Name: Transdução Transitória das Formas Estrofes estropidas de Echinococcus granulosus (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-16T12:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 25 s
Description: Aprenda a técnica de transdução transiente em diferentes estágios de Echinococcus granulosus usando vetores lentivirais de terceira geração. Este método avança a pesquisa genética em parasitologia e doenças infecciosas.

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A pesquisa relatada nesta publicação foi apoiada pelo Elite Researcher Grant Committee sob o prêmio número 958680 do Instituto Nacional de Desenvolvimento de Pesquisa Médica (NIMAD), Teerã, Irã.

Este estudo foi aprovado pelo Instituto Nacional de Desenvolvimento de Pesquisas Médicas e pelo Comitê de Revisão de Ética em Pesquisa, nº 958680. Os lentivírus são classificados como organismos BSL-2; portanto, todos os procedimentos de cultura laboratorial neste protocolo foram realizados utilizando práticas laboratoriais estéreis e conduzidos sob uma coifa de fluxo laminar de acordo com as diretrizes do NIH. A Figura 1 demonstra uma apresentação esquemática do protocolo de estudo para as diferentes etapas de E. granulosus .
1. Coleta de cistos de hidátida
<ol><li>Recolher cistos de hidátínio hepático de ovelhas naturalmente infectadas rotineiramente abatidos em um matadouro.</li>
	<li>Esterilize completamente a superfície do cisto usando gaze estéril e 70% de álcool antes de aspirar os protoscolés (PSCs).</li>
	<li>Aspire 20-50 mL de fluido de hidátido em tubos cônicos estéreis de 50 mL.</li>
	<li>Depois de drenar, limpe o cisto com uma lâmina afiada, transfira a camada germinal em um tubo cônico estéril de 50 mL e agite-o por um curto período (~2 min) para aumentar a coleta de PSCs. Transfira a camada germinal para um novo tubo de 1,5 mL para caracterização molecular.</li>
	<li>Lave os PSCs 3-5x com soro fisiológico tamponado de fosfato (PBS).</li>
	<li>Observe os PSCs em eosina de 0,1% por 5 minutos para determinar a viabilidade do PSC sob um microscópio leve. Use PSCs com pelo menos 95% de viabilidade para cultura.</li>
	<li>Trate o PSC precipitado com 2 mL de pepsina (2 mg/mL, pH 2) por 15-20 min.</li>
	<li>Para isolar PSCs individuais, resuspenque o sedimento PSC em PBS e passe-o através de duas camadas de gaze estéril em um novo tubo cônico estéril de 50 mL. NOTA: Calcule a média de três contagens em 50 μL de sedimentos PSC usando um microscópio leve. Para ensaios subsequentes, use o valor estimado para determinar PSCs/μL. Cada isolado de cisto de hídida deve ser caracterizado com base em polimorfismos de nucleotídeos por métodos moleculares, como pcr-sequenciamento17 ou análise de curva de fusão de alta resolução18.</li>
</ol>2. Cultivo bifásico de PSCs de E. granulosus para obter vermes adultos
NOTA: Os PSCs isolados devem ser cultivados em condições estéreis sob um gabinete de fluxo laminar Classe II. Prepare as fases sólidas e líquidas do meio de cultura bifásica separadamente antes de prosseguir para os próximos passos19.
<ol><li>Prepare o meio de cultura bifásica para consistir em duas fases.<ol>
<li>
Para a fase sólida, adicione 10 mL de soro bovino a um frasco de 25 mL e deixe-o coagulado a 76 °C por 20-30 min.</li>
		<li>
Para a fase líquida (CMRL modificada), misture 100 mL de soro de bezerro fetal inativado a calor (FCS), 36 mL de extrato de levedura de 5%, 5,6 mL de 30% de glicose (em água destilada), 1,4 mL de 5% de bile de cão em PBS, tampão HEPES de 20 mM e 10 mM NaHCO3 em 260 mL de cmrl-1066 médio. Por fim, adicione penicilina (100 UI/mL) e estreptomicina (100 mg/mL) à mistura.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Adicione 10 mL do meio de fase líquida a cada frasco de culturade 25 cm 2 .</li>
	<li>Adicione ~5.000 PSCs ao frasco de cultura e transfira o frasco para a incubadora de CO2 (37 °C, 5% CO2).</li>
	<li>Após 24-48 h, transfira os PSCs para um novo frasco com a fase sólida (soro bovino) e adicione 1 mL do mesmo meio de fase líquida fresca por frasco. Transfira os frascos para a incubadora de CO2 (37 °C, 5% DE CO2).</li>
	<li>A cada 5 a 7 dias, substitua o meio por meio de fase líquida fresca com base em mudanças na cor do meio de cultura e na proporção estimada de PSCs diferenciados. NOTA: Os protoscolés respondem rapidamente às mudanças ambientais após serem cultivadas, e a maioria delas sofre diferenciação dentro de 2-3 semanas. Devido ao consumo de nutrientes e ao crescimento e desenvolvimento de protoscolés, o pH do meio cultural muda, e sua cor muda para laranja e amarelo.</li>
</ol>3. Cultivo monofásico de PSCs de E. granulosus
<ol><li>Certifique-se de que o cultivo monofásico seja feito 24-48 h antes da transdução.<ol>
<li>Cultura ~5.000 PSCs em um frasco de cultura de 25 cm2 com RPMI e 10% de soro bovino fetal (FBS).</li>
		<li>Transfira os frascos para a incubadora de CO2 (37 °C, 5% DE CO2) até usar.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Cultura celular para produção e preparação de vírus
NOTA: As células de rim embrionário humano 293T (HEK293T) foram obtidas para a produção de vetores do Centro de Pesquisa de Patologia e Células-Tronco da Universidade kerman de Ciências Médicas.
<ol><li>Transfira 5 ×10 células HEK293T para um frasco de25 cm 2 contendo 5 mL de DMEM com 10% de FBS, penicilina de 100 U/mL e estreptomicina de 100 μg/mL.</li>
	<li>Incubar as células HEK293T a 37 °C em 5% de CO2 e passá-las no meio de cultura completa a cada 48 h. Por fim, use células HEK293T de baixa passagem para transdução20.</li>
</ol>5. Produção e preparação do vírus com os vetores lentivirais de terceira geração
NOTA: O vetor de lentivírus pCDH513b (vetor de transferência) e PLPII, PLPI e PMD2G (vetores auxiliares) foram usados para expressar o gene repórter do GFP. Veja a Tabela de Materiais e Figura Suplementar S1.
<ol><li>Dia 1º:<ol>
<li>Depois de tentar experimentar as células HEK293T21 em placas de cultura de 6 poços, a semente 7 × 104 células por poço com DMEM fresco sem antibióticos contendo 10% de FBS.
</li>
		<li>Use células com confluência de 50%-60% para transdução pelo método fosfato de cálcio.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dia 2:<ol>
<li>Substitua o meio de cultura celular 2-3 h antes do experimento com DMEM fresco sem antibióticos contendo 2% de FBS.</li>
		<li>Em um tubo de 1,5 mL, misture os plasmídeos lentivirais de terceira geração, incluindo 7 μg/μL pCDH513b (vetor de transferência), 4 μg/μL PLPII, 4 μg/μL PLPI e 2 μg/μL PMD2G (vetores auxiliares).</li>
		<li>Adicione o buffer HEPES (0,28 M NaCl, 0,05 M HEPES e 1,5 mM Na2HPO4; faixa de pH ideal, 7,00-7,28) à mistura a um volume de 422 μL.</li>
		<li>Adicione 16 μL de 1% de tampão Tris-EDTA (TE) à mistura.</li>
		<li>Adicione 62 μL de cloreto de cálcio de 2,5 mM aos tubos e misture bem.</li>
		<li>Adicione 500 μL de soro fisiológico 2x com tampo de HEPES (HBS) à mistura, gota a gota, dentro de 1-2 min usando uma pipeta Pasteur. Misture suavemente até obter uma solução semi-opaca e incubar a mistura por 20 minutos à temperatura ambiente.</li>
		<li>Adicione a mistura a cada prato lentamente e distribua-a com movimentos circulares lentos.</li>
		<li>Incubar as placas a 37 °C em uma incubadora de CO2 de 5% e substituir o meio após 4-6 h por DMEM sem antibióticos contendo 10% de FBS.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dia 3:<ol>
<li>Confirme a transdução transitória bem sucedida e a viabilidade celular usando um microscópio de fluorescência invertida.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dia 4:<ol>
<li>Colher vírus do meio de cultura coletando o supernanato de cada poço e armazená-los a -70 °C até o uso. NOTA: As lentivírus colhidas podem ser concentradas e tituladas para transfecção precisa22.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. Transdução transitória de diferentes estágios de E. granulosus com o vírus
<ol><li>Dia 1º:<ol>
<li>Use uma placa de cultura de 12 poços para transferência de genes. Cultura 5 × 103-5 × 10 células HEK293T em triplicado, com meio DMEM completo como referência interna.</li>
		<li>Cultura 150 PSCs frescos em triplicado em RPMI e 10% FBS.</li>
		<li>Cultura 30 vermes estrogonofados em triplicado em DMEM contendo FBS 10% inativados pelo calor. NOTA: Todas as mídias de transdução devem ser livres de antibióticos. Mantenha três poços de controle não tratados para células HEK293T, PSCs e worms estrofes no processo.</li>
		<li>Prepare uma mistura de 1 × 106 vírus com reagente de transfecção de 4 μg/mL (ver a Tabela de Materiais) para transduzir as células HEK293T e diferentes estágios do verme.</li>
		<li>Adicione a mistura a cada prato lentamente e distribua-a com movimentos circulares lentos. Incubar as placas por 4-6 h em uma incubadora de CO2 (37 °C, 5% CO2). Substitua o meio por cada amostra pelo mesmo meio de cultura completo para minimizar os efeitos tóxicos do reagente de transfecção.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dia 2:<ol>
<li>Repita as etapas 6.1.4-6.1.5 para aumentar a eficiência da transdução transitória para as células HEK293T, PSCs e worms estrofiados.</li>
		<li>Incubar todas as placas por 24-48 h em uma incubadora de CO2 com as mesmas condições de cultura baseadas no tipo de mídia celular.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dia 3:<ol>
<li>Verifique se a transdução é bem sucedida usando microscopia de fluorescência. NOTA: Considere usar outros ensaios confirmatórios como PCR/qPCR20,23 ou ocidentais manchando24 técnicas no procedimento de transferência de genes.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Deplazes, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+distribution+of+alveolar+and+cystic+echinococcosis%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Global distribution of alveolar and cystic echinococcosis.</a> Advances in Parasitology. 95, 315(2017).</li>
<li>Borhani, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echinococcoses+in+Iran%2C+Turkey%2C+and+Pakistan%3A+Old+diseases+in+the+new+millennium%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Microbiology+Reviews%22%5BJournal%5D)">Echinococcoses in Iran, Turkey, and Pakistan: Old diseases in the new millennium.</a> Clinical Microbiology Reviews. 34 (3), 0029020(2021).</li>
<li>Eckert, J., Thompson, R. C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Historical+aspects+of+echinococcosis%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Historical aspects of echinococcosis.</a> Advances in Parasitology. 95, 1-64 (2017).</li>
<li>Romig, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ecology+and+life+cycle+patterns+of+Echinococcus+species%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Ecology and life cycle patterns of Echinococcus species.</a> Advances in Parasitology. 95, 213(2017).</li>
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<li>Deplazes, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+distribution+of+alveolar+and+cystic+echinococcosis%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Global distribution of alveolar and cystic echinococcosis.</a> Advances in Parasitology. 95 (1), 315(2017).</li>
<li>Tsai, I. I. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomes+of+four+tapeworm+species+reveal+adaptations+to+parasitism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The genomes of four tapeworm species reveal adaptations to parasitism.</a> Nature. 496 (7443), 57-63 (2013).</li>
<li>Koziol, U., Brehm, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+Echinococcus+genomics+and+stem+cell+research%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Recent advances in Echinococcus genomics and stem cell research.</a> Veterinary Parasitology. 213 (3-4), 92-102 (2015).</li>
<li>Zheng, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genome+of+the+hydatid+tapeworm+Echinococcus+granulosus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">The genome of the hydatid tapeworm Echinococcus granulosus.</a> Nature Genetics. 45 (10), 1168-1175 (2013).</li>
<li>Pérez-Victoria, J. M., Torres, A. P. T. C., Gamarro, F., Castanys, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ABC+transporters+in+the+protozoan+parasite+Leishmania%5BTitle%5D)+AND+%22International+Microbiology%22%5BJournal%5D)">ABC transporters in the protozoan parasite Leishmania.</a> International Microbiology. 4 (3), 159-166 (2001).</li>
<li>Ehrenkaufer, G. M., Singh, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+and+stable+transfection+in+the+protozoan+parasite+Entamoeba+invadens%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Biochemical+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Transient and stable transfection in the protozoan parasite Entamoeba invadens.</a> Molecular and Biochemical Parasitology. 184 (1), 59-62 (2012).</li>
<li>Moguel, B., Bobes, R. J., Carrero, J. C., Laclette, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transfection+of+Platyhelminthes%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Transfection of Platyhelminthes.</a> BioMed Research International. 2015, 206161(2015).</li>
<li>Tang, Y., Garson, K., Li, L., Vanderhyden, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+lentiviral+vector+production+using+polyethylenimine-mediated+transfection%5BTitle%5D)+AND+%22Oncology+Letters%22%5BJournal%5D)">Optimization of lentiviral vector production using polyethylenimine-mediated transfection.</a> Oncology Letters. 9 (1), 55-62 (2015).</li>
<li>Mann, V. H., Suttiprapa, S., Rinaldi, G., Brindley, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+transgenic+schistosomes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Establishing transgenic schistosomes.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 5 (8), 1230(2011).</li>
<li>Balcaitis, S., Weinstein, J. R., Li, S., Chamberlain, J. S., Möller, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lentiviral+transduction+of+microglial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Lentiviral transduction of microglial cells.</a> Glia. 50 (1), 48-55 (2005).</li>
<li>Sastry, L., Johnson, T., Hobson, M. J., Smucker, B., Cornetta, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Titering+lentiviral+vectors%3A+comparison+of+DNA%2C+RNA+and+marker+expression+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Titering lentiviral vectors: comparison of DNA, RNA and marker expression methods.</a> Gene Therapy. 9 (17), 1155-1162 (2002).</li>
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</ol>

Os autores não têm conflitos de interesse para divulgar.

Compreender a base molecular de nematoides e platyhelminthes biologia é crucial para entender a patogenicidade dos parasitas zoonóticos27. A falta de um sistema de avaliação genética eficaz é um grande obstáculo para a interpretação direta da genética funcional dos parasitas cestode, incluindo a espécie Echinococcus 12,27. O presente estudo demonstra o excelente potencial do lentivírus na transdução transitória de E. granulosu...

A echinocococcose cística (CE) é uma das doenças helmintos mais importantes causadas pelo Echinococcus granulosus, uma pequena tênia dentro da família Taeniidae 1,2. Foram realizados estudos extensivos sobre o desenvolvimento de imunodiagnósticos e vacinas para e. granuloso. No entanto, o conhecimento inadequado sobre a base molecular da biologia dos parasitas apresenta grandes limitações no diagnóstico, manejo e prevenção da doença hídida 3,4,5,6.
Nos últimos anos, devido ao desenvolvimento de sequenciamento de genomas e métodos transcriptômicos, uma ampla gama de estudos moleculares têm sido realizados em flatworms por vários grupos de pesquisa 7,8,9. No entanto, no mundo dos parasitas, os avanços na tecnologia de transferência de genes em flatworms parasitas ainda são limitados em comparação com os métodos de transdução transitório altamente reprodutíveis desenvolvidos para alguns protozoários 10,11,12.
O uso de sistemas de entrega viral emergiu como uma ferramenta essencial para a entrega de transgenes e investigações de genes/proteínas nas últimas duas décadas13. O lentivírus infecta células divisórias e não-divisórias, possibilitando infectar células pós-médicos 14,15,16. Evidências recentes indicam que o uso de um sistema de transdução baseado em lentivírus em células de mamíferos oferece o potencial de superar a maioria das limitações das técnicas anteriores de knock-in/knock-down. O desenho e construção de vetores lentivirais de expressão com marcadores moleculares apropriados, como a expressão GFP, foram descritos anteriormente16. Portanto, avaliamos a transdução transitória lentiviral de um gene repórter GFP nas protoscolés e vermes estroboscópicos de E. granulosus.

<table><tbody><tr><td>Placas de cultura de 12 poços</td><td>SPL Life Sciences</td><td>30012</td><td></td></tr><tr><td>25 cm2 frasco de cultura</td><td>SPL Life Sciences</td><td>70325</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultura de 6 poços</td><td>SPL Life Sciences</td><td>30006</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto</td><td>de cálcio Sigma-Aldrich</td><td>C4901-500G</td><td>Concentração de trabalho: 2,5&nbsp; mM</td></tr><tr><td>CMRL 1066 médio</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11530037</td><td></td></tr><tr><td>CO2 incubadora</td><td>memmert</td><td>ICO150</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-glicose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8270-1KG</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Life Technology</td><td>12100046</td><td></td></tr><tr><td>bile</td><td></td><td></td> de cão <td>Isolado de um cão eutanasiado e esterilizado por 0,2 &mu; m filtro de seringa</td></tr><tr><td>Eosin Y</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E4009-5G</td><td>prepara 0,1% de Eosin para teste de exclusão de trabalho</td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino (FBS)</td><td>DNAbiotech</td><td>DB9723-100ml</td><td>Inativação por calor&nbsp; de&nbsp; FBS (30 min em 40 &graus; C)</td></tr><tr><td>Soro de Bezerro Fetal (FCS)</td><td>DNAbiotech</td><td>DB9724-100ml</td><td>Inativação por calor&nbsp; de&nbsp; FCS (30 min em 40 &deg; C)</td></tr> <tr><td>Células HEK293T</td><td>BONbiotech</td><td>BN_0012.1.14</td><td>Rim embrionário humano 293T</td></tr><tr><td>HEPES tamponado com solução salina (HBS)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>51558-50ML</td><td>2x</td></tr><tr><td>concentrado Microscópio de fluorescência invertida</td><td>OLYMPUS</td><td>IX51</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3032-10MU</td><td>Concentração de trabalho: 100 UI / mL</td></tr><tr><td>Pepsina</td><td>Roche</td><td>10108057001</td><td>Concentração de trabalho: 2 mg/mL, pH 2</td></tr><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato (PBS)</td><td>DNAbiotech</td><td>DB0011</td><td>Este reagente resolve em menos de 1 min em D.W</td></tr><tr><td>Polybrene (reagente de transfecção)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>TR-1003-G</td><td></td></tr><tr><td>Meio RPMI</td><td>BioIdea</td><td>BI-1006-05</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato de sódio (NaHCO3)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Streptomycin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9137-25G</td><td>Concentração de trabalho: 100 &mu; g/mL</td></tr><tr><td>Plasmídeo lentiviral de terceira geração (pCDH513b)</td><td>SBI System Biosciences (BioCat GmbH)</td><td>CD513B-1-SBI</td><td>Vetor de transferência (obtido comercialmente do Departamento de Pesquisa em Medicina Molecular do Centro Acadêmico Iraniano de Educação, Cultura e Pesquisa (ACECR), Mashhad, Irã)</td></tr><tr><td>Plasmídeo lentiviral de terceira geração (pLPI e pLPII)</td><td>Invitrogen (Life Technologies)</td><td>K4975-00</td><td>Vetor auxiliar (obtido comercialmente do Departamento de Pesquisa em Medicina Molecular do Centro Acadêmico Iraniano de Educação, Cultura e Pesquisa (ACECR), Mashhad, Irã)</td></tr><tr><td>Plasmídeo lentiviral de terceira geração (pMD2G)</td><td>Addgene</td><td>Plasmid 12259</td><td>Vetor auxiliar (obtido comercialmente do Departamento de Pesquisa em Medicina Molecular do Centro Acadêmico Iraniano de Educação, Cultura e Pesquisa (ACECR), Mashhad, Irã)</td></tr><tr><td>Tampão Tris/EDTA (TE)</td><td>DNAbiotech</td><td>DB9713-100ml</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9935-50MG</td><td>1x soluções de trabalho (pH 7.4&ndash; 7.6)</td></tr></tbody></table>

transdução transitória das formas estrofes estropidas de echinococcus granulosus

Transient Transduction of the Strobilated Forms of Echinococcus granulosus

A echinocococose cística ou doença hídátida é uma das doenças parasitárias zoonóticas mais importantes causadas pelo Echinococcus granulosus, uma pequena tênia abrigada no intestino dos caninos. Há uma necessidade urgente de pesquisa genética aplicada para entender os mecanismos da patogênese e controle e prevenção de doenças. No entanto, a falta de um sistema de avaliação genética eficaz impede a interpretação direta da genética funcional dos parasitas cestode, incluindo as espécies de Echinococcus . O presente estudo demonstra o potencial da transdução transitória de genes lentiviral nas formas metacestode e estrobólicas de E. granulosus. Os protoscolés (PSCs) foram isolados de cistos de hidátíndicos e transferidos para meios específicos de cultura bifásica para se desenvolverem em vermes estrofiados. Os vermes foram transfectados com lentivírus de terceira geração colhidos, juntamente com células HEK293T como um controle de processo de transdução. Uma fluorescência pronunciada foi detectada nos vermes estroboscópicos ao longo de 24 h e 48 h, indicando transdução lentiviral transitória em E. granulosus. Este trabalho apresenta a primeira tentativa de transdução transitória baseada em lentivírus em tênias e demonstra os resultados promissores com potenciais implicações em estudos experimentais sobre biologia de vermes planos.

Aqui, descrevemos uma técnica de transdução transitória rápida e eficiente em E. granulosus usando vetores lentivirais de terceira geração. Nós cultuamos PSCs em um meio de cultura bifásica para obter vermes estrofes, como descrito anteriormente25,26. Protoscolés se desenvolvem em vermes estrobofâneos após 6 semanas in vitro. Diferentes estágios de E. granulosus foram observados no meio de cultura bifásica, incluindo PSCs invaginados (<...

Descrevemos uma técnica de transdução transitória rápida em diferentes estágios de desenvolvimento do Echinococcus granulosus usando vetores lentivirais de terceira geração.

Transdução Transitória das Formas Estrofes estropidas de Echinococcus granulosus

Cystic echinococcosis or hydatid disease is one of the most important zoonotic parasitic diseases caused by Echinococcus granulosus, a small tapeworm ...

Transação transitória das formas estroboscópicas de Echinococcus granulosus. Descrevemos uma técnica de transdução transitória rápida em diferentes estágios de desenvolvimento do Echinococcus granulosus usando vetores lentivirais de terceira geração. A echinocococose cística ou doença hídátida é uma das doenças parasitárias zoonóticas mais importantes causadas pelo Echinococcus granulosus, uma pequena tênia abrigada no intestino dos caninos.Há uma necessidade urgente de pesquisa genética aplicada para entender mecanismos de patogênese e controle e prevenção de doenças. No entanto, a falta de um sistema de avaliação genética eficaz impede a interpretação direta da genética funcional dos parasitas cestode, incluindo as espécies de Echinococcus. Os avanços na transferência de genes em flatworms parasitas ainda são limitados em comparação com o parasita protozoário.O uso do sistema de entrega viral surgiu como uma ferramenta essencial para a entrega de transgenes e a investigação de genes/proteínas nas últimas duas décadas. Então avaliamos a transidução transitória lentiviral do gene repórter GFP para os protoscolés e vermes estrofes de Echinococcus granulosus. A Figura 1 demonstra uma

transient-transduction-strobilated-forms-echinococcus

Research

JoVE Journal

Genetics

Genética

Embriões do zebrafish transparente provaram anfitriões modelo útil para visualizar e interações de estudo funcional entre as células imunes inatas e patógenos bacterianos intracelulares, tais...

A infecção de embriões de zebrafish com patógenos bacterianos intracelulares

Encaminhar a genética é um método poderoso para desvendar a nível molecular de...

A tela de genética para isolar Toxoplasma gondii Host de células mutantes egresso

Neste vídeo, descrevemos a nucleofecção, um procedimento de transfecção baseado em eletroporação para fornecer DNA de plasmídeo codificador de proteína repórter fluorescente na forma de esporozoíto do parasita Eimeria de galinha.

Nucleofecção de formas de parasitas: um método de transfecção baseado em eletroporação para entregar plasmídeos codificadores de proteínas fluorescentes no núcleo do esporozoíto

Estudar os primeiros eventos de progressão de células pré-neoplásicas e interação célula imune inato é fundamental para compreender e tratar o câncer. Aqui nós descrevemos um método para induzir condicionalmente transformações de células epiteliais e do subsequente imagens ao vivo de interação célula imune inato com HRAS G12V expressando células da pele em larvas do peixe.

Imagens ao vivo da imunológica inata e pré-neoplásicas Interações de células utilizando um / UAS Expression System Inducible Gal4 em larvas de peixe-zebra da pele

Aqui, fornecemos um método para alcançar a transfecção estável de parasitas de frango Eimeria por nucleofecting esporozoitas ou merozoitas de segunda geração. Parasitas eimerianos geneticamente modificados expressando genes antigênicos heterologous poderiam ser usados como veículos de entrega de vacinas.

Nucleofection e In Vivo Propagação de Parasitas de Eimeria de Frango

O kit de ferramentas genômicas funcionais para os nematoides parasitéticos Strongyloides stercoralis e Strongyloides ratti inclui transgênese, mutagênese mediada por CRISPR/Cas9 e RNAi. Este protocolo demonstrará como usar a microinjeção intragonadal para introduzir componentes transgenes e CRISPR em S. stercoralis e S. ratti.

Geração de Transgênicos e Nocautes em Espécies Strongyloides por Microinjeção

A eletroporação é um método rápido e amplamente adotado para a introdução de DNA exógeno no gênero Rickettsia. Este protocolo fornece um método de eletroporação útil para a transformação de bactérias intracelulares obrigatórias no gênero Rickettsia.

Um método de eletroporação para transformar Rickettsia spp. com um vetor shuttle fluorescente de expressão de proteínas em linhagens celulares de carrapatos

Este estudo apresenta um protocolo detalhado para a realização de microscopia de expansão ultraestrutural em três estágios do ciclo de vida in vitro do Trypanosoma cruzi, o patógeno responsável pela doença de Chagas. Incluímos a técnica otimizada para proteínas do citoesqueleto e marcação de pan-proteoma.

Microscopia de Expansão Ultraestrutural em Três Estágios do Ciclo de Vida In Vitro do Trypanosoma cruzi

Este protocolo descreve uma metodologia para transfectar trofozoítos de Naegleria gruberi com uma construção que é mantida durante a passagem de trofozoítos in vitro, bem como por meio de encistamento e excistamento.

Transfecção de um clone molecular de rDNA de Naegleria gruberi em trofozoítos de N. gruberi

Aqui, descrevemos as condições de cultivo in vitro , isolamento e aumento da geração de vesículas extracelulares (EVs) de Echinococcus granulosus. Os pequenos EVs foram caracterizados por espalhamento dinâmico de luz e microscopia eletrônica de transmissão. A captação por células dendríticas derivadas da medula óssea e sua modulação fenotípica foram estudadas por meio de microscopia confocal e citometria de fluxo.

Isolamento e captação de células dendríticas de pequenas vesículas extracelulares de Echinococcus granulosus

Aprenda a técnica de transdução transiente em diferentes estágios de Echinococcus granulosus usando vetores lentivirais de terceira geração. Este método avança a pesquisa genética em parasitologia e doenças infecciosas.

Transdução Transitória das Formas Estrofes estropidas de Echinococcus granulosus

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