August 2nd, 2021
Aqui, é apresentado um fluxo de trabalho experimental que permite a detecção do processamento caspase-8 diretamente no complexo de sinalização indutor de morte (DISC) e determina a composição desse complexo. Essa metodologia possui amplas aplicações, desde a desvendação dos mecanismos moleculares das vias de morte celular até a modelagem dinâmica das redes de apoptose.
A iniciação da apoptose é mediada pela ativação de caspases em plataformas moleculares marcadoras. Apresentamos a detecção do disc complexo de morte celular de iniciação chave, que serve como uma plataforma para ativação caspase-8. A vantagem dessa técnica é que permite a detecção do conjunto e a composição do complexo disc, juntamente com o fornecimento de informações sobre o processamento caspase-8 neste complexo.
Comece o experimento com células que são de 80% a 90% confluentes e aderentes ao prato. Descarte o meio e adicione meio fresco às células aderentes. Em seguida, estimule as células com a concentração selecionada de CD95L segurando a placa em um ângulo e encalhando o ligante para o meio sem tocar nas células aderentes.
Para colher as células, coloque o prato de célula no gelo. Adicione 10 mililitros de PBS frios à suspensão da célula e raspe as células anexadas da placa. Colete a suspensão celular em um tubo de 50 mililitros.
Lave o prato da célula com 10 mililitros de PBS frio duas vezes e adicione a solução de lavagem no mesmo tubo de 50 mililitros. Em seguida, centrifugar a suspensão celular a 500 vezes G por cinco minutos a quatro graus Celsius. Depois de descartar o supernasce, resuspenque a pelota celular em um mililitro de PBS frio.
Em seguida, transfira a suspensão celular para um tubo de 1,5 mililitro. Centrifugar a suspensão celular e resuspensar a pelota celular em um mililitro de PBS frio novamente. Repita a centrifugação mais uma vez, depois resuspense a pelota celular em um mililitro de tampão de lise e incuba-a por 30 minutos no gelo.
Após a incubação, centrifute o lysate em velocidade máxima por 15 minutos a quatro graus Celsius, em seguida, transfira o sobrenante para um tubo limpo. Descarte a pelota e colete uma amostra de 50 microliter do lysate em outro tubo para determinar a concentração proteica. Para imunoprecipitação, adicione dois microliters de anticorpo anti-APO1 e 10 microlitres de contas de proteína sepharose preparadas ao lise.
Adicione 10 microliters das contas sozinhos a um tubo separado contendo o lysate para servir como um controle de contas. Incubar a mistura contendo o liseto, os anticorpos e as contas de proteína sepharose durante a noite a quatro graus Celsius com mistura suave. No dia seguinte, centrifufique a mistura a 500 vezes G por quatro minutos a quatro graus Celsius.
Depois de descartar o supernasce, lave as contas adicionando um mililitro de PBS frio e descartando o supernatante após centrifugação. Repita este passo pelo menos três vezes. Depois de descartar a última lavagem PBS, aspire as contas de preferência com uma seringa Hamilton de 50 microliter.
Para executar a mancha ocidental, adicione 20 microliters de tampão de carregamento 4X às contas e aqueça a 95 graus Celsius por 10 minutos. Simultaneamente, aqueça os controles de lise a 95 graus Celsius durante cinco minutos. Carregue os lises, imunoprecipitantes e um padrão de proteína em um gel SDS de 12,5% e execute com uma tensão constante de 80 volts.
Após a execução do gel, transfira as proteínas do gel SDS para uma membrana nitrocelulose. Após a transferência estiver completa, coloque a membrana manchada em uma caixa e incuba-a por uma hora na solução de bloqueio sob agitação suave, depois lave a membrana três vezes por cinco minutos com PBST. Para detectar as proteínas, adicione o primeiro anticorpo primário na diluição indicada à membrana e incuba-o durante a noite a quatro graus Celsius com agitação suave.
No dia seguinte, lave a membrana com três lavagens PBST de cinco minutos, depois incuba a membrana com 20 mililitros de anticorpo secundário com agitação suave por uma hora à temperatura ambiente. Lave a membrana três vezes com PBST novamente. Depois de descartar a última lavagem PBST, adicione aproximadamente um mililitro de substrato de peroxidase de rabanete à membrana e detecte o sinal de quimioluminescência.
Estimulação do câncer cervical As células HeLa-CD95 com CD95L resultaram em um alto nível de formação de DISCO CD95 monitorado via imunoprecipitação CD95. CD95, FADD, procaspase-8, procaspase-10 e c-FLIPS foram observados nessas imunoprecipitações CD95 indicando formação eficiente de DISCOs. Os produtos de decote de p43-FLIP e p22-FLIP foram detectados nas imunoprecipitações, indicando ativação do invólucro-8.
Células HeLa-CD95 que expressam por longo tempo c-FLIP foram utilizadas para análise da formação de DISCO CD95. Semelhante às células HeLa-CD95 parentais, não foi detectado o recrutamento de FADD, procaspase-9, procaspase-10, proteínas c-FLIP e PARP1 nas imunoprecipitações dessas células sem tratamento CD95L. As células T primárias ativadas foram caracterizadas por altos níveis de CD95, FADD, procaspase-8, procaspase-10 e c-FLIPS em imunoprecipitações anti-CD95.
Esta técnica permite a análise da formação de DISC molecular, incluindo o processamento de caspase-8 no DISCO. Todas as etapas de lavagem são muito importantes. Além disso, os pontos de estimulação e os tempos de incubação devem ser levados a sério.
Esta é a única maneira de medir a montagem no complexo DISC. No entanto, para medir a ativação caspase-8, pode-se também implementar ensaios de atividade caspase-8. Essa abordagem nos permitiu obter novas percepções sobre a iniciação da apoptose.
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Este artigo apresenta um fluxo de trabalho experimental para detectar o processamento da caspase-8 no complexo de sinalização indutora de morte (DISC). A metodologia permite a determinação da composição do complexo DISC, que tem amplas aplicações na compreensão das vias de morte celular e redes de apoptose.
Understanding the composition and dynamics of the death-inducing signaling complex (DISC) is critical for de-risking apoptosis-targeted therapeutic strategies. This method enables direct measurement of procaspase-8 recruitment and processing within the DISC, providing mechanistic insights that support target validation in extrinsic apoptosis pathways. By quantifying DISC formation and caspase-8 activation, researchers can assess target engagement and pathway modulation with greater predictive confidence in preclinical models.
This method fits within the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical assessment by providing biochemical evidence of pathway modulation at the DISC level.