October 13th, 2022
O presente protocolo utiliza um pacote de simulação biomolecular e descreve a abordagem de dinâmica molecular (MD) para modelar a caspase do tipo selvagem e suas formas mutantes. O método MD permite avaliar a evolução dinâmica da estrutura da caspase e o efeito potencial de mutações ou modificações pós-traducionais.
desempenham um papel fundamental na iniciação e execução usando modelagem molecular. Estudamos o efeito de modificações e mutações pós-tradução na estrutura e função da caspase. Descrevemos a abordagem da dinâmica molecular que dá uma visão da evolução da proteína, após a introdução de modificações estruturais no nível atômico.
Tal abordagem é um significado particular para a compreensão dos mecanismos que regulam a morte celular do programa e distúrbios associados e o desenvolvimento de novas terapias eficazes. Demonstramos capacidades de modelagem molecular com uma das ferramentas mais populares, Amber 20. Mas o protocolo apresentado também pode ser usado com as versões formais deste software.
O vídeo a seguir descreve instruções passo a passo sobre a preparação da estrutura da Caspase para simulação e a realização de uma investigação ascilica deste tipo selvagem de proteínas e formas modificadas. Para recuperar o banco de dados de proteína selecionado ou a estrutura P D B, use a lista suspensa de arquivos de download e clique no formato P D B. Remova observações e dados de conectividade e insira um cartão T E R entre cadeias de proteínas separadas no arquivo P D B.
Para preparar o modelo inicial, inicie o programa T-LEAP do pacote Amber Tools. Em seguida, carregue o campo de força F F 14 S B para descrever a proteína com mecânica molecular e os parâmetros para moléculas de água e íons atômicos, como sódio e cloreto, inserindo os comandos indicados na linha de comando. Em seguida, carregue o arquivo P D B e construa coordenadas para hidrogênios criando um objeto chamado mol.
Verifique se há inconsistências internas que possam causar problemas usando o comando check mol. Crie uma caixa de solvente ao redor da proteína. Em seguida, verifique a carga total inserindo mol de carga e adicione íons contadores para neutralizar o sistema.
Crie o arquivo de topologia P R M top e a coordenada I N P C R D digitando o comando indicado. Uma vez feito, feche o programa T-lEAP. Realizar o primeiro estágio da minimização de energia para otimizar as posições dos átomos de hidrogênio e moléculas de água adicionados, mantendo as coordenadas de proteína fixadas por restrições posicionais em átomos pesados.
Execute o programa P M E M D inserindo o comando indicado. Siga os argumentos necessários enquanto controlo os dados. P topologia molecular, parâmetros de campo de força e nomes de átomos.
Coordenadas iniciais C. O usuário legível log saída R coordenadas finais. REF, coordenadas de referência para restrições de posição.
Em seguida, realize o segundo estágio da minimização de energia sem restrições para otimizar todo o sistema usando as entradas do comando indicado. Esta etapa visa aquecer o sistema de zero a 300 kelvins. Realizar o processo de aquecimento com restrições posicionais nos átomos de proteína com 50 picossegundos em volume constante, usando o comando dado como entradas.
Siga o argumento necessário como X conjuntos de coordenadas salvos ao longo da trajetória da dinâmica molecular. O próximo estágio é necessário para ajustar a densidade da água e obter o estado de equilíbrio da proteína. Efectuar o equilíbrio a 300 kelvins durante 500 picossegundos a pressão constante, sem quaisquer restrições, utilizando o comando indicado após o equilíbrio ter sido alcançado com êxito.
Realizar uma simulação de dinâmica molecular de produção por 10 nanossegundos ou mais a pressão constante e gerar o arquivo de trajetória para posterior análise da estrutura proteica usando o comando indicado. A versão paralela do programa, P M E M D M P I ou G P U versão acelerada P M E M D cuda pode ser usada em clusters de computadores e supercomputadores. Uma longa simulação de dinâmica molecular pode ser dividida em vários segmentos e realizada sequencialmente.
Nesta análise, a Caspase dois do tipo selvagem e seu mutante Serina-384 alanina foram investigados seguindo o fluxo de trabalho de modelagem de dinâmica molecular. A substituição de serina-384 alanina induziu importante alteração conformacional no resíduo do sítio ativo Arginina-378. Além disso, foi demonstrado que a substituição de serina-384 alanina afetou o reconhecimento do substrato pelos resíduos de arginina no sítio ativo, prejudicando a atividade de base fundida.
A mutagênese direcionada ao local e os testes bioquímicos demonstraram que a mutação Serina-384 alanina bloqueou a atividade enzimática no processamento da Caspase dois e suprimiu a apoptose das células cancerígenas. A abordagem descrita pode ser usada para avaliar o efeito de mutações de aminoácidos e modificações pós-traducionais na caspase dois, bem como em outras caspase envolvidas em várias doenças cancerígenas.
Este estudo explora o impacto das modificações pós-traducionais e mutações na estrutura e função da proteína caspase, um componente fundamental na apoptose. Usando simulações de dinâmica molecular (DM), a pesquisa investiga como mutações específicas, como a Serine-384 para Alanina, afetam a atividade e a integridade estrutural da caspase.
Molecular modeling of caspase mutations and post-translational modifications enables early de-risking of target biology in apoptosis-related pathways. This approach provides predictive insight into how specific amino acid substitutions impact protein structure and function, supporting informed target validation and mechanistic confidence. Integrating these simulations into discovery workflows enhances portfolio decision-making for apoptosis-modulating therapeutics.
This molecular modeling protocol fits at the interface of early discovery and lead identification, providing a computational filter before experimental validation.