2 de junho de 2023
A fluorometria sítio-dirigida funcional é um método para estudar movimentos do domínio de proteínas em tempo real. A modificação desta técnica para sua aplicação em células nativas agora permite a detecção e rastreamento de movimentos de sensores de voltagem únicos a partir de canais de Ca2+ dependentes de voltagem em fibras musculares esqueléticas isoladas de murino.
O CaV1.1, um membro dos canais iônicos dependentes de tensão, possui quatro sensores de tensão distintos. Evidências sugerem que alguns sensores de voltagem contribuem mais para a ativação do receptor de rianodina ou corrente de cálcio. Nosso objetivo é ser capaz de identificar o papel preciso de cada sensor de tensão no acoplamento excitação-contração e na ativação do canal de cálcio.
O acoplamento excitação-contração tem sido estudado desde o início dos anos 50, mas os detalhes moleculares de como esse processo ocorre ainda são desconhecidos. O recente avanço na estrutura microscópica ciro-eletrônica do canal, a caracterização da nova proteína acessória CaV1.1, a descoberta de uma variante de splicing alternativo do canal e a identificação de mutação causadora de doença reacenderam o interesse neste campo. Muitas técnicas são usadas em nosso campo, desde eletrofisiologia clássica e biologia molecular até técnicas mais novas, como microscopia crioeletrônica, simulação dinâmica molecular, degradação de proteínas direcionadas e fluorometria funcional dirigida por sítio, bem como células projetadas ou modelos animais.
Atualmente, o combustível enfrenta diversos desafios experimentais. Em um músculo esquelético, o tráfego adequado e a comunicação entre CaV1.1 e RyR1, juntamente com muitas proteínas reguladoras, são cruciais para apoiar o acoplamento excitação-contração. Os métodos para estudar diretamente essas interações proteína-proteína entre CaV1.1 e RyR1 estão ausentes ou incompletos.
O laboratório do Dr. Martin Schneider vem trabalhando no acoplamento excitação-contração há décadas, caracterizando mecanismos de detecção de tensão em CaV1.1, liberação de cálcio e eventos localizados de liberação de cálcio, conhecidos como faíscas de cálcio. Recentemente, nosso laboratório vem implementando novas técnicas ópticas para investigar várias etapas do acoplamento excitação-contração e do movimento do sensor de voltagem em células musculares adultas funcionantes. Embora isso tenha sido feito anteriormente em um sistema de expressão heteróloga, nosso protocolo agora permite rastrear mudanças conformacionais em sensores de tensão CaV1.1 durante um potencial de ação propagado em seu ambiente nativo.
Nossa nova técnica nos permitirá investigar o movimento preciso do sensor de tensão necessário para o acoplamento excitação-contração. Queremos saber qual resíduo de carga em cada S4 é crítico para sua função, ou exatamente cada translocação de S4, e tudo o que é translocação está ligado à abertura de CaV1.1 ou ativação do receptor de rianodina.
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Este estudo investiga o movimento dos sensores de voltagem nos canais de cálcio ativados por voltagem Kv1.1, essenciais para o acoplamento excitação-contração no músculo esquelético murino. Ao utilizar fluorimetria funcional direcionada a sítios específicos, os pesquisadores permitem o rastreamento em tempo real desses movimentos de domínios proteicos em seu contexto celular nativo.
A fluorometria funcional com direcionamento de sítios em células musculares esqueléticas nativas permite a análise em tempo real de mudanças conformacionais em canais iônicos dependentes de voltagem, fornecendo diretamente informações para a validação precoce de alvos e redução de riscos mecanicistas na pesquisa de excitabilidade muscular. Esta abordagem preenche a lacuna entre sistemas heterólogos e modelos fisiologicamente relevantes, aumentando a confiança preditiva para portfólios direcionados a canais iônicos. Sua integração apoia decisões mais informadas de avançar/não avançar nos estágios de descoberta e pré-clínicos voltados para indicações neuromusculares e canalopatias.
Este método integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação inicial do alvo até a identificação de compostos líderes e estudos mecanicistas pré-clínicos, especialmente para programas de canais iônicos e excitabilidade muscular.