February 24th, 2023
A mosca-da-fruta (Drosophila melanogaster) é amplamente utilizada para pesquisas biológicas e toxicológicas. Para expandir a utilidade das moscas, desenvolvemos um instrumento, o serial anesthesia array, que expõe simultaneamente múltiplas amostras de moscas a anestésicos gerais voláteis (AGV), tornando possível investigar os efeitos colaterais (tóxicos e protetores) dos AGVs.
O SAA permite o processamento de alto rendimento para investigar a farmacologia de agentes voláteis em organismos-modelo invertebrados que são dotados de um cérebro sofisticado e um vasto repertório de comportamentos. Em combinação com a caixa de ferramentas genéticas disponível em Drosophila melanogaster, esta técnica permite que a farmacogenética de agentes voláteis seja estudada de forma rápida e acessível. Muitas pessoas estão expostas a agentes voláteis como poluentes ou agentes terapêuticos.
Além da anestesia, os anestésicos voláteis têm inúmeros efeitos colaterais tóxicos e benéficos. O grau de efeito é parcialmente determinado pela genética, que permaneceu em grande parte inexplorada. Depois de fazer a estrutura de madeira, modifique as tampas de tubo de 50 mililitros fazendo dois furos em cada tampa com uma broca de 9/32 polegadas.
Lixe os buracos para limpar o plástico esfarrapado. Lixe também a parte superior da tampa para rugar a superfície. Em seguida, corte pipetas sorológicas de cinco mililitros para dimensionar, marcando o plástico e quebrando-o limpo na linha marcada.
Lixe as extremidades das pipetas cortadas ou quebradas. Depois, cole a rede nos tubos e corte a rede para o tamanho do tubo assim que o adesivo secar. Insira os tubos nos orifícios das tampas cônicas com ambos os tubos estendendo-se acima da tampa.
Certifique-se de que o tubo de entrada se estenda por mais tempo no tubo do que o fluxo de saída. Aplique cola na parte superior das tampas ao redor dos tubos para prender as peças e deixá-las secar. Conecte amarrações de cabos adesivos ao quadro.
Afixe as tampas no quadro usando gravatas de zíper e corte as extremidades da etiqueta de gravata zip. Corte e conecte o comprimento da tubulação tygon aos tubos de entrada e saída em cada tampa modificada. Começando na extremidade a montante, conecte a tubulação primeiro à entrada e, em seguida, da saída à entrada da posição subsequente.
Em seguida, adicione um indicador de fluxo à entrada mais downstream. Coloque um tubo cônico de 50 mililitros na primeira posição e marque a marca de enchimento de água. Retire o tubo.
Encha-o com água abaixo do tubo de entrada e coloque-o novamente na posição. Prepare a interface para o vaporizador. Remova os êmbolos, corte entalhes de duas seringas dosadoras de 10 mililitros e insira-os na entrada e saída do vaporizador com os entalhes voltados diretamente para a frente do vaporizador para alinhar com os orifícios.
Conecte todo o sistema. Use tubulação tygon para conectar o tanque de gás transportador com o regulador, medidor de vazão específico de gás, vaporizador e SAA. Preencha posições vazias na matriz com tubos de crônica vazios de 50 mililitros.
Agora ligue o tanque de gasolina. Abra o medidor de vazão para dois litros por minuto e ligue o vaporizador para 0%Confirme o fluxo de gás através do sistema verificando o medidor de vazão a montante do vaporizador e o indicador de vazão a jusante da última câmara do SAA para vazão. Alternativamente, insira a extremidade da tubulação a jusante na água e procure bolhas.
24 horas ou mais antes da exposição anestésica, classificar as coortes de moscas conforme necessário para o experimento usando o método preferido. Transfira moscas de frascos de alimentos para tubos cônicos vazios de 50 mililitros. Conte e registre todas as moscas mortas antes da exposição.
Uncap e rosqueie tubos cônicos de 50 mililitros com moscas no SAA. Ligue o gás transportador e configure-o para a vazão desejada. Ajuste o vaporizador anestésico para a concentração desejada e exponha as moscas pela duração desejada.
Ao final da exposição, lave o sistema com o fluxo de gás fresco a 1,5 litros por minuto durante cinco minutos, correspondendo a aproximadamente 10x volumes do volume total de SAA. Abra completamente o regulador de alta pressão e feche-o meia volta para garantir o fluxo de gás do transportador. Siga a tubulação de cada linha até os medidores de vazão e vaporizador, e verifique o nível anestésico nos vaporizadores.
Confirme que, quando o gás flui, ele indica o fluxo no medidor de vazão e no indicador de fluxo a jusante. Ao final do experimento, aguarde de quatro a cinco minutos de fluxo aéreo para lavar o anestésico. Sete linhagens isoladas de uma única população através de reuniões de par único mostraram variação na mortalidade induzida pela toxicidade por iso flúor devido à pressão evolutiva em moscas ND23 60114.
Moscas pré-condicionadas com 15 minutos de flúor iso a 2% antes do traumatismo cranioencefálico reduziram o índice de mortalidade em 24 horas nas cepas branca 1118 e amarela/branca. O índice de mortalidade em 24 horas não foi significativamente menor nas linhagens Oregon R e Canton S pré-condicionadas. Durante a montagem, os entalhes nas seringas modificadas devem estar alinhados com os orifícios das portas do vaporizador.
Durante a exposição, verifique periodicamente se há fluxo através do sistema. Esse procedimento pode ser seguido para uma ampla variedade de estudos comportamentais, de sobrevivência e moleculares que podem levar a insights sobre a farmacologia de agentes voláteis.
O array de anestesia em série (SAA) é um instrumento inovador projetado para o processamento de alto rendimento de Drosophila melanogaster para estudar a farmacologia de anestésicos gerais voláteis (VGAs). Este método permite que os pesquisadores explorem os efeitos tóxicos e protetores dos VGAs em moscas-das-frutas, aproveitando sua diversidade genética.
The Serial Anesthesia Array (SAA) enables high-throughput, quantitative investigation of volatile general anesthetics (VGAs) in Drosophila, supporting rapid pharmacogenetic and mechanistic de-risking in early discovery. By allowing simultaneous, controlled exposure of multiple genotypes or biological variables, the SAA advances predictive confidence in target validation and portfolio triage for neuropharmacology and toxicology pipelines. This platform addresses the need for scalable, reproducible systems to interrogate genetic and environmental determinants of drug response.
The SAA integrates into the discovery continuum from early hypothesis testing and target validation through lead identification and preclinical model development.