o arquivo de dados de temperatura e luz durante o experimento com informações de data/hora apropriadas.</li>
</ol>6. Processamento de dados
<ol><li>Digite os dados apresentados a partir da folha de dados em uma planilha (por exemplo, MS Excel).</li>
	<li>Se usar um data-logger, adicione dados de temperatura e luz para cada resposta de cada indivíduo avaliado.<ol>
<li>Calcule o desvio médio e padrão da temperatura e da luz para cada comportamento de cada indivíduo. NOTA: Como o data logger registra dados a cada 10 s, se o comportamento de stand de um animal levou 48 s para ocorrer, use as primeiras 5 entradas do data logger para esse teste.</li>
		<li>Associe cada comportamento de recuperação de cada indivíduo com dados abióticos registrados pelo datalogger, arredondando para cima ou para baixo até intervalos de 10 s, conforme necessário.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Plote e analise dados. A Figura 1,por exemplo, visualiza o efeito da temperatura e da luz no tempo de recuperação do choque frio. Compile outros dados relevantes (características das espécies, características do habitat regional) para examinar os padrões ecológicos e evolutivos em traços fisiológicos dos grupos testados. NOTA: A figura 1 foi plotada usando o pacote ggplot2 em R. O nível de detalhamento dos dados sobre as condições ambientais difere com base nos instrumentos utilizados para medir as condições ambientais. Se um data logger for usado, podem ser gerados números com detalhes comparáveis à Figura 2. Se um termômetro for usado, o pesquisador não será capaz de criar um enredo informado pela luz ambiente. Da mesma forma, se os pesquisadores usarem categorias de luz ou temperatura, essas estações de dispersão podem ser modificadas em boxplots ou outro modelo apropriado para ilustrar esses fenômenos.</li>
</ol>

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</ol>

O autor não tem interesses financeiros concorrentes ou outros conflitos de interesses.

O estudo da fisiologia térmica incorpora medidas de espécies e traços ambientais para entender melhor as interações entre organismos e seus arredores que são fundamentais para a sobrevivência e o condicionamento físico. Embora sempre integrantes da compreensão da história natural e da ecologia de plantas e animais, os traços térmicos são de importância crescente diante da paisagem e das mudanças climáticas11,21. Vários grupos de insetos terrestres ectotérmicos, em particular, lepidoptera e odonatano, são relativamente grandes e abundantes, exibem comportamentos distintos e são favoráveis à manipulação. Delineado aqui é um ensaio eficiente e de baixo custo para medir efetivamente as respostas fisiológicas desses insetos. Este protocolo requer uma fonte de organismos saudáveis para avaliar, cujo tempo de manuseio antes do experimento é limitado. Embora flexível no número de organismos avaliados ao mesmo tempo, o número de indivíduos focais por experimento variará de acordo com a finalidade da coleta de dados e/ou número de observadores. 
Por exemplo, este protocolo foi desenvolvido para coletar dados individuais detalhados sobre borboletas em comunidades inteiras. Como tal, os resultados representativos ilustram um esforço para maximizar a coleta de dados para indivíduos do maior número possível de espécies e sob uma variedade de condições relevantes para o ambiente local. Independentemente do número de espécies focais, é crucial que o observador seja capaz de identificar cada indivíduo na gaiola que experimenta a recuperação. Se o objetivo é coletar dados de apenas uma espécie, então apenas um ou dois indivíduos (se identificáveis com base em desgaste de asa diferente ou se marcados individualmente) devem ser avaliados de uma só vez. Os sujeitos do estudo devem ser escolhidos de acordo com uma questão ou plano de estudo específico. Com base na questão colocada e na finalidade da coleta de dados (pesquisa ou sala de aula, por exemplo), o tamanho da amostra e a coleta de outros traços serão diferentes.
Para ilustrar os componentes fundamentais da fisiologia elucidados por este protocolo (indução de coma frio, etapas de recuperação, papel das condições ambientais), um instrutor de sala de aula pode escolher duas espécies distintas ou morfos de uma única espécie. Se os indivíduos focais diferem apenas em um traço-chave (por exemplo, cor), um tamanho amostral menor será necessário, e os alunos podem estudar de perto a relação desse traço e fisiologia do organismo. Pesquisadores interessados em fisiologia ecológica podem usar seus dados experimentais para explorar questões ecológicas e evolutivas complexas. Os pesquisadores devem ter certeza de escolher cuidadosamente insetos focais que abordam diretamente suas questões (por exemplo, com base na fase de vida, idade, sexo, localização) e, com base no número de variáveis envolvidas, determinar o tamanho adequado da amostra. Os tamanhos amostrais para modelos complexos serão maiores do que os descritos acima. 
Ao coletar dados de recuperação comportamental, é fundamental que a gaiola descanse acima do solo, pois o observador deve ser capaz de tocar na parte inferior da gaiola para provocar comportamentos de recuperação. Isso garante que o organismo responda (se levanta, voa) assim que for fisiologicamente capaz de fazê-lo, e o comportamento de recuperação terminal (voo) é documentado. O registro de condições ambientais durante a recuperação do choque frio é parte integrante do estudo da fisiologia térmica, pois este protocolo é projetado para estudar e desembaraçar o papel do ambiente na fisiologia do organismo. Os data loggers (ver a Tabela de Materiais) são úteis para registrar medidas padronizadas de condições relevantes (por exemplo, temperatura, luz e até umidade). No entanto, se essas ferramentas não estiverem disponíveis, condições relevantes podem ser medidas de outras formas, como com um termômetro digital ou simplificando a variável de condições ambientais e utilizando ambientes distintos como sombra e sol. Este protocolo dá ao pesquisador opções para medir as condições durante a recuperação de choque frio com base na finalidade e escopo do estudo.
Embora este método possa ser modificado para melhor atender a grupos taxonômicos específicos, recomenda-se que insetos grandes e volant sejam usados. Insetos voadores que recuperam sua capacidade de voar independentemente podem ser considerados como ter realizado uma recuperação completa. O método, como descrito, foi usado com sucesso em borboletas nos trópicos e subtrópicos. Com base nas tendências térmicas de uma determinada área (ou seja, a faixa de temperaturas experimentadas em um local que vai variar, influenciando assim as expectativas com base na elevação, latitude, cobertura do dossel), um organismo pode exigir mais ou menos de uma hora em um banho de água gelada para entrar em coma frio. O tamanho do organismo também pode afetar o tempo necessário para entrar em coma frio. É fundamental encontrar o tempo de exposição a frio necessário para induzir um coma frio (não se movendo), mas não matar espécies focais. O tempo necessário para induzir um coma frio dependerá do tamanho, localização e histórico/comportamento natural dos indivíduos. Com base nos resultados do experimento de choque frio descrito aqui e usando o conhecimento da ecologia dos insetos focais, escolha um tempo para concluir o ensaio se um determinado indivíduo não fizer uma recuperação completa. 
Com base nas questões específicas do pesquisador, esse método pode ser empregado tanto no campo quanto no laboratório para permitir a variação ambiental natural e o controle de variáveis importantes, respectivamente. Este ensaio é simples e barato e ajuda a preencher lacunas existentes no campo da fisiologia térmica. A facilidade deste protocolo torna acessível empregar para uma variedade diversificada de taxas, abrindo o campo para organismos mais do que amigáveis ao laboratório. A novidade da realização de um ensaio térmico padronizado, porém ambiente, preenche a lacuna entre os resultados laboratoriais e de campo22. Aproveitar as condições ambientais para a recuperação do organismo ajudará os pesquisadores a dividir o papel dos fatores ambientais e de espécies na fisiologia14,22. Finalmente, devido ao seu baixo custo e falta de materiais necessários, este protocolo pode ser usado em locais remotos no campo com pouco equipamento ideal para muitos biólogos de campo - bem como em salas de aula para permitir aos jovens estudantes uma experiência prática de aprendizagem.

A integração da fisiologia térmica e da ecologia no final da década de 1970 e início dos anos 19801,2 lançou o campo da fisiologia ecológica. Extensos estudos térmicos realizados em ectotherms destacam sinergias eco-fisiológicas em diversos contextos ecoevolutivos3,4,5. Pesquisas sobre fisiologia térmica de organismos ectotérmicos recuperaram a atenção recentemente diante das mudanças climáticas e das paisagens térmicas alteradas em todo o mundo6,7. Além de informar estudos no campo acadêmico da fisiologia ecológica, os ensaios de fisiologia térmica podem ser amplamente acessíveis aos pesquisadores e podem servir como uma abordagem prática de ensino para todos os níveis. Componentes do desempenho térmico, incluindo limites térmicos e efeitos de choques de temperatura, são fundamentais para a ecologia, comportamento e história de vida dos animais8,9.
Especificamente, os ecototherms são usados para abordar questões de fisiologia, pois a endotermia dita uma ligação inextricável entre temperatura ambiente e organismo. A faixa de temperatura que os organismos podem suportar (seu mínimo térmico crítico para a faixa máxima térmica) e as temperaturas em que seus comportamentos e condicionamento físico são maximizadas (optima térmica) são frequentemente enraizadas em processos ecológicos e evolutivos. Esses traços fisiológicos são de importância crescente, pois as temperaturas, tanto os meios quanto os extremos, estão aumentando10. Por exemplo, as mudanças abióticas, incluindo aumentos de temperatura, que acompanham a destruição e a fragmentação do habitat têm afetado comunidades de ectotherms, incluindo anurans, limitando espécies fisiologicamente frágeis (com tolerância térmica estreita) a pequenas manchas de habitatremanescentes 11,12.
Avaliar os principais componentes do desempenho térmico pode ser caro tanto em termos de tempo quanto de recursos e tradicionalmente requer equipamentos de laboratório e condições padronizadas. Além disso, ensaios convencionais muitas vezes não refletem a amplitude das condições ambientais experimentadas na natureza por um determinado animal13, pois a temperatura em experimentos fisiológicos semelhantes é cuidadosamente controlada e muitas vezes não relacionada às condições ambientais experimentadas por um animal. Este controle de temperatura pode diminuir a compreensão da variação nas respostas individuais2,14. Os fisiologistas têm se apoiado em experimentos de aquecimento e resfriamento baseados em laboratório, usando banhos de água programáveis para aquecer ou resfriar o ambiente de um animal para informar as curvas de desempenho térmico15.
Normalmente, os animais são colocados em frascos com um termopar, e sua temperatura ambiente é alterada constantemente, controlando a temperatura do banho de água circundante. Os pesquisadores medem o tempo necessário para alcançar um estado fisiológico alterado (por exemplo, coma frio, knockdown) e a temperatura em que a mudança de status ocorreu16,17. A partir de um mínimo de US$ 500, essas ferramentas são grandes, pesadas e requerem equipamentos técnicos adicionais (por exemplo, computador, termopares). Consequentemente, as ferramentas básicas para realizar métodos clássicos de avaliação do desempenho térmico são 1) não economicamente acessíveis a todos, 2) não são adequadas para avaliar animais grandes demais para serem contidos em frascos habituais usados para pequenos dipteranos, e 3) não portáteis para uso em configurações remotas de campo. A adesão à prática comum resultou em representação limitada entre a taxonomia e as condições experimentais18,19,20.
Embora as curvas de desempenho térmico completas possam informar a distribuição das espécies, traços históricos de vida e comportamento, entre outros traços, a quantificação de métricas térmicas cada vez mais simples pode ser mais eficiente e ainda extremamente informativa. Ensaios fisiológicos, medindo o início do coma frio e a subsequente recuperação de choque frio, o endurecimento a frio e o comportamento de redoeamento, são proxies eficazes e executáveis para o mínimo térmico crítico de um organismo8. Descrito aqui é um ensaio de choque frio útil para obter dados fisiológicos de grandes insetos ectoréricos terrestres. O ensaio é acessível, acessível e fácil de executar em condições de campo ou em sala de aula. Os dados sobre a recuperação de choque frio gerados por este protocolo podem ser associados a espécies ou dados de características de nível individual para buscar questões sobre fisiologia ecológica e/ou usados para ensinar os alunos sobre princípios fisiológicos.

<table><tbody><tr><td>24 x 24 x 36 " pop-up que levanta & Gaiola de Observação</td><td>Bioquip</td><td>1466PB</td><td>Certifique-se de que a gaiola esteja ligeiramente elevada do solo para poder bater no chão da gaiola durante os experimentos.</td></tr><tr><td>Cooler</td><td>Qualquer</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Envelopes Glassine</td><td>Bioquip</td><td>1130B</td><td></td></tr><tr><td>HOBO Pingente Temperatura/Luz 8K Data Logger</td><td>Onset</td><td>UA-002-08</td><td>Se um registrador de dados não estiver acessível, os pesquisadores podem optar por usar um termômetro digital para registrar a temperatura ambiente em intervalos regulares. Consulte a etapa 4.5 do protocolo para obter informações adicionais.</td></tr><tr><td>HOBO Optic USB Base</td><td>Station Onset</td><td>Base-U-1</td><td></td></tr><tr><td>Água gelada</td><td>NA</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Insetos (táxons focais)</td><td>NA</td><td></td><td>Coletar amostras suficientes para testar, garantindo a replicação de grupos experimentais (por exemplo, espécies, local de amostragem)Junta em</td></tr> <tr><td>T de PVC</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td></tr><tr><td>Saco plástico selável</td><td>Qualquer</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Cronômetro/cronômetro</td><td>Qualquer</td><td>peso NA</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Qualquer</td><td>NA</td><td>Moedas grandes ou pequenas pedras para pesar os sacos plásticos garantirão que as amostras sejam submersas em água gelada. Um peso padronizado é o ideal.</td></tr></tbody></table>

ensaio de fisiologia térmica baseada em campo: recuperação de choque frio em condições ambientais

Field-Based Thermal Physiology Assay: Cold Shock Recovery under Ambient Conditions

A fisiologia ecológica, particularmente dos ectotherms, é cada vez mais importante neste mundo em mudança, pois utiliza medidas de espécies e traços ambientais para explorar as interações entre organismos e seus arredores para entender melhor sua sobrevivência e aptidão. Os ensaios térmicos tradicionais são caros em termos de tempo, dinheiro e equipamentos e, portanto, são muitas vezes limitados a pequenos tamanhos de amostra e poucas espécies. Apresentado aqui é um novo protocolo que gera dados detalhados sobre o comportamento individual e a fisiologia de insetos grandes, volant, terrestres, usando o exemplo de borboletas. Este artigo descreve os métodos de um ensaio de recuperação de choque frio que pode ser realizado no campo em condições ambientais ambientais e não requer equipamentos laboratoriais caros. Este método tem sido usado para entender a estratégia de resposta e recuperação para o choque frio das borboletas tropicais, gerando dados individuais de nível em comunidades de borboletas inteiras. Esses métodos podem ser empregados tanto em ambientes de campo remoto quanto em salas de aula e podem ser usados para gerar dados fisiológicos ecologicamente relevantes e como ferramenta de ensino.

Os dados coletados neste protocolo permitem o exame e particionamento de variáveis importantes para a fisiologia organizacional. Por exemplo, tanto a temperatura quanto as condições de luz contribuem para a recuperação das borboletas do choque frio(Figura 1). O enredo tem o objetivo de explorar a interação entre condições ambientais e recuperação de choque frio. Usando borboletas capturadas de silvestre de ambas as armadilhas e redes, 181 espécies de borboletas demonstraram recuperação distinta do coma frio induzido por choque frio(Figura 2). Os dados apresentados na Figura 2 foram coletados por três observadores ao longo de aproximadamente cinco meses (janeiro, fevereiro, maio a julho de 2020) nos Andes colombianos. Experimentos sempre foram realizados na manhã após a coleta de borboletas. Com a máxima eficiência, foi possível que dois observadores observassem simultaneamente quatro borboletas cada, repetidas sete vezes (mínimo de 7,37 horas), resultando no teste de 56 indivíduos em uma única manhã. Isso permitiu uma grande quantidade de coleta de dados em comunidades de borboletas inteiras, incluindo e considerando dados sobre variação individual. Como os ensaios podem ocorrer em condições ambientais ambientais, as condições de recuperação são representativas de seus habitats e refletem a variação natural experimentada pelos organismos na natureza. A Figura 3 ilustra a sobreposição entre temperatura e condições de luz do experimento de recuperação de choque frio e condições em um pasto do qual algumas borboletas testadas foram coletadas.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62218/62218fig01.jpg"> Figura 1: Dispersos do tempo de recuperação (em segundos) de borboletas após choque frio. (A) Temperatura média e (B) média LUX (intensidade de luz) durante sua recuperação. As espécies são organizadas e coloridas pela Família. No geral, à medida que a luz e a temperatura aumentam, o tempo de recuperação do choque frio diminui, mostrando variabilidade em relação à taxa. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/62218fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62218/62218fig02.jpg"> Figura 2: Exemplo de resultados do ensaio de recuperação de choque frio em 181 espécies de borboletas dos Andes colombianos. Os dados representam o número de segundos que se passaram da remoção da borboleta do frio e quando ela foi capaz de voar. As espécies são organizadas e coloridas pela Família. Este número demonstra a amplitude taxonômica através da qual este experimento pode ser aplicado com sucesso, e a variedade de respostas de recuperação de choque frio entre as espécies. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/62218fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62218/62218fig03.jpg"> Figura 3: Temperatura ambiente e LUX durante ensaios de recuperação de choque frio. Parcela da temperatura ambiente (azul) e LUX (intensidade de luz, vermelho) como registrado por data loggers colocados nos pastos onde ocorreu a coleta de borboletas (cores claras, condições se estendem durante todo o dia) e condições durante testes de recuperação de choque frio (cores escuras, apenas horas da manhã). As condições de campo ambiente e as condições experimentais traçadas mostram a gama e média de condições experimentadas pelas borboletas ao longo de uma semana de amostragem e experimentação de campo. Os experimentos só foram realizados na madrugada (07:00-13:00 h), enquanto os dataloggers foram implantados no campo por uma semana (horário de verão, 06:00-18:00 h mostrado). Aqui é mostrada a sobreposição entre condições experimentais e condições ambientais experimentadas pelas borboletas, demonstrando a relevância ecológica da realização de ensaios fisiológicos em condições ambientais. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/62218fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
Figura suplementar 1: Procedimento para coleta de insetos focais-neste caso, borboletas-utilizando armadilhas van-someren iscas e redes ativas. As armadilhas eram iscas com peixes podres e iscas de frutas podres. Armadilha (sem isca) em segundo plano, em primeiro plano está um espécime em seu envelope único contra uma caixa de coleta de plástico azul. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/Jove%20supplement%20fig%201.jpg" target="_blank">Clique aqui para baixar este Arquivo.</a>
Figura suplementar 2: Sacos com até quatro borboletas individuais submersas em água gelada em um refrigerador. Sacos plásticos foram marcados com o tempo em que foram colocados na água gelada, para que experimentos de choque frio pudessem ser escalonados durante a manhã. Os sacos plásticos devem ser selados para evitar que os espécimes se molhem; no entanto, a inundação dos sacos e envelopes neste caso não teve efeito mensurável na recuperação das borboletas. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/jove%20supp%20fig%202.jpg" target="_blank">Clique aqui para baixar este Arquivo.</a>
Figura suplementar 3: Dois observadores coletam dados no campo. Cada gaiola de malha contém quatro borboletas únicas se recuperando de choque frio. A junta T de cloreto de polivinil na gaiola abriga o viga de dados para evitar a exposição direta ao sol ou à chuva. Cada observador tem um cronômetro que foi iniciado imediatamente após a borboleta soltar na gaiola. As gaiolas são elevadas por bancos, permitindo que os observadores agitar a base da gaiola para garantir que as borboletas respondam comportamentalmente o mais rápido possível fisiologicamente. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/jove%20sup%20fig%203.jpg" target="_blank">Clique aqui para baixar este Arquivo.</a>
Tabela suplementar 1: Exemplo de ficha técnica. A folha mostra o ID único de cada borboleta como atribuído no campo e distinguindo caracteres (nome da espécie, cores-chave) em notas. Também é registrada a posição dominante da borboleta (ou seja, qual lado da asa foi exposta ao sol) durante o período de recuperação, anotado como D (dorsal) ou V (ventral). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/62218_R1_Supp-table%201.xlsx" target="_blank">Clique aqui para baixar esta Tabela.</a>
Vídeo suplementar 1: Tocando na gaiola para recuperação de choque frio. À medida que as borboletas se recuperam, o observador toca a base da gaiola suavemente para induzir comportamentos assim que as borboletas são capazes. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62218/IMG_1712.MOV" target="_blank">Clique aqui para baixar este vídeo.</a>

Aqui, um protocolo acessível e de baixo custo é descrito para avaliar a recuperação de choque frio de borboletas em condições ambientais ambientais.

Ensaio de fisiologia térmica baseada em campo: recuperação de choque frio em condições ambientais

Ecological physiology, particularly of ectotherms, is increasingly important in this changing world as it uses measures of species and environmental ...

Este protocolo é um método de custo extremamente baixo de coleta de dados sobre fisiologia organística, de forma acessível e padronizada. Esta ferramenta pode ser usada para explorar a fisiologia em vários níveis. Pode ser empregado por biólogos de campo intrépidos, bem como crianças de escola.A principal vantagem dessa técnica é que ela se baseia em materiais prontamente disponíveis e é de baixo custo. Pode ser realizado em quase qualquer lugar e por pesquisadores com uma gama de conhecimentos e metas. Esse método pode fornecer insights sobre processos fisiológicos, comportamentais e ecológicos.À medida que as métricas-chave para obter uma resposta fisiológica são padronizadas, o método pode aumentar nossa capacidade de entender e comparar características-chave entre grupos de indivíduos, espécies e comunidades ecológicas. Manusear insetos sem danificá-los requer prática, mas a prática torna-se perfeito. Definir os parâmetros do seu experimento, como quanto tempo para manter insetos na água gelada, pode levar tempo e requer experimentação e compreensão de sua taxa focal.Demonstrando o procedimento comigo estarão Heather Rohrer e Matt Standridge, dois técnicos do laboratório do Daniel. Comece com a identificação das espécies de interesse, tendo em mente que cada grupo vai diferir no tempo que leva para induzir um coma frio. Com base no organismo e no uso de dados, escolha diferentes pontos de corte para o experimento se o indivíduo focal não voar.Realize um pré-julgamento em uma pequena amostra para determinar os parâmetros-chave, como o tempo necessário no gelo, para induzir um coma frio. Escolha um tempo de corte com base na ecologia da espécie. Tendo em mente que depois de muitos minutos de ser incapaz de voar, alguns insetos são levados por predadores.Coletar insetos usando métodos apropriados, como armadilhas iscas e redes entomológicas. Coloque cada indivíduo em um envelope de vidro separado com uma ID única e armazene os animais em um lugar fresco sombreado protegido de sol direto, vento e predadores. Sempre exponha o animal ao tratamento experimental dentro de 24 horas após ser capturado para padronizar esse tempo o máximo possível em ensaios.Encha um refrigerador com água e gelo suficiente para manter o ambiente na água a zero graus Celsius. Escolha entre um e quatro indivíduos focais para uma rodada de experimentação, certificando-se de que cada indivíduo é identificável. Ao usar várias espécies, use apenas uma de cada para evitar confusão.Se o experimento não estiver relacionado com coloração de asas, marque as asas com IDs únicos com um marcador de ponta de feltro fino para distinguir indivíduos. Se os experimentos não atenderem a nenhum dos critérios acima, realize o experimento em um indivíduo de cada vez. Preencha as linhas de ficha técnica com as informações sobre cada inseto avaliado, incluindo seu ID exclusivo e um identificador útil, nas notas.Coloque todos os indivíduos focais em um saco plástico selado com um peso e coloque o saco em água gelada por 60 minutos para induzir o coma frio. Use um termômetro simples para registrar a temperatura ambiente em intervalos curtos à mão. Se disponível, você pode registrar condições ambientais usando um data logger.Primeiro, conecte o data logger, vá ao dispositivo, inicie e selecione o dispositivo conectado clicando em Ok. Digite o nome do teste, selecione Temperatura e Intensidade da Luz e entre nas unidades. Defina o intervalo de registro para 10 segundos.Digite a data e a hora do experimento e selecione Delayed Start para iniciar o data logger no momento selecionado. Certifique-se de que as informações do data logger, incluindo a hora do dia, sejam sincronizadas com experimentos para que os dados sobre condições ambientais possam ser posteriormente combinados com cada inseto focal individual. Decida sobre os parâmetros experimentais, como se a recuperação ocorrerá à sombra ou ao sol, e observe esses tratamentos na ficha técnica.Coloque uma gaiola de malha para os insetos em um local apropriado para que os ambientes de temperatura e luz sejam homogêneos dentro da gaiola. Mantenha a base da gaiola elevada para que possa ser aproveitada pelo observador e coloque o data logger fora ou dentro da gaiola onde possa ser mantido intacto. Retire os animais do banho de água gelada após 60 minutos e remova imediatamente os insetos do saco plástico, em seguida, remova cada indivíduo de seu envelope rapidamente com o mínimo de manuseio e inicie o cronômetro assim que os animais estiverem na gaiola de malha.Toque na base da gaiola com um lápis com frequência e força suficiente apenas para agitar os insetos em recuperação sem causar uma resposta. Marque o julgamento como completo uma vez que um indivíduo tenha voado. Termine o teste e considere que o inseto não se recuperou se não se moveu após 30 minutos.Remova os insetos da gaiola de malha e coloque os indivíduos de volta em seus envelopes de vidro rotulados. Liberte os animais ou guarde-os para posterior coleta de dados e processe os dados conforme descrito no manuscrito do texto. Para acessar os dados ambientais registrados, conecte o gravador de dados HOBO de volta ao computador.Vá para leitura do dispositivo, selecione Stop Logging e salve os arquivos na pasta desejada como arquivos HOBO. Após a exibição de um pop-up, confirme as unidades dos parâmetros e selecione Plot para obter um gráfico para condições experimentais. Para exportar a tabela de dados, selecione Dados de tabela de exportação de arquivos e exporte-os como um arquivo CSV para salvar na pasta apropriada.Neste protocolo, a interação entre condições ambientais importantes para a fisiologia do organismo e a recuperação de choque frio foi explorada para espécies variáveis de borboletas. Observou-se que, à medida que a temperatura média do ensaio aumentava, o tempo de recuperação do choque frio diminuiu mostrando variabilidade entre os impostos. Da mesma forma, observou-se a relação inversa entre a intensidade média da luz do ensaio e o tempo de recuperação do choque frio, indicando que tanto as condições de temperatura quanto de luz contribuem para a recuperação das borboletas.181 espécies selvagens de borboletas coletadas por três observadores ao longo de cinco meses mostraram recuperação distinta do coma frio induzido pelo choque frio, destacando a amplitude taxonômica através da qual este experimento pode ser aplicado com sucesso. As condições de campo ambiente e as condições experimentais foram traçadas, demonstrando a relevância ecológica da realização de ensaios fisiológicos em condições ambientais. Ao executar este protocolo, certifique-se de prestar muita atenção a todos os indivíduos na gaiola de malha, pois as mudanças de comportamento podem ser sutis e acontecer rapidamente.Os dados gerados por este protocolo lançaram luz sobre os traços fisiológicos ecológicos dos organismos testados. Muitas outras características contribuem para a fisiologia do organismo, como tamanho, cor e filogenia. Dados sobre características adicionais explicarão e contextualizarão ainda medidas de recuperação de choque frio, somando-se ao contexto ecológico e histórico de vida dessas informações.Usei este método para caracterizar a fisiologia ecológica de comunidades inteiras de borboletas nos Andes colombianos. Como o protocolo é acessível, barato e simples o suficiente para ser implementado em ambientes rurais, os dados foram coletados em centenas de indivíduos em um curto período de tempo.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Procuramos definir a sinalização neural imunológico responsável por pré-condicionamento frio, como meios para identificar novos alvos para o desenvolvimento de terapias para proteger o cérebro antes do início da lesão. Apresentamos estratégias para esse trabalho que exigem sistemas biológicos, manipulações experimentais mais capacidades técnicas que são altamente reprodutíveis e sensíveis.

Estratégias para Estudo da neuroproteção de frio pré-condicionamento

Neste protocolo um método para medir refolding proteína intracelular após choque térmico é descrito. Este método pode ser usado para estudar foldases como chaperonas moleculares e seus co-fatores ou compostos capazes de influenciar a sua actividade. Firefly luciferase atividade é utilizado como repórter para medir a atividade refolding acompanhante.

Ensaio redobrando intracelular

Para estudar a relação entre homeostase proteica, estresse e envelhecimento, monitoramos as mudanças no dobramento proteico acompanhando a disfunção proteica, a localização da proteína na célula e a estabilidade proteica nos níveis organismo, celular e proteico, usando o metazoário geneticamente tratável Caenorhabditis elegans como sistema modelo.

Usando Caenorhabditis elegans como um sistema modelo para estudar a homeostase de proteínas em um organismo multicelular

O Ensaio Plantar a Frio (CPA) mede a capacidade de resposta ao frio entre 30 °C e 5 °C e também pode medir a adaptação ao frio. Este protocolo descreve como usar o CPA para medir a hipersensibilidade ao frio, analgesia e adaptação em camundongos.

Um método simples e barato para a determinação da sensibilidade Fria e Adaptação no Mice

Medições de engajamento do alvo de drogas são centrais para droga eficaz desenvolvimento e validação de sonda química. Aqui, detalhamos um protocolo para medição engajamento de droga-alvo utilizando imagens de conteúdo de alta em uma adaptação de microplacas-compatível do ensaio celular mudança térmica (CETSA).

Usando o índice elevado de imagem para quantificar o destino noivado em células aderentes

Aqui, caracterizamos as respostas de estresse proteotóxico celular no nematoide C. elegans medindo a ativação de repórteres transcritores fluorescentes e atribuindo sensibilidade ao estresse fisiológico.

Medições de Respostas de Estresse Fisiológico em C. Elegans

Aqui, protocolos padronizados são apresentados para avaliar a indução da resposta ao choque térmico (HSR) em elegans de Caenorhabditis usando RT-qPCR no nível molecular, repórteres fluorescentes no nível celular e a maioridade no nível do organismo.

Métodos padronizados para medir a indução da resposta de choque térmico em elegans caenorhabditis

Os limites térmicos podem prever os ambientes que os organismos toleram, que são informações valiosas diante das rápidas mudanças climáticas. Descritos aqui estão protocolos de alta produtividade para avaliar minima térmico crítico e tempo de knockdown de calor em insetos. Ambos os protocolos maximizam o rendimento e minimizam o custo dos ensaios.

Ensaios de alta taxa de limite térmico em insetos

Os efeitos distintos de diferentes graus de hipotermia na proteção do miocárdio não foram minuciosamente avaliados. O objetivo do presente estudo foi quantificar os níveis de morte celular após diferentes tratamentos de hipotermia em um modelo baseado em cardiomiócito humano, estabelecendo as bases para futuras pesquisas moleculares aprofundadas.

Avaliação in vitro da proteção do miocárdio após hipotermia-pré-condicionamento em um modelo de miócitos cardíacos humanos

O protocolo descreve o desenvolvimento de um modelo padronizado, repetível e pré-clínico de insolação exercional (EHS) em camundongos livres de estímulos externos adversos, como choque elétrico. O modelo fornece uma plataforma para estudos mecanicistas, preventivos e terapêuticos.

Um modelo pré-clínico de insolação exercional em camundongos

Este trabalho apresenta um método de extração rápida de RNA e comparação de nível de transcrição para análise da expressão gênica no tardígrado Hypsibius exemplaris. Usando lise física, este método de alto rendimento requer um único tardígrado como material de partida e resulta em produção robusta de cDNA para reação em cadeia da polimerase de transcrição reversa quantitativa (qRT-PCR).

Extração de RNA de animal único e tubo único para comparação dos níveis relativos de transcrição via qRT-PCR no Tardígrado Hypsibius exemplaris

Aprenda um protocolo de baixo custo para avaliar a recuperação de choque frio em borboletas em condições ambientais. Este método acessível utiliza materiais simples e fornece insights sobre respostas fisiológicas e ecológicas em campo.

Ensaio de fisiologia térmica baseada em campo: recuperação de choque frio em condições ambientais

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