Name: Um protocolo para bypass gástrico Roux-en-Y em ratos usando grampos lineares (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-08-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 58 s
Description: Aprenda a realizar bypass gástrico Roux-en-Y em ratos usando grampos lineares para criar uma bolsa gástrica reduzida. Este modelo reproduz a anatomia humana e permite estudar perda de peso e melhorias metabólicas com alta taxa de sobrevivência.

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Este estudo foi financiado pela American Society for Metabolic and Bariatric Surgery Research Award. A Ethicon graciosamente forneceu suturas, grampeadores e clipes. A pesquisa de doutorado do autor principal foi financiada pelo Programa de Pesquisadores Clínicos da Universidade de Alberta e pela Alberta Innovates Clinician Fellowship. Também gostaríamos de agradecer a Michelle Tran por sua ilustração médica da anatomia do RYGB.

Os protocolos de uso de animais foram aprovados pelo Comitê de Cuidados e Uso animal da Universidade de Alberta (AUP00003000). Consulte a Figura 1 para um diagrama demonstrando a anatomia RYGB.
1. Bypass gástrico Roux-en-Y
<ol><li>Preparação de animais e configuração operacional<ol>
<li>Uma semana antes da cirurgia, forneça aos ratos terapia de reidratação oral e dieta líquida, além de sua dieta sólida e água para aclimatá-los a esta nova dieta.</li>
		<li>Ratos rápidos com acesso apenas à água por 12-18 h antes da cirurgia.<ol>
<li>Certifique-se de que os ratos estão em jejum em uma plataforma de fio elevada para que eles não possam consumir material de cama.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Injete ratos com buprenorfina longa subcutânea (RS) a uma dose de 1 mg/kg imediatamente antes da cirurgia.</li>
		<li>Autoclave todos os instrumentos cirúrgicos, toalhas e cortinas.</li>
		<li>Limpe a superfície de operação, a almofada de aquecimento e o cone do nariz anestésico com 70% de etanol.</li>
		<li>Configure a superfície de operação com um microscópio operacional, máquina anestésica e suprimentos de uma maneira ergonômica para o cirurgião operacional.</li>
		<li>Use uma almofada de aquecimento regulada pela temperatura e estafina para 37 °C.</li>
		<li>Coloque uma cortina estéril ou toalha sobre a almofada de aquecimento.</li>
		<li>Encha um tubo cônico estéril de 50 mL com 0,9% de soro fisiológico.</li>
	</ol></li>
	<li>Indução e preparação anestésicos<ol>
<li>Induzir anestesia utilizando 4% de isoflurane conforme protocolos previamente estabelecidos15.</li>
		<li>Aplique pressão no pé traseiro dos quatro membros para garantir que não haja resposta à dor.</li>
		<li>Verifique se há anestesia adequada e taxa respiratória após cada 5 minutos.</li>
		<li>Aplique lubrificante em ambos os olhos para evitar a secagem.</li>
		<li>Raspar o cabelo do abdômen.</li>
		<li>Limpe o abdômen com uma solução povidone-iodo. Deixe a solução secar e se transforme em luvas estéreis.</li>
		<li>Drape o rato com uma abertura na cortina para expor o abdômen.</li>
		<li>Coloque instrumentos, suturas, cotonetes de algodão e uma seringa de 10 mL em um local que permita fácil acesso durante o procedimento.</li>
	</ol></li>
	<li>Laparotomia mediana<ol>
<li>Faça uma incisão de 3 cm na linha média superior do abdômen usando um bisturi, logo abaixo do processo xifoide como um marco.</li>
		<li>Usando tesoura, divida a fáscia e o peritônio, com o cuidado de ficar na linha média na linha alba para reduzir o sangramento do reto abdominus. Se houver sangramento, controle-o com térmica ou eletrocauteria.</li>
	</ol></li>
	<li>Mobilizando o estômago<ol>
<li>Usando dois cotonetes de algodão molhado, disseco sem rodeios os acessórios gástricos.</li>
		<li>Ao encontrar aderências densas, use cautery térmico para dividir os acessórios gástricos com cuidado para evitar cauterizar o estômago. Divida bruscamente o ligamento entre o estômago e o lobo hepático acessório para reduzir o risco de ruptura hepática com mobilização estomacal.</li>
		<li>Para vasos sanguíneos maiores, especialmente nas artérias gástricas curtas, ligadura usando sutura de polipropileno 6-0.</li>
		<li>Crie uma janela no lado distal direito do esôfago, mas proximal à artéria gástrica esquerda. Certifique-se de que um cotonete pode alcançar esta área posteriormente. O estômago é adequadamente mobilizado quando pode ser exteriorizado fora do abdômen.</li>
	</ol></li>
	<li>Identifique e divida o jejunum<ol>
<li>Identifique o ligamento de Treitz seguindo o jejunum proximally até observá-lo é apego ao mesocólon transversal.</li>
		<li>Meça 7 cm distally, identifique um local entre vasos mesenéricos e divida o intestino com micro tesoura. Evite as manchas de Peyer ao dividir o intestino. Tome cuidado para dividir apenas o intestino e não o mesentery.</li>
		<li>Coloque uma esponja limpa e salina encharcada antes de dividir o intestino para minimizar a contaminação.</li>
		<li>Verifique a presença de um pequeno navio de travessia na mesenteria na borda do intestino delgado e divida isso com cauteria para evitar sangramento.</li>
		<li>Continue a dividir o mesentery 1 cm em direção à base mesentérica.</li>
		<li>Identifique o jejunum proximal e distal. Coloque o jejunum proximal sob uma gaze molhada à direita do rato e o jejunum distal à esquerda do rato.</li>
	</ol></li>
	<li>Grampeando o estômago<ol>
<li>Insira um grampeador linear de 45 mm com altura de grampo de 3,5 mm através da linha branca do forestomach para criar uma bolsa menor. Espere por 10 s antes de disparar o grampeador.</li>
		<li>Coloque a pressão usando gaze nas linhas de grampo por 1 minuto para garantir hemostasia. Se a hemostasia não for alcançada apenas com pressão, o sangramento ao longo da linha de grampo é overdelo usando 6-0 figura de polipropileno de oito suturas.</li>
		<li>Realize um segundo fogo básico através do estômago na janela criada anteriormente. Espere por 10 s antes de disparar o grampeador. A pressão é mantida ao longo da linha de grampo para garantir a hemostasia, e pode ser necessário ovais.</li>
	</ol></li>
	<li>Gastrojejunostomia<ol>
<li>Faça uma gastrotomia imediatamente depois de grampear o estômago. Atrasos nisso podem causar distensão gástrica e aspiração, pois o estômago é descontínuo após o segundo grampo gástrico.</li>
		<li>Usando um bisturi de 11 lâminas, crie uma gastrotomia na bolsa distal. Expresse conteúdo gástrico através da gastrotomia. Isso é importante para evitar a distensão gástrica e a aspiração. Alonge esta gastrotomia usando micro tesoura para aproximadamente 5 mm. A gastrotomia é feita grande o suficiente para a ponta do cotonete de algodão só para caber.</li>
		<li>Mobilize a extremidade distal do jejunum adjacente à gastrotomia e coloque de tal forma que a mesenteria não seja torcida.</li>
		<li>Enquanto sutura a anastomose, certifique-se de que o intestino seja mantido úmido, cobrindo-o com gaze salina e reaplicando salino regularmente.</li>
		<li>Usando 6-0 polidioxina ou sutura de polipropileno, coloque uma sutura de permanência na margem inferior da anastomose e retraia suavemente usando um estalo. Amarre com três nós.</li>
		<li>Coloque uma sutura de permanência na margem superior da anastomose e retraia suavemente usando um estalo. Amarre com seis nós.</li>
		<li>Suturar o lado anterior da anastomose de forma contínua, levando mordidas de 1 mm de largura e 1 mm de distância com cuidado para evitar tomar o traseiro.</li>
		<li>Uma vez que a sutura tenha atingido a sutura inferior, amarre-as com mais seis nós.</li>
		<li>Uma vez que o lado anterior esteja completo, vire o intestino e o estômago e passe a sutura inferior através do defeito mesentérico. Reaplique o snap e retraia-se inferiormente.</li>
		<li>Para o lado posterior da anastomose, coloque a espessura total interrompida 6-0 suturas, 1 mm de largura e espaçada 1 mm de distância, com cuidado para evitar tomar o traseiro. Estes estão empatados com seis nós cada. NOTA: O lado anterior da anastomose é suturado de forma contínua, enquanto o lado posterior é feito de forma interrompida. Isso evita uma restrição potencial ou estenose associada a um fechamento circunferencial contínuo.</li>
		<li>Verifique se há vazamento empurrando suavemente conteúdo luminal através da anastomose. Se houver áreas com vazamento, reforce-as cuidadosamente com suturas interrompidas. Tome cuidado para evitar tomar a parede de trás ao reforçar com suturas extras.</li>
	</ol></li>
	<li>Jejunojejunostomia<ol>
<li>Da gastrojejunostomia, meça 20 cm distally.</li>
		<li>Crie uma jejunotomia no lado antimesenteric usando o bisturi de 11 lâminas. Evite fazer a jejunotomia sobre as manchas de Peyer.</li>
		<li>Este jejunotomia usando micro tesoura, de tal forma que é do mesmo tamanho do membro biliopancreatic. Certifique-se de que um cotonete só se encaixa dentro.</li>
		<li>Coloque o membro biliopancreatic de tal forma que não haja torção da mesenteria.</li>
		<li>Realize a anastomose de forma semelhante à gastrojejunostomia com suturas de 6-0 nos lados superior e inferior. O lado anterior é realizado com suturas contínuas, enquanto o lado posterior é realizado com suturas interrompidas.</li>
		<li>Certifique-se de que o intestino está úmido com soro fisiológico durante esta anastomose.</li>
		<li>Verifique se há vazamentos empurrando suavemente o conteúdo luminal através da anastomose. Se houver áreas com vazamento, reforce-as com suturas interrompidas.</li>
	</ol></li>
	<li>Reposicione o intestino e o estômago<ol>
<li>Certifique-se de que não há torção da bolsa, estômago remanescente ou fígado. Certifique-se de que o lobo esquerdo do fígado é anterior ao estômago e não preso atrás da bolsa, pois isso pode causar isquemia hepática compressiva.</li>
		<li>Posicione o intestino no abdômen em sua posição natural de tal forma que não haja torção.</li>
	</ol></li>
	<li>Fechamento abdominal<ol>
<li>Feche a fáscia com poliglactina 3-0 de forma contínua. Também pode ser utilizado 3-0 polidioxina.</li>
		<li>Feche a pele com 2-0 de seda de forma contínua.</li>
	</ol></li>
	<li>Emergência anestésico<ol>
<li>Diminua o isoflurane para zero, mas continue o oxigênio suplementar.</li>
		<li>Administre um anestésico local como um bloco de respingos na incisão.</li>
		<li>Administre 10 mL de dextrose subcutânea de 5% em soro fisiológico normal (D5NS) no tecido subcutâneo atrás do pescoço.</li>
		<li>Coloque uma coleira de rato elizabetano antes que o rato esteja totalmente acordado. Tome cuidado para encaixá-lo snugly, mas não muito apertado para causar desconforto. NOTA: A coleira é mantida até o dia 5 para evitar a deshiscência da ferida.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Cirurgia falsa
NOTA: A cirurgia falsa é realizada semelhante ao RYGB, no entanto, não são realizadas anastomosas.
<ol><li>Uma gastrotomia é criada e depois fechada com 6-0 polidioxina ou suturas de polipropileno.</li>
	<li>Uma jejunotomia é criada 7 cm distal no ligamento de Treitz e depois fechada com 6-0 polidioxina ou suturas de polipropileno.</li>
</ol>3. Cuidados pós-operatórios
<ol><li>Cuidados pós-operatórios<ol>
<li>Abrigar ratos individualmente e mantê-los em plataformas de arame elevado até que alimentos sólidos sejam reintroduzidos para evitar o consumo de roupas de cama e obstrução luminal. NOTA: A dieta pós-operatória é retomada gradualmente, pois o edema na gastrojejunostomia pode causar obstrução com a retomada precoce da dieta sólida.</li>
		<li>Inspecione os pés diariamente enquanto os ratos estão em plataformas de arame elevado para quaisquer alterações de pele.</li>
		<li>Mantenha os ratos na água e dieta de terapia de reidratação oral durante as primeiras 72 horas.</li>
		<li>Administre 10 mL de D5NS a cada 12 h para as primeiras 72 h.</li>
		<li>Administre buprenorfina de ação curta subcutânea a 0,01 mg/kg se os ratos parecerem estar com dor. A Escala de Careta de Ratos é usada para avaliar a dor16.</li>
		<li>No pós-operatório 3, adicione dieta líquida de roedores. Continue fornecendo água e terapia de reidratação oral.</li>
		<li>No pós-operatório 5, reinicie a dieta rica em gordura. Continue fornecendo água e dieta líquida. Remova a coleira elizabetano.</li>
		<li>No pós-operatório 7, descontinuar a dieta líquida.</li>
		<li>Remova as suturas da pele no pós-operatório 10-14.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>World Health Organization. Obesity and Overweight. , Available from: 
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</ol>

A Ethicon forneceu dois grampeadores de corte linear de 45 mm, várias recargas de grampeador de 3,5 mm e suturas de polipropileno 6-0. Os autores não têm outros conflitos de interesse para declarar.

O RYGB envolve a criação de uma pequena bolsa gástrica (menos de 30 mL), e a criação de um membro biliopancreatic e um membro Roux(Figura 1). Em humanos, o membro biliopancreatic é tipicamente de 30 a 50 cm e transporta secreções do remanescente gástrico, fígado e pâncreas. O membro Roux tem tipicamente 75 a 150 cm de comprimento e é o canal principal para alimentos ingeridos. O canal comum é o distal intestinal delgado restante para onde os dois membros se juntam e é onde ocorre a maioria d...

A obesidade e o diabetes tipo 2 tornaram-se epidemias mundiais1. Embora a perda de peso médico possa melhorar o diabetes em pacientes, aqueles com diabetes grave se beneficiam mais da cirurgia bariátrica. A cirurgia bariátrica tem se mostrado segura e eficaz na perda de peso e na melhoria ou cura do diabetes tipo2 ,3, mesmo naqueles com doença de longa data4. Procedimentos bariátricos metabólicos, como a atual cirurgia de bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB), induzem melhorias rápidas e sustentadas na homeostase de glicose, ao mesmo tempo em que reduzem a necessidade de medicamentos diabéticos5,6,7.
Após o RYGB, a melhora da homeostase da glicose ocorre rapidamente e é independente da perda de peso8. Duas teorias importantes foram propostas para explicar as mudanças metabólicas associadas à remissão do diabetes que ocorrem após a cirurgia metabólica. Primeiro, a hipótese hindgut postula que, após o bypass, maiores concentrações de nutrientes não digeridos atingem o intestino distal aumentando a liberação de hormônios como o GLP-1. Por outro lado, a hipótese do foregut sugere que contornar o intestino proximal reduz a secreção de hormônios anti-incretina. Ambos os efeitos podem levar à melhora precoce do metabolismo da glicose9.
Modelos animais têm o potencial de ser uma ferramenta poderosa para estudar esses mecanismos. No entanto, uma grande barreira na utilização de modelos de ratos ou ratos é a dificuldade técnica na realização desses procedimentos. A maioria dos estudos tem se apoiado nos modelos de ratos ou ratos10,11,12. Os modelos de mouse têm sido difíceis, pois o estômago do mouse é muito pequeno para usar dispositivos grampeador11, e as taxas de mortalidade são inaceitáveis, variando de 17 a 52%13. Em ratos, alguns protocolos permanecem tecnicamente difíceis de realizar devido à complexa ligadura de vasos gástricos antes de dividir o estômago12,14. Outros modelos dividem o estômago usando um grampeador, mas deixam uma bolsa grande não consistente com a anatomia humana pós RYGB11. Neste modelo, fornecemos instruções detalhadas sobre como executar RYGB usando grampeadores lineares em um modelo de rato resultando em uma bolsa gástrica mais de acordo com a anatomia humana. No geral, este procedimento foi associado a excelentes taxas de sobrevivência e desfechos metabólicos.

<table><tbody><tr><td>Suturas de Seda 2-0</td><td>Ethicon</td><td>K533</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Vicryl Suturas</td><td>Ethicon</td><td>J219H</td><td></td></tr><tr><td>4% Isoflurano</td><td>N/A</td><td>N/A Solução</td><td></td></tr><tr><td>de Dextrose a 5% e Cloreto de Sódio a 0,9% - 1000 mL</td> Tubos de Centrífuga <td>Cônicos Baxter</td><td>2B1064</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Suturas</td> Prolene <td>Fisher Scientific</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>6-0</td>Máquina Anestésica <td>Ethicon</td><td>8805H</td><td></td></tr><tr><td></td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Barbeador de Pêlos de Animais</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Solução Betadine</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Porta-agulha Castrojievo com trava 14 cm (curva suave)</td><td>Instrumentos de Precisão Mundial</td><td>503258</td><td></td></tr><tr><td>ECHELON FLEX Cortador Linear Endoscópico Articulado</td><td>Ethicon</td><td>Pinças Econômicas EC45A</td><td></td></tr><tr><td>#4</td><td>World Precision Instruments</td><td>501978</td><td></td></tr><tr><td>ENDOPATH ETS Cortador Linear Articulado 45mm Recarrega</td><td>Controlador</td> de Almofada de Aquecimento de Infravermelho Distante <td>Ethicon 6R45B</td><td></td></tr><tr><td>com almofada de aquecimento (15,2 cm L x 20,3 cm C), sonda de temperatura da almofada e 10 protetores de manga descartáveis e não estéreis Coleira</td><td></td><td></td> Elizabetana de Rato Grande Kent Scientific RT-0515 <td></td></tr><tr><td></td><td>Kent Scientific</td><td>EC404VL-10</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de Alimentação para Dieta Líquida (150 mL)</td>Suporte para Tubo de Alimentação para Dieta Líquida <td>Bio-Serv</td><td>9007</td><td></td></tr><tr><td>(curto ajustável)</td>Pinça Micro Mosquito <td>Bio-Serv</td><td>9015</td><td></td></tr><tr><td></td><td>World Precision Instruments</td><td>500452</td><td></td></tr><tr><td>Micro Scissors</td><td>World Precision</td><td>Instruments 503365</td><td></td></tr><tr><td>Dieta de rato, calorias com alto teor de gordura (60%), pellets macios</td><td>Bio-Serv</td><td>S3282</td><td></td></tr><tr><td>No. 11 Lâmina e cabo de bisturi</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>OPMI Microscópio Cirúrgico</td><td>Vario ZEISS</td><td>S88</td><td></td></tr><tr><td>Grade de Piso Elevado</td><td>Tecniplast</td><td>GM500150 Grade</td><td></td>de Piso Elevado</tr><tr><td>Dieta Líquida para Roedores, Lieber-DeCarli '82, Controle, 4 Litros/Saco</td><td>Bio-Serv</td><td>F1259</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Irrigação de Cloreto de Sódio 0,9% - 500 mL</td><td>Baxter</td><td>JF7633</td><td></td></tr><tr><td>Cotonetes Estéreis</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Campo Estéril</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Toalha Estéril</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Unidade de Cauterização Térmica</td><td>World Precision Instruments</td><td>501293</td><td></td></tr></tbody></table>

um protocolo para bypass gástrico roux-en-y em ratos usando grampos lineares

A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers

O bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) é comumente realizado para o tratamento de obesidade grave e diabetes tipo 2. No entanto, o mecanismo de perda de peso e mudanças metabólicas não são bem compreendidos. Acredita-se que múltiplos fatores desempenham um papel, incluindo redução da ingestão calórica, diminuição da absorção de nutrientes, aumento da saciedade, liberação de hormônios promotores da saciedade, mudanças no metabolismo do ácido biliar e alterações na microbiota intestinal.
O modelo RYGB de ratos apresenta uma estrutura ideal para estudar esses mecanismos. Trabalhos anteriores em modelos de camundongos tiveram altas taxas de mortalidade, variando de 17 a 52%, limitando sua adoção. Modelos de ratos demonstram mais reserva fisiológica ao estímulo cirúrgico e são tecnicamente mais fáceis de adotar, pois permitem o uso de grampeadores cirúrgicos. Um desafio com os grampeadores cirúrgicos, no entanto, é que eles muitas vezes deixam uma grande bolsa gástrica que não é representativa do RYGB em humanos. 
Neste protocolo, apresentamos um protocolo RYGB em ratos que resultam em uma pequena bolsa gástrica usando grampeadores cirúrgicos. Utilizando dois incêndios grampeador que removem oomaca florestal do rato, obtemos uma bolsa gástrica menor semelhante à que segue um típico RYGB humano. O grampeamento cirúrgico também resulta em melhor hemostasia do que divisão afiada. Além disso, o forestomach do rato não contém glândulas e sua remoção não deve alterar a fisiologia do RYGB.
A perda de peso e as alterações metabólicas na coorte RYGB foram significativas em comparação com a coorte falsa, com tolerância significativamente menor à glicose em 14 semanas. Além disso, este protocolo tem uma excelente sobrevida de 88,9% após o RYGB. As habilidades descritas neste protocolo podem ser adquiridas sem experiência microcirúrgica prévia. Uma vez dominado, este procedimento fornecerá uma ferramenta reprodutível para estudar os mecanismos e efeitos do RYGB.

Animais e moradia 36 ratos Wistar machos foram alojados em pares e foram alimentados com 60% de roedores estéreis com alta gordura a partir das seis semanas de idade(Figura 2). Com 16 semanas de idade, eles foram submetidos a RYGB ou cirurgia falsa. Após a primeira semana pós-operatória, os ratos foram retomados em uma dieta rica em gordura. Metade dos ratos foram eutanizados em 2 semanas após o operatório e a outra metade foi eutanásia em 14 semanas de pós-operatório.</p...

O bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) é realizado para tratar obesidade e diabetes. No entanto, os mecanismos subjacentes à eficácia do RYGB não são totalmente compreendidos, e os estudos são limitados pela dificuldade técnica que leva à alta mortalidade em modelos animais. Este artigo fornece instruções sobre como executar RYGB em ratos com altas taxas de sucesso.

Um protocolo para bypass gástrico Roux-en-Y em ratos usando grampos lineares

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is commonly performed for the treatment of severe obesity and type 2 diabetes. However, the mechanism of weight loss and ...

O bypass gástrico Roux-en-Y é um procedimento comumente realizado para o tratamento da obesidade grave e diabetes tipo 2. No entanto, os mecanismos exatos que contribuem para a perda de peso e a melhora metabólica não são bem compreendidos e acredita-se que vários fatores desempenham um papel. O modelo de bypass gástrico rat Roux-en-Y apresenta uma excelente estrutura para estudar esses mecanismos. Protocolo.Preparação de animais e armação operacional. Limpe o abdômen com uma solução povidone-iodo. Deixe a solução secar e se transforme em luvas estéreis.Drape o rato com uma abertura na cortina para expor o abdômen. Instrumentos, suturas, cotonetes de algodão e uma seringa de 10 mililitros são colocados em um local que permite fácil acesso durante o procedimento. Laparotomia mediana.Faça uma incisão de três centímetros na linha média superior do abdômen usando um bisturi, logo abaixo do processo xiphoide como um marco. Usando tesoura, divida a fáscia e o peritônio, com o cuidado de ficar na linha média na linha alba para reduzir o sangramento do reto abdominis. Se houver sangramento, controle-o com térmica ou eletrocauteria.Mobilizando o estômago. Usando dois cotonetes de algodão molhado, disseco sem rodeios os acessórios gástricos. Ao encontrar aderências densas, use cautery térmico para dividir os acessórios gástricos, com cuidado para evitar cauterizar o estômago.Divida bruscamente o ligamento entre o estômago e o lobo hepático acessório para reduzir o risco de ruptura hepática com mobilização estomacal. Para vasos sanguíneos maiores, especialmente nas artérias gástricas curtas, ligadura usando polipropileno 6-0. Crie uma janela no lado distal direito do esôfago, mas proximal à artéria gástrica esquerda.Certifique-se de que um cotonete pode alcançar esta área posteriormente. O estômago é adequadamente mobilizado quando pode ser exteriorizado fora do abdômen. Identifique e divida o jejunem.Identifique o ligamento de Treitz seguindo o jejunum proximally até observar seu apego ao mesocólon transversal. Meça sete centímetros distally, identifique um local entre vasos mesentéricos e divida o intestino com micro tesoura. Evite as manchas de Peyer ao dividir o intestino.Tome cuidado para dividir apenas o intestino e não o mesentery. Coloque uma esponja limpa e encharcada de soro fisiológico antes de dividir o intestino para minimizar a contaminação. Um pequeno vaso de travessia está tipicamente presente na mesenteria na borda do intestino delgado e isso é dividido com cautery para evitar sangramento.Continue a dividir o mesentery um centímetro em direção à base mesentérica. Identifique o jejunem proximal e distal. Coloque o jejunum proximal sob uma gaze molhada à direita do rato e o jejunum distal à esquerda do rato.Grampeando o estômago. Insira um grampeador de corte linear de 45 milímetros com 3,5 milímetros de altura de grampo através da linha branca do forestomach para criar uma bolsa menor. Espere 10 segundos antes de disparar o grampeador.Coloque a pressão usando gaze nas linhas de grampo por um minuto para garantir hemostasia. Se a hemostasia não for alcançada apenas com pressão, o sangramento ao longo da linha de grampo é overdelo usando 6-0 suturas de polipropileno de oito. Um segundo incêndio básico é então realizado através do estômago para a janela criada anteriormente.Espere 10 segundos antes de disparar o grampeador. A pressão é mantida ao longo da linha de grampo para garantir que a hemostasia e a ovação oversa possam ser necessárias. Gastrojejunostomia. Uma gastrotomia é feita imediatamente após grampear o estômago.Atrasos nisso podem causar distensão gástrica e aspiração, pois o estômago é descontínuo após o segundo grampo gástrico. Usando um bisturi de 11 lâminas, crie uma gastrotomia na bolsa distal. Expresse conteúdo gástrico através da gastrotomia.Isso é importante para evitar a distensão gástrica e a aspiração. Alonge esta gastrotomia usando micro tesoura para aproximadamente cinco milímetros. Expresse conteúdo gástrico através da gastrotomia.Mobilize a extremidade distal do jejunum adjacente à gastrotomia e coloque de tal forma que a mesenteria não seja torcida. Enquanto sutura a anastomose, certifique-se de que o intestino seja mantido úmido, cobrindo-o com gaze salina e reaplicando salino regularmente. Usando 6-0 polidioxina ou sutura de polipropileno, coloque uma sutura de permanência na margem inferior da anastomose e retraia suavemente usando um estalo.Amarre com três nós. Coloque uma sutura de permanência na margem superior da anastomose e retraia suavemente usando um estalo. Amarre com seis nós.Suturar o lado anterior da anastomose de forma contínua, levando mordidas de um milímetro de largura e um milímetro de distância com cuidado para evitar tomar o traseiro. Uma vez que a sutura tenha atingido a sutura inferior, amarre-as com mais seis nós. Uma vez que o lado anterior esteja completo, vire o intestino e o estômago e passe a sutura inferior através do defeito mesentérico.Reaplique o snap e retraia-se inferiormente. Para o lado posterior da anastomose, coloque a espessura total, interrompeu 6-0 suturas de um milímetro de largura e espaçada um milímetro de distância com cuidado para evitar tomar o traseiro. Estes estão empatados com seis nós cada.Note que o lado anterior da anastomose é suturado de forma contínua, enquanto o lado posterior é feito de forma interrompida. Isso evita uma restrição potencial ou estenose associada a um fechamento contínuo circunferencial. Verifique se há vazamentos empurrando suavemente conteúdo luminal através da anastomose.Se houver áreas com vazamento, reforce-as cuidadosamente com suturas interrompidas. Tome cuidado para evitar tomar a parede traseira ao reforçar com suturas extras. Jejunojejunostomia. Da gastrojejunostomia, meça 20 centímetros distally.Crie uma jejunotomia no lado antimesenteric usando o bisturi de 11 lâminas. Evite fazer a jejunotomia sobre as manchas de Peyer. Este jejunotomia usando micro tesoura de tal forma que é do mesmo tamanho do membro biliopancreatic.Certifique-se de que um cotonete só se encaixa dentro. Coloque o membro biliopancreatic de tal forma que não haja torção da mesenteria. Realize a anastomose de forma semelhante à gastrojejunostomia com suturas de 6-0 nos lados superior e inferior.O lado anterior é realizado com suturas contínuas, enquanto o lado posterior é realizado com suturas interrompidas. Certifique-se de que o intestino está úmido com soro fisiológico durante esta anastomose. Verifique se há vazamentos empurrando suavemente o conteúdo luminal através da anastomose.Se houver áreas com vazamento, reforce-as com suturas interrompidas. Reposicione o intestino e o estômago. Certifique-se de que não há torção da bolsa, estômago remanescente ou fígado.Certifique-se de que o lobo esquerdo do fígado é anterior ao estômago e não preso atrás da bolsa, pois isso pode causar isquemia hepática compressiva. Fechamento abdominal. Feche a fáscia com poliglactina 3-0 de forma contínua.Também pode ser utilizado 3-0 polidioxina. Feche a pele com 2-0 de seda de forma contínua. Resultados. Todas as coortes tiveram ganho de peso significativo no pré-operatório.Os ratos submetidos ao bypass gástrico Roux-en-Y tinham menor peso pós-operatório em uma dieta rica em gordura em comparação com ratos submetidos a uma cirurgia falsa. A mudança de peso pós-operatório em uma dieta rica em gordura foi estatisticamente significante em todos os pontos do pós-operatório. Houve melhor tolerância à glicose após o bypass gástrico Roux-en-Y com uma área inferior sob a curva durante o teste de tolerância à glicose intraperitoneal em comparação com a cirurgia falsa. Conclusão.Este procedimento utiliza grampeadores lineares em um modelo de rato para realizar um bypass gástrico Roux-en-Y, resultando em uma bolsa gástrica mais de acordo com a anatomia humana. No geral, este procedimento foi associado a excelentes taxas de sobrevivência e perda significativa de peso e efeitos metabólicos.

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