Name: Purificação de proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 55 s
Description: Aprenda a purificar proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos usando transfecção lipossomal e imunoprecipitação. Este método preserva as ligações de ubiquitina para estudos de regulação proteica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi apoiado por uma bolsa da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (81972624) para D.L.

NOTA: As células H1299 foram gentilmente fornecidas pelo Banco de Células-Tronco da Academia Chinesa de Ciências e provaram ser negativas para a contaminação por micoplasma.
1. Cultura celular
<ol><li>Para a cultura inicial, coloque 1 x 106 células de linhagem celular de adenocarcinoma pulmonar humano, H1299 em uma placa de Petri de 10 cm com 10-12 mL de meio RPMI 1640 suplementado com 10% de soro fetal bovino (FBS), aditivo de glutamina a 1%, piruvato de sódio a 1% e antibióticos (100 U/mL de penicilina e 100 μg/mL de estreptomicina). Manter as células a 37 °C numa incubadora humidificada com 5% de CO2. Divida as células a cada 2-3 dias, dependendo de quando elas atingem 80% a 90% de confluência.</li>
	<li>Um dia antes da transfecção, prepare 6-9 x 10 6 células para três placas de Petri e placa 2-3 x 106 células em uma única placa de Petri de 10 cm contendo 10-12 mL de meio para alcançar uma confluência de 70%-90% durante a transfecção. NOTA: As células HEK293T também podem ser usadas para purificar proteínas ubiquitinadas devido à sua alta eficiência de transfecção e nível de expressão de proteínas.</li>
</ol>2. Transfecção de plasmídeos
<ol><li>Adicionar 1,5 mL de meio sérico reduzido em três tubos de centrífuga de 15 mL.</li>
	<li>Adicione DNA plasmidial pronto para transfecção a cada tubo para fazer diluições da seguinte forma. Tubo 1: 1 μg de plasmídeo Flag-p53, 12 μg de vetor vazio; Tubo 2: 1 μg de plasmídeo Flag-p53, 3 μg de plasmídeo His-HA-Ub (HH-Ub) e 9 μg de vetor vazio; Tubo 3: 1 μg de plasmídeo Flag-p53, 3 μg de plasmídeo HH-Ub e 9 μg de plasmídeo Mdm2. Adicione um total de 0,2 μg de plasmídeo de proteína verde fluorescente (GFP) a cada tubo para monitorar a eficiência da transfecção. NOTA: Um experimento piloto deve ser realizado para determinar as quantidades ideais de plasmídeos necessários para alcançar a expressão eficiente de proteínas-alvo nas células.</li>
	<li>Adicionar 78 μL de reagente de transfecção de lipossomas a 4,5 mL de meio sérico reduzido em outro tubo de centrífuga para diluir lipossomas. Misture bem mexendo o tubo e deixe repousar durante 5 minutos à temperatura ambiente (RT).</li>
	<li>Adicionar 1,5 ml da solução de lipossoma diluída em cada tubo a partir da etapa 2.2 contendo 1,5 ml da solução de ADN diluída. Misture bem e faça a ligação cruzada dos plasmídeos com os lipossomas por pelo menos 20 minutos no RT. Use uma proporção de DNA plasmídico: lipossomo de 1:2 (μg:μL) para cada transfecção.</li>
	<li>Descarte o meio original das placas de Petri e adicione 9 mL de meio sérico reduzido em cada prato. Adicione 3 mL da mistura lipossoma-DNA a cada prato e misture a solução agitando suavemente a placa para frente e para trás 3x, e depois para a esquerda e para a direita 3x para distribuição uniforme da mistura na placa.</li>
	<li>Cultivar as células em incubadora umidificado a 37 °C com 5% de CO2. Substitua o meio após 4-6 h e continue a cultivar as células por 24-36 h.</li>
</ol>3. Coleta de células
<ol><li>Após 24-36 h, tratar as células com MG132 a uma concentração final de 10 μM por 4-6 h. NOTA: MG132 é um peptídeo aldeído que bloqueia eficientemente a atividade proteolítica do complexo proteassoma 26S. As quantidades de proteínas ubiquitinadas com cadeias de poliubiquitina ligadas à lisina-48 (K48) podem ser aumentadas depois que as células são tratadas com MG132 ou outros inibidores de proteassoma.</li>
	<li>Descarte o meio, lave as células 2x (tomando cuidado para não lavar as células) com solução salina tamponada com fosfato gelado (PBS) e aspirar as células com pipetas sorológicas.</li>
	<li>Adicione 1 mL de PBS ao prato, remova as células raspando com um raspador limpo e transfira a suspensão celular para tubos de microcentrífuga. Centrífuga a 700 x g durante 5 min para recolher pellets celulares.</li>
</ol>4. Purificação de proteínas ubiquitinadas em condições não desnaturantes
<ol><li>Prepare o tampão de lise Flag (50 mM Tris-HCl (pH 7,9), 137 mM NaCl, 10 mM NaF, 1 mM de ácido etileno diamina tetraacético (EDTA), 1% Triton X-100, 0,2% sarkosil e 10% glicerol) recém-suplementado com coquetel inibidor de protease antes do uso.</li>
	<li>Adicionar 800 μL de tampão de lise Flag gelado às células de cada tubo, misturar as células utilizando um oscilador de vórtice ou uma pistola de pipeta e, em seguida, incubar a mistura num rotador a 4 °C durante 30 minutos.</li>
	<li>Sujeite a mistura a 5-10 pulsos breves de ultra-sonicação. Execute a ultrassonografia no gelo a uma frequência de sonicação de 20 kHZ e 80% de amplitude com cada pulso durando 1 s. Incubar a mistura num rotador a 40 rotações por minuto (rpm) a 4 °C durante 30 minutos.</li>
	<li>Centrifugar as amostras ultra-sonizadas a 8.000 x g durante 20-30 min a 4 °C. Transfira o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga.</li>
	<li>Aliquot 80 μL (1/10) do extracto celular e misturar com 20 μL de 5x tampão de carga de dodecil sulfato de sódio (SDS). Ferver as amostras a 98 °C durante 5 min, arrefecer no gelo durante 2 min e conservar a -20 °C até à utilização. Use essas amostras como o grupo de entrada para monitorar a expressão de proteínas.</li>
	<li>Adicionar 30 μL de grânulos conjugados com anticorpos anti-Flag M2 (Flag/M2) aos restantes extractos celulares e incubar num rotador a 4 °C durante, pelo menos, 4 h ou durante a noite.</li>
	<li>Centrifugar a 1.500 x g durante 2 min a 4 °C para recolher as contas. Adicione 1 mL de tampão de lise Flag gelado às contas e misture invertendo o tubo várias vezes.</li>
	<li>Centrifugar a 1.500 x g durante 2 min a 4 °C para recolher as contas. Repita a etapa 4.7 por 4-6 vezes.</li>
	<li>Adicionar 40 μL de péptidos Flag a uma concentração final de 200 ng/μL às esferas e incubar num rotador a 4 °C durante 2 h para eluír as proteínas ligadas.</li>
	<li>Centrífuga a 1.500 x g durante 5 min a 4 °C. Transfira o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga.</li>
	<li>Adicionar 10 μL de 5x tampão de carga SDS, ferver a mistura a 98 °C durante 5 min, arrefecer no gelo durante 2 min e armazenar a -20 °C para Western blotting. Em alternativa, armazenar o eluato da etapa 4.10 directamente a -80 °C para outras experiências a jusante. NOTA: A quantidade de proteínas ubiquitinadas purificadas pode ser aumentada aumentando o número de células e as quantidades de plasmídeos transfectados. Uma estratégia de marcação de epítopos pode ser adaptada para purificar complexos celulares que se ligam especificamente à p53 ubiquitinada sob condições de purificação nativas. Ao co-expressar Flag-p53, mdm2 e HA-ubiquitina, o complexo proteico p53 ubiquitinado pode ser imunoprecipitado por agarose conjugada com anticorpos Flag e HA sequenciais de células de mamíferos. Para manter os parceiros de ligação das proteínas p53 ubiquitinadas, o tampão de lise BC100 menos rigoroso (Tris-HCl de 20 mM (pH 7,9), NaCl de 100 mM, glicerol a 10%, EDTA de 0,2 mM, Triton X-100 a 0,2% e inibidor de protease 1x) deve ser usado durante o processo de purificação. O eluato do peptídeo HA é submetido a espectrometria de massa para identificar todos os parceiros que se ligam especificamente ao p53 ubiquitinado.</li>
</ol>5. Purificação de proteínas ubiquitinadas em condições de desnaturação
<ol><li>Adicionar 1 ml de PBS gelado aos pellets celulares obtidos no passo 3.3 e misturar uniformemente. Aliquota de 100 μL (1/10 volume) da suspensão celular em um tubo de microcentrífuga como amostra de entrada.</li>
	<li>Centrifugar a 700 x g durante 5 min a 4 °C para recolher os pellets celulares. Adicione 80 μL de tampão de lise Flag à amostra de entrada, misture as células usando um oscilador de vórtice ou uma pistola de pipeta e lise as células no gelo por 1 h.</li>
	<li>Centrífuga a 8.000 x g durante 20-30 min a 4 °C. Aliquota de 80 μL do sobrenadante em um novo tubo de microcentrífuga.</li>
	<li>Adicionar 20 μL de 5x tampão de carga SDS ao sobrenadante, ferver a 98 °C durante 5-10 min, arrefecer no gelo durante 2 min e conservar a -20 °C até à utilização.</li>
	<li>Centrifugar os restantes 900 μL da suspensão celular a 700 x g durante 5 minutos a 4 °C para recolher o pellet celular. Adicione 1 mL de tampão de ubiquitina 1 (tampão UB 1; 6 M de guanidina-HCI, 0,1 M Na 2 HPO 4, 6,8 mM NaH 2 PO4, 10 mM Tris-HCI (pH 8,0) e0,2% de Triton X-100, recém-suplementado com 10 mM β-mercaptoetanol e 5 mM de imidazol) aos pellets de células e misture várias vezes pipetando para cima e para baixo para distribuir uniformemente as células. NOTA: A concentração de imidazol pode variar de 5 mM a 20 mM para diminuir a ligação proteica inespecífica na resina carregada de níquel. O tampão de ubiquitina contém cloridrato de guanidina, que inativa tanto os ligases quanto os DUBs. β-mercaptoetanol é um líquido claro e incolor com um odor forte e desagradável semelhante aos ovos podres. Uma solução de alta concentração causará sérios danos à membrana mucosa, trato respiratório superior, pele e olhos. Use luvas e óculos de proteção e opere no exaustor.</li>
	<li>Sujeite os lisados celulares a 10-20 rodadas de ultrassom até que a solução não seja mais viscosa. Execute a ultrassonografia no gelo a uma frequência de sonicação de 20 kHZ e 80% de amplitude com cada pulso durando 1 s. Centrifugar a 8.000 x g por 20-30 min em RT e transferir o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga.</li>
	<li>Adicionar 30 μL de resina carregada de níquel ao sobrenadante e incubar em um rotador ajustado a 15 rpm por 4 h ou durante a noite em RT. Centrífuga a 1.500 x g por 2 min em RT para coletar as contas.</li>
	<li>Adicionar 1 mL de tampão UB 1, incubar com rotação em agitador por 10 min no RT e centrifugar a 1.500 x g por 2 min no RT para coletar as contas.</li>
	<li>Adicionar 1 mL de tampão ubiquitina 2 (tampão UB 2; 8 M de ureia, 0,1 M Na 2 HPO 4, 6,8 mM NaH 2 PO4, 10 mM Tris-HCI (pH 8,0) e 0,2% Triton X-100) às contas, incubar com rotação em agitador por 10 min no RT e centrifugar a 1.500 x g por2min para coletar as contas. Repita isso mais uma vez.</li>
	<li>Às contas, adicionar 1 mL de PBS, incubar com rotação em agitador por 10 min no RT e centrifugar a 1.500 x g por 2 min no RT para coletar as contas. Repita isso mais uma vez.</li>
	<li>Proteínas ligadas ao eluto incubando as esferas com 40 μL de imidazol a uma concentração final de 0,5 M por 1 h no RT. Centrífuga a 1.500 x g por 2 min no RT.</li>
	<li>Transfira o sobrenadante para um tubo de microcentrífuga limpo, adicione 10 μL de 5x tampão de carga SDS, ferva a 98 °C por 5 min, esfrie no gelo por 2 min e armazene a -20 °C para Western blotting. Em alternativa, armazenar o eluato não transformado a -80 °C para outras experiências a jusante.</li>
</ol>6. Detecção de proteínas ubiquitinadas purificadas por Western blotting
<ol><li>Resolver as amostras das etapas 4.11 e 5.12 por eletroforese em gel de poliacrilamida de dodecil sulfato de sódio (SDS-PAGE) e, em seguida, transferi-las para uma membrana de nitrocelulose por Western blotting para detectar proteínas-alvo usando os anticorpos correspondentes, conforme descrito18.</li>
	<li>Em resumo, incubar a membrana imergindo em 20 mL de solução bloqueadora contendo 5% de leite em pó defat em tampão TBST (15 mM Tris-HCI; pH = 7,6, 4,6 mM Tris-base, 150 mM NaCI, recém-suplementado com 0,1% Tween-20 antes do uso) no RT por 1 h. Em seguida, incubar a membrana com anticorpos primários no RT por 2 h ou durante a noite a 4 °C. Use os seguintes anticorpos para cada conjunto. Todos os anticorpos primários foram utilizados com diluição de 1:1000.<ol><li>Detectar proteína p53 total, incluindo p53 ubiquitinada, com um anticorpo monoclonal anti-p53 após imunoprecipitação com contas de agarose Flag/M2.</li>
		<li>Detectar proteínas p53 ubiquitinadas com um anticorpo anti-HA ou anticorpo anti-ubiquitina após imunoprecipitação com grânulos de agarose Flag/M2.</li>
		<li>Detecte proteínas p53 ubiquitinadas com um anticorpo monoclonal anti-p53 após a retirada de resina carregada de níquel.</li>
		<li>Detecte a proteína ubiquitinada total com um anticorpo anti-HA ou anticorpo anti-ubiquitina após a retirada de resina carregada de níquel.</li>
	</ol></li>
	<li>Incubar a membrana com anticorpos secundários conjugados com peroxidase de rábano (HRP) em RT por 1 h após lavagem 3x com tampão TBST por 5 min cada. Todos os anticorpos secundários foram utilizados com diluição de 1:3000. Em seguida, lave a membrana com tampão TBST 3x por 5 min cada um com agitação suave.</li>
	<li>Inicie o sistema de imagem de quimioluminescência para detectar sinais de Western blotting. Preparar a solução de substrato para a HRP misturando as soluções A e B numa proporção de 1:1.</li>
	<li>Coloque a membrana de nitrocelulose na câmera obscura virada para cima e cubra a solução de substrato uniformemente na membrana usando uma pistola de pipetagem. Selecione o procedimento de exposição automática para capturar sinais quimioluminescentes e ajuste manualmente o tempo de exposição até que um sinal ideal seja adquirido.</li>
</ol>

<ol><li>Kwon, Y. T., Ciechanover, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ubiquitin+code+in+the+ubiquitin-proteasome+system+and+autophagy%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Biochemical+Sciences%22%5BJournal%5D)">The ubiquitin code in the ubiquitin-proteasome system and autophagy.</a> Trends in Biochemical Sciences. 42 (11), 873-886 (2017).</li>
<li>Popovic, D., Vucic, D., Dikic, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitination+in+disease+pathogenesis+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Ubiquitination in disease pathogenesis and treatment.</a> Nature Medicine. 20 (11), 1242-1253 (2014).</li>
<li>Zheng, N., Shabek, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitin+ligases%3A+Structure%2C+function%2C+and+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Ubiquitin ligases: Structure, function, and regulation.</a> Annual Review of Biochemistry. 86, 129-157 (2017).</li>
<li>Dikic, I., Wakatsuki, S., Walters, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitin-binding+domains+-+from+structures+to+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Ubiquitin-binding domains - from structures to functions.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (10), 659-671 (2009).</li>
<li>Oh, E., Akopian, D., Rape, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+ubiquitin-dependent+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Cell+and+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Principles of ubiquitin-dependent signaling.</a> Annual Review of Cell and Developmental Biology. 34, 137-162 (2018).</li>
<li>Clague, M. J., Urbe, S., Komander, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breaking+the+chains%3A+deubiquitylating+enzyme+specificity+begets+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Breaking the chains: deubiquitylating enzyme specificity begets function.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (6), 338-352 (2019).</li>
<li>Harrigan, J. A., Jacq, X., Martin, N. M., Jackson, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deubiquitylating+enzymes+and+drug+discovery%3A+emerging+opportunities%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Drug+Discovery%22%5BJournal%5D)">Deubiquitylating enzymes and drug discovery: emerging opportunities.</a> Nature Reviews Drug Discovery. 17 (1), 57-78 (2018).</li>
<li>Vogelstein, B., Lane, D., Levine, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surfing+the+p53+network%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Surfing the p53 network.</a> Nature. 408 (6810), 307-310 (2000).</li>
<li>Boutelle, A. M., Attardi, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+and+Tumor+suppression%3A+It+takes+a+network%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+In+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">p53 and Tumor suppression: It takes a network.</a> Trends In Cell Biology. 31 (4), 298-310 (2021).</li>
<li>Levine, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53%3A+800+million+years+of+evolution+and+40+years+of+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">p53: 800 million years of evolution and 40 years of discovery.</a> Nature Reviews Cancer. 20 (8), 471-480 (2020).</li>
<li>Vousden, K. H., Prives, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blinded+by+the+light%3A+The+growing+complexity+of+p53%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Blinded by the light: The growing complexity of p53.</a> Cell. 137 (3), 413-431 (2009).</li>
<li>Brooks, C. L., Gu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+ubiquitination%3A+Mdm2+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">p53 ubiquitination: Mdm2 and beyond.</a> Molecular Cell. 21 (3), 307-315 (2006).</li>
<li>Liu, Y., Tavana, O., Gu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+modifications%3A+exquisite+decorations+of+the+powerful+guardian%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+Of+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">p53 modifications: exquisite decorations of the powerful guardian.</a> Journal Of Molecular Cell Biology. 11 (7), 564-577 (2019).</li>
<li>Dobbelstein, M., Levine, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mdm2%3A+Open+questions%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Science%22%5BJournal%5D)">Mdm2: Open questions.</a> Cancer Science. 111 (7), 2203-2211 (2020).</li>
<li>Kulikov, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mdm2+facilitates+the+association+of+p53+with+the+proteasome%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Mdm2 facilitates the association of p53 with the proteasome.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (22), 10038-10043 (2010).</li>
<li>Li, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mono-+versus+polyubiquitination%3A+differential+control+of+p53+fate+by+Mdm2%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mono- versus polyubiquitination: differential control of p53 fate by Mdm2.</a> Science. 302 (5652), 1972-1975 (2003).</li>
<li>Tomlinson, E., Palaniyappan, N., Tooth, D., Layfield, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+the+purification+of+ubiquitinated+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">Methods for the purification of ubiquitinated proteins.</a> Proteomics. 7 (7), 1016-1022 (2007).</li>
<li>Green, M., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreen%2C+M+%22Molecular+Cloning+A+Laboratory+Manual.+%28Fourth+Edition%29%22">Molecular Cloning A Laboratory Manual. (Fourth Edition)</a>. 2, Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York, USA. 28(2012).</li>
</ol>

Os autores declaram não haver interesses financeiros concorrentes.

A ubiquitinação desempenha um papel crítico em quase todos os processos celulares fisiológicos e patológicos2. Nos últimos anos, grandes progressos têm sido feitos na compreensão do papel molecular da ubiquitina nas vias de sinalização e como as mudanças no sistema de ubiquitina levam a diferentes doenças humanas2. A purificação de proteínas ubiquitinadas contribui para fornecer informações sobre os papéis exatos da ubiquitinação nesses processos. As misturas de proteínas c...

A ubiquitina é uma proteína conservada evolutivamente de 76 aminoácidos 1,2,3. A ubiquitina liga-se covalentemente aos resíduos de lisina nas proteínas-alvo através de cascatas que envolvem enzimas ativadoras (E1), conjugantes (E2) e ligase (E3). A ubiquitina é ativada pela primeira vez pela enzima E1 e é então transferida para as enzimas conjugadoras E2. Posteriormente, os ligases de ubiquitina E3 interagem com enzimas E2 carregadas de ubiquitina e proteínas de substrato e mediam a formação de uma ligação isopeptídica entre o terminal C da ubiquitina e um resíduo de lisina no substrato 1,2,3,4,5. A ubiquitinação envolve a ligação de metades de ubiquitina a resíduos de lisina em proteínas do substrato ou a si mesma, levando à monoubiquitinação ou poliubiquitinação de proteínas. Este processo de ubiquitinação ocorre intracelularmente em eucariotas e regula uma grande variedade de processos biológicos. A ubiquitinação resulta na degradação de proteínas do substrato através do sistema ubiquitina-proteassoma 1,2,3,4,5. Além disso, a ubiquitinação modula a localização subcelular de proteínas, a formação de complexos proteicos e o tráfico de proteínas nas células 3,5. Parcelas de ubiquitina ligadas a proteínas de substrato podem ser removidas por enzimas desubiquitinantes (DUBs)6,7. Notavelmente, as diferentes maneiras pelas quais as cadeias de ubiquitina são montadas fornecem uma miríade de meios para regular vários processos biológicos 1,5. Os papéis exatos da ubiquitinação na regulação da função proteica do substrato permanecem incompletamente compreendidos até agora. A purificação de proteínas ubiquitinadas contribui para a elucidação dos efeitos da ubiquitinação de proteínas em uma variedade de processos celulares.
A proteína p53 é uma das mais importantes proteínas supressoras de tumor e apresenta mutações genéticas ou inativação em quase todos os cânceres humanos 8,9,10,11. A estabilidade e a atividade do p53 são delicadamente reguladas in vivo por modificações pós-traducionais, incluindo ubiquitinação, fosforilação, acetilação e metilação12,13. A proteína p53 tem uma meia-vida curta variando de 6 min a 40 min em várias células, o que resulta principalmente de sua poliubiquitinação e subsequente degradação proteassômica10,12. O duplo minuto 2 do rato (Mdm2) é uma ligase de ubiquitina E3 de p53 que se liga ao N-terminal de p53 para inibir sua atividade transcricional12,14,15. O Mdm2 promove a poliubiquitinação e degradação proteassômica do p53 para controlar sua estabilidade e induz a monoubiquitinação do p53 para facilitar sua exportação nuclear12,14,15,16. Aqui, a ubiquitinação p53 mediada por Mdm2 é usada como exemplo para introduzir um método para a purificação de proteínas ubiquitinadas de células de mamíferos em detalhes. Os reguladores que influenciam o status de ubiquitinação das proteínas-alvo podem ser identificados usando este ensaio de ubiquitinação in vivo quando são superexpressos ou derrubados / nocauteados em células de mamíferos. Além disso, proteínas ubiquitinadas podem ser usadas como substratos para o ensaio de desubiquitinação in vitro. Uma triagem de alto rendimento pode ser realizada para identificar DUBs específicos para proteínas-alvo, incubando substratos ubiquitinados com DUBs individuais. As proteínas ubiquitinadas podem atuar como um andaime para recrutar proteínas de sinalização a jusante nas células. Um complexo proteico-alvo ubiquitinado pode ser purificado por imunoprecipitação sequencial em condições de purificação nativas e identificado por espectrometria de massa. O protocolo atual pode ser amplamente utilizado para investigar as proteínas celulares reguladas pela ubiquitinação.
Vários métodos têm sido estabelecidos para purificar proteínas ubiquitinadas, que incluem o uso de ubiquitina marcada com afinidade, anticorpos ubiquitina, proteínas ligadoras de ubiquitina e domínios isolados de ligação à ubiquitina (UBDs)17. Aqui, fornecemos um protocolo usando ubiquitina marcada com afinidade como mediador para purificar proteínas ubiquitinadas em células de mamíferos. O uso de ubiquitina poli-His-tagged oferece vantagens sobre os outros métodos. As proteínas ubiquitinadas são purificadas na presença de desnaturantes fortes, o que reduz a ligação inespecífica à resina carregada de níquel, linearizando as proteínas celulares e interrompendo as interações proteína-proteína. Em contraste, o uso de anticorpos de ubiquitina, proteínas de ligação à ubiquitina e UBDs isoladas como mediadores não pode efetivamente excluir parceiros de ligação da proteína-alvo porque a purificação precisa ser realizada sob condições menos rigorosas. Além disso, a purificação também pode levar ao aumento da ligação de proteínas não relacionadas usando esses mediadores. Além disso, há uma propensão de ligação para vários tipos de ligação de ubiquitina, bem como mono e poli-ubiquitinação por proteínas ligadoras de ubiquitina ou UBDs isoladas17. O uso de ubiquitina poli-His-etiquetada contribui para puxar para baixo todas as proteínas ubiquitinadas celulares. Alternativamente, o uso de agarose conjugada com anticorpos anti-Flag ou anti-HA comercialmente disponíveis facilita a imunoprecipitação de proteínas-alvo marcadas com Flag ou HA em larga escala em condições não desnaturantes. Uma segunda etapa de purificação, por exemplo, por resina carregada de níquel visando ubiquitina poli-His-marcada, pode ser usada para adquirir proteínas-alvo ubiquitinadas com alta pureza para experimentos a jusante. Notavelmente, uma estratégia de purificação de marcação de epítopos pode ser adaptada quando um anticorpo específico não pode ser adquirido para imunoprecipitar proteínas-alvo de forma eficaz. Finalmente, a purificação de proteínas ubiquitinadas em células de mamíferos, em comparação com a purificação in vitro, mantém o modo de ligação da ubiquitina das proteínas-alvo sob condições mais fisiológicas.

<table><tbody><tr><td>&beta;-mercaptoetanol</td><td>Sangon Biotech</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>Amersham ECL Mouse IgG, HRP-ligado inteiro Ab (de ovelhas)</td> <td>GE saúde</td><td>NA931</td><td>Antibdoy secundário</td></tr><tr><td>Amersham ECL Rato IgG, HRP-ligado Ab inteiro (de burro)</td> <td>GE saúde</td><td>NA935</td><td>Antibdoy secundário</td></tr><tr><td>Anti-Bandeira M2 Affinity Gel</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2220</td><td>FLAG / M2 grânulos</td></tr><tr><td>Anticorpo monocolonal anti-GFP</td><td>Santa cruz</td><td>sc-9996</td><td>Anticorpo primário</td></tr><tr><td>Anti-HA Alta afinidade</td><td>Roche</td><td>11867423001</td><td>Anticorpo primário</td></tr><tr><td>Anticorpo monocolonal Anti-Mdm2 (SMP14)</td><td>Santa cruz</td><td>sc-965</td><td>Anticorpo</td></tr><tr><td>primário Anticorpo monocolonal anti-p53 (DO-1)</td><td>Santa cruz</td><td>sc-126</td><td>Anticorpo primário</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Alddich</td><td>E5134</td><td>solvente</td></tr><tr><td>Fetal Bovino</td><td>Soro VivaCell</td><td>C04001-500</td><td></td></tr><tr><td>FBS FLAG Peptídeo</td><td>Sigma-Alddich</td><td>F3290</td><td>Preparar tampão de eluição</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>suplemento</td></tr><tr><td>Guanidina-HCI</td><td>Sangon Biotech</td><td>A100287-0500</td><td>solvente</td></tr><tr><td>H1299</td><td>Banco de células-tronco, Academia Chinesa de Laboratório</td> de Imagens de Ciências <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Software Bio-rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Immidazol</td><td>Sangon Biotech</td><td>A500529-0100</td><td>solvente</td></tr><tr><td>Immobilon Western Chemluminescescente HRP Substrato</td><td>Millipore</td><td>WBKLS0500</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000 Reagentes</td><td>Invitrogen</td><td>11668019</td><td>Reagente de transfecção</td></tr><tr><td>MG132</td><td>MedChemExpress</td><td>HY-13259</td><td>Inibidor de proteassoma</td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Sangon Biotech</td><td>A501727-0500</td><td>solvente</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sangon Biotech</td><td>A610476-0005</td><td>solvente</td></tr><tr><td>NaF</td><td>Sigma-Alddich</td><td>201154</td><td>solvente</td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sangon Biotech</td><td>A501726-0500</td><td>solvente</td></tr><tr><td>Ni-NTA Agarose</td><td>QIAGEN</td><td>30230</td><td>resina niquelada</td></tr><tr><td>Membrana de Nitrocelulose Blotting</td><td>GE healthcare</td><td>10600002</td><td>0.45 &micro; m tamanho dos poros</td></tr><tr><td>Opti-MEM meio sérico reduzido</td><td>Gibco</td><td>31985-070</td><td>Meio de transfecção</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Corning</td><td>21-040-cv</td><td></td></tr><tr><td>Solução de penicilina-estreptomicina</td><td>Sangon Biotech</td><td>E607011-0100</td><td>antibiótico</td></tr><tr><td>Coquetel de inibidores de protease</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8340</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Indústrias</td><td>Biológicas 01-100-1ACS</td><td>médio</td></tr><tr><td>Sarkosyl</td><td>Sigma-Alddich</td><td>L5777</td><td>solvente</td></tr><tr><td>SDS Loading Buffer</td><td>Beyotime</td><td>P0015L</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Pyruvate</td><td>Gibco</td><td>11360-070</td><td>suplemento</td></tr><tr><td>Tris-base</td><td>Sangon Biotech</td><td>A501492-0005</td><td>solvente</td></tr><tr><td>Tris-HCI</td><td>Sangon Biotech</td><td>A610103-0250</td><td>solvente</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sangon Biotech</td><td>A110694-0500</td><td>reagente</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sangon Biotech</td><td>A100777-0500</td><td>suplemento</td></tr><tr><td>Ultra High Sensitive Chemiluminescence Imaging System</td><td>Bio-rad</td><td></td><td>ChemiDoc XRS+</td></tr><tr><td>Ureia</td><td>Sangon Biotech</td><td>A510907-0500</td><td>solvente</td></tr></tbody></table>

purificação de proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos

Purification of Ubiquitinated p53 Proteins from Mammalian Cells

A ubiquitinação é um tipo de modificação pós-translacional que regula não apenas a estabilidade, mas também a localização e a função de uma proteína de substrato. O processo de ubiquitinação ocorre intracelularmente em eucariotas e regula quase todos os processos biológicos celulares básicos. A purificação de proteínas ubiquitinadas auxilia na investigação do papel da ubiquitinação no controle da função das proteínas do substrato. Aqui, um procedimento passo-a-passo para purificar proteínas ubiquitinadas em células de mamíferos é descrito com a proteína supressora de tumor p53 como exemplo. As proteínas p53 ubiquitinadas foram purificadas sob rigorosas condições de não desnaturação e desnaturação. A proteína p53 total celular marcada com Flag foi purificada com agarose conjugada com anticorpos anti-Flag em condições não desnaturantes. Alternativamente, a proteína ubiquitinada celular total marcada com His foi purificada usando resina carregada de níquel sob condições de desnaturação. As proteínas p53 ubiquitinadas nos eluídos foram detectadas com sucesso com anticorpos específicos. Usando este procedimento, as formas ubiquitinadas de uma determinada proteína podem ser eficientemente purificadas a partir de células de mamíferos, facilitando estudos sobre os papéis da ubiquitinação na regulação da função da proteína.

O diagrama esquemático mostra as proteínas p53 (Flag-p53) e His/HA double-tagged ubiquitina (HH-Ub) (Figura 1A). Os procedimentos utilizados para purificar proteínas ubiquitinadas estão resumidos na Figura 1B. A ubiquitina com etiqueta Poly-His pode ser ligada a proteínas-alvo em células de mamíferos. As proteínas ubiquitinadas podem ser purificadas com esferas Flag/M2 em condições não desnaturantes ou por cromatografia imobilizada de afinidade de íons metálicos...

O protocolo descreve um método passo-a-passo para purificar proteínas ubiquitinadas de células de mamíferos usando a proteína supressora de tumor p53 como exemplo. As proteínas p53 ubiquitinadas foram purificadas a partir de células sob rigorosas condições de não desnaturação e desnaturação.

Purificação de proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos

Ubiquitination is a type of posttranslational modification that regulates not only the stability but also the localization and function of a substrate ...

Usando este protocolo, as formas ubiquitinadas de uma determinada proteína podem ser eficientemente purificadas a partir de células de mamíferos, facilitando estudos sobre os papéis da ubiquitinação na regulação da função proteica. A purificação de proteínas ubiquitinadas em células de mamíferos em comparação com a purificação in vitro retém o modo de ligação da ubiquitina das proteínas-alvo sob condição mais radiológica. Comece adicionando 1,5 mililitros de meio sérico reduzido em três tubos de centrífuga de 15 mililitros.Adicione DNA plasmidial pronto para transfecção a cada tubo e adicione 0,2 microgramas de plasmídeo de proteína fluorescente verde para monitorar a eficiência da transfecção. Adicione 78 microlitros de reagente de transfecção de lipossomas a 4,5 mililitros de meio sérico reduzido em outro tubo de centrífuga para diluir os lipossomas. Misture bem mexendo o tubo e, em seguida, deixe-o repousar durante cinco minutos à temperatura ambiente.Adicionar 1,5 mililitros da solução de lipossoma diluída em cada tubo contendo 1,5 mililitros da solução de ADN diluído. Misture bem e faça a ligação cruzada dos plasmídeos com os lipossomas por pelo menos 20 minutos à temperatura ambiente. Descarte o meio original das placas de Petri e adicione nove mililitros do meio sérico reduzido em cada prato.Adicione três mililitros da mistura de DNA do lipossomo e misture a solução agitando suavemente a placa para frente e para trás três vezes e, em seguida, para a esquerda e para a direita três vezes para distribuição uniforme da mistura na placa. Cultivar as células na incubadora umidificada a 37 graus Celsius com dióxido de carbono a 5%. Substitua o meio após quatro a seis horas e continue a cultivar as células por 24 a 36 horas.Após 24 a 36 horas, trate as células com MG132 a uma concentração final de 10 micromolares durante quatro a seis horas. Descarte o meio e lave as células duas vezes com PBS gelado. Adicione um mililitro de PBS ao prato.Remova as células raspando-as com um raspador limpo e transfira a suspensão celular para tubos de microcentrífuga. Centrifugar a 700 G durante cinco minutos para recolher os pellets celulares. Adicione 800 microlitros do tampão de lise FLAG gelado suplementado com coquetel inibidor de protease às células de cada tubo.Misture as células usando um oscilador de vórtice ou uma pistola de pipeta e, em seguida, incube a mistura em um rotador a quatro graus Celsius por 30 minutos. Ultrasonice a mistura no gelo com cada pulso durando um segundo e submeta a mistura a cinco a 10 pulsos breves. Incubar a mistura num rotador a 40 RPM durante 30 minutos a quatro graus Celsius.Em seguida, centrifugar as amostras ultra-sonizadas a 8.000 G por 20 a 30 minutos a quatro graus Celsius. Transfira o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga. Aliquot 80 microlitros do extrato da célula e misture com 20 microlitros de buffer de carregamento SDS 5X.Ferva as amostras a 98 graus Celsius por cinco minutos. Esfrie no gelo por dois minutos e armazene a menos 20 graus Celsius até o uso. Use essas amostras como o grupo de entrada para monitorar a expressão de proteínas.Em seguida, adicione 30 microlitros das esferas conjugadas do anticorpo anti-FLAG M2 aos extratos celulares restantes e incube em um rotador a quatro graus Celsius por pelo menos quatro horas ou durante a noite. Centrífuga a 1.500 G por dois minutos a quatro graus Celsius para coletar as contas. Adicione um mililitro do tampão de lise FLAG gelado às contas e misture invertendo o tubo várias vezes.Repita este passo quatro a seis vezes e, em seguida, adicione 40 microlitros dos péptidos FLAG a uma concentração final de 200 nanogramas por microlitro às contas. Incubar em um rotador por duas horas, como mostrado anteriormente, e depois centrifugar na mesma temperatura. Transfira o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga e adicione 10 microlitros de buffer de carga SDS 5X.Ferva a mistura a 98 graus Celsius por cinco minutos e depois esfrie no gelo por dois minutos. Adicione um mililitro do PBS gelado aos pellets de células e misture uniformemente. Aliquot 100 microlitros da suspensão celular em um tubo de microcentrífuga como a amostra de entrada e centrífuga a 700 G por cinco minutos a quatro graus Celsius para coletar os pellets celulares.Adicione 80 microlitros de tampão de lise FLAG à amostra de entrada e misture as células usando um oscilador de vórtice, como mostrado anteriormente. Lise as células no gelo por uma hora e depois centrifugar novamente por 20 a 30 minutos. Após a alíquota de centrifusão, coloque 80 microlitros do sobrenadante em um novo tubo de microcentrífuga e adicione 20 microlitros de tampão de carga SDS 5X ao sobrenadante.Ferva a mistura a 98 graus Celsius por cinco a 10 minutos e depois esfrie no gelo por dois minutos. Centrifugar os 900 microlitros restantes da suspensão celular a 700 G por cinco minutos a quatro graus Celsius para coletar a pastilha celular. Adicione um mililitro de tampão de ubiquitina 1 aos pellets de células e misture pipetando para cima e para baixo várias vezes para distribuir as células uniformemente.Submeta a célula lisa a 10 a 20 rodadas de ultrassom no gelo até que a solução não seja mais viscosa e, em seguida, centrifugar a solução. Transfira o sobrenadante para um novo tubo de microcentrífuga e adicione 30 microlitros de resina carregada de níquel ao sobrenadante. Incubar num rotador a 15 RPM durante quatro horas ou durante a noite à temperatura ambiente e, em seguida, centrifugar durante dois minutos.Após a centrifusão, colete as contas e adicione um mililitro de tampão de ubiquitina 1 a ele. Incubar com rotação num agitador durante 10 minutos à temperatura ambiente e, em seguida, centrifugar novamente a 1 500 G durante dois minutos, como indicado anteriormente. Adicione um mililitro de tampão de ubiquitina 2 às contas e realize a incubação seguida de centrifugação, como mostrado anteriormente, para coletar as contas.Repita esta etapa uma vez. Em seguida, adicione um mililitro de PBS às contas e siga o mesmo procedimento de incubação e centrifugação para coletar as contas. Repita este passo mais uma vez.Elute proteínas ligadas por incubação das esferas com 40 microlitros de imidazol a uma concentração final de 0,5 molar por uma hora à temperatura ambiente. Após a incubação, centrifugar novamente a 1.500 G por dois minutos. Transfira o sobrenadante para um tubo de microcentrífuga limpo e adicione 10 microlitros de buffer de carga SDS 5X.Ferva a solução a 98 graus Celsius por cinco minutos e depois esfrie no gelo por dois minutos. Resolva as amostras por SDS-PAGE e, em seguida, transfira-as para uma membrana de nitrocelulose por western blotting para detectar proteínas-alvo usando os anticorpos correspondentes. Inicie o sistema de imagem de quimioluminescência para detectar sinais de western blotting.Coloque a membrana de nitrocelulose na câmera obscura virada para cima. Codifique a solução de substrato uniformemente na membrana usando uma pistola de pipeta. Finalmente, selecione o procedimento de exposição automática para capturar os sinais quimioluminescentes e ajuste manualmente o tempo de exposição até que um sinal ideal seja adquirido.A proteína p53 total, incluindo a p53 ubiquitinada, foi imunoprecipitada com esferas FLAG M2 de células H1299 em condições não desnaturantes. O eluato foi submetido a western blotting com anti p53 e anti hemaglutinina ou com anticorpos anti p53 e monoclonais. Aqui, os extratos de células brutas ou insumos foram submetidos a western blotting com anticorpos monoclonais anti p53 e anti MDM2.O sinal da proteína p53 ubiquitinada, que aparece como uma banda manchada de baixo a alto peso molecular, foi acentuadamente aumentado quando o MDM2 foi expresso ectopicamente nessas células. Este resultado sugere que a proteína p53 ubiquitinada foi efetivamente purificada a partir das células. Em seguida, as células foram lisadas sob condições de desnaturação.As proteínas ubiquitinadas celulares totais foram puxadas para baixo com resina carregada de níquel e foram então submetidas a western blotting com anticorpos monoclonais anti p53 e anti-hemaglutinina. A proteína p53 ubiquitinada foi detectada usando um anticorpo anti p53 e um anticorpo anti-hemaglutinina. Aqui no momento em que os extratos de células brutas ou de entrada foram submetidos a western blotting com anticorpos monoclonais anti p53 e anti MDM2.Os resultados mostraram que o nível total de proteína ubiquitinada permaneceu inalterado, mas o nível de proteína p53 ubiquitinada aumentou drasticamente após o MDM2 ser superexpresso nessas células. Isso indica que as proteínas totais de ubiquitina contendo p53 ubiquitinado foram efetivamente retiradas dos lisados celulares sob condições de desnaturação. Ao tentar este procedimento, lembre-se de tratar as células com MG132 antes da coleta de células e ultra-sonicar as células adequadamente no gelo para a purificação de proteínas ubiquitinadas.

purification-of-ubiquitinated-p53-proteins-from-mammalian-cells

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

Ubiquitinação é uma modificação fundamental posttranslational realizado por um conjunto de três enzimas. Mutações dos genes envolvidos nesta modificação estão associadas com diferentes tipos de doenças humanas. Aqui, descrevemos os protocolos para detectar ubiquitinação de proteínas em células...

Detecção de Ubiquitinação Protein

Este vídeo descreve um método para extrair e purificar peptídeos ubiquitinilados contendo peptídeos de diglicina remanescentes de uma mistura complexa de peptídeos. O método apresentado pode ajudar na identificação de locais de ubiquitinação originais na proteína.

Extração baseada em imunoafinidade de peptídeos ubiquitinilados: uma técnica para extrair seletivamente peptídeos marcados com ubiquitina de frações peptídicas purificadas

O método descrito aqui é um novo protocolo de isolamento de vesículas, que permite a purificação dos compartimentos celulares onde os antígenos exógenos são processados pelo retículo endoplasmático associado a degradação em cruz-apresentação.

Purificação do compartimento da membrana retículo endoplasmático associado a degradação de antígenos exógenos em cruz-apresentação

Ao contrário da ubiquitina ligases, foram identificados alguns ligases E3 sumô. Este modificado em vitro protocolo SUMOylation é capaz de identificar o romance sumô E3 ligases por um ensaio de reconstituição em vitro .

In Vitro Ensaio de SUMOylation para estudar a atividade de Ligase E3 sumô

Apresentamos um método para a purificação, detecção e identificação de peptídeos diGly que se originam de proteínas ubiquitinadas de amostras biológicas complexas. O método apresentado é reprodutível, robusto e supera os métodos publicados em relação ao nível de profundidade da análise ubiquitinome.

Detecção de locais de ubiquitinação de proteínas por enriquecimento de peptídeos e espectrometria de massa

A ubiquitinação é uma modificação pós-translacional que desempenha papéis importantes em processos celulares e é fortemente coordenada pela deubiquitinação. Os defeitos em ambas as reações fundamentam patologias humanas. Nós fornecemos protocolos para a realização de ubiquitinação e reação de deubiquitinação in vitro usando componentes purificados.

Ensaios de Ubiquitinação e Deubiquitinação in vitro de histonas Nucleossomal

Este protocolo visa estabelecer proteomas específicos de ubiquitina (Ub) e ubiquitina (Ubls), a fim de identificar alterações desse tipo de modificações pós-translacional (PTMs), associadas a uma condição específica, como tratamento ou fenótipo.

Perfil de Ubiquitin e Ubiquitin-like Modificações pós-translacionais dependentes e identificação de alterações significativas

Este método descreve a avaliação das mudanças globais na topologia da cadeia de ubiquitina. A avaliação é realizada pela aplicação de uma abordagem de proteômica direcionada baseada em espectrometria de massa.

Análise da cadeia de Ubiquitin por monitoramento de reação paralela

Fornecemos um protocolo detalhado para um ensaio de ubiquização de um substrato específico e uma ubiquitina-ligase E3 em células mamíferas. As linhas celulares HEK293T foram utilizadas para superexpressão de proteínas, o substrato poliubiquizado foi purificado a partir de lisestês celulares por imunoprecipitação, e resolvido em SDS-PAGE. A imunoblotação foi usada para visualizar esta modificação pós-translacional.

Avaliação da Ubiquização substrato por E3 Ubiquitin-ligase em Lysates de Células Mamárias

A ubiquitinação é um regulador crítico das funções intracelulares das proteínas. Aqui, descrevemos dois métodos de lise celular para detectar os níveis de ubiquitinação de proteínas do substrato em células de mamíferos e comparamos sua eficácia na análise dos níveis de ubiquitinação. A superexpressão proteica em células HEK293T foi induzida por transfecção transitória, e proteínas ubiquitinadas foram detectadas por análise western blot.

Estratégias comparativas para detecção de ubiquitinação em lisados celulares de mamíferos usando SMAD2/SMURF2 como modelo

Este protocolo descreve um método para ubiquitinar Streptococcus pneumoniae usando lisado celular de mamífero ou complexo enzimático puro de ubiquitina, seguido de tratamento com complexo proteico purificado VCP/p97-UFD1-NPLOC4 para avaliar sua atividade bacteriolítica, possibilitando o estudo de efetores imunes dependentes de ubiquitina.

In vitro Reconstituição da Ubiquitinação Bacteriana e Eliminação Mediada por VCP/p97

Aprenda a purificar proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos usando transfecção lipossomal e imunoprecipitação. Este método preserva as ligações de ubiquitina para estudos de regulação proteica.

Purificação de proteínas p53 ubiquitinadas de células de mamíferos

Explorar mais vídeos