April 12th, 2024
O protocolo descreve um método viável, confiável e reprodutível de pinçamento hilar pulmonar esquerdo que pode ser usado para estudar a lesão de isquemia-reperfusão pulmonar em modelos de camundongos.
Estamos interessados em estudar os efeitos da lesão de isquemia-reperfusão nos resultados após o transplante de pulmão com o objetivo de entender os mecanismos celulares e moleculares subjacentes. Os neutrófilos que entram no pulmão contribuem para a lesão de isquemia-reperfusão, ou IRI. Descobrimos recentemente que as células B fazem com que os neutrófilos entrem no pulmão e desempenham um papel no recrutamento de neutrófilos após o IRI.
O transplante de pulmão esquerdo no camundongo é tecnicamente desafiador e requer treinamento dedicado em tempo integral ao longo de vários meses para alcançar resultados consistentes. Além disso, introduz alergenicidade e trauma anastomótico cirúrgico. Assim, precisamos de uma técnica mais acessível que possa isolar o estudo da lesão de isquemia-reperfusão.
Usando nosso modelo de grampo hilar, descobrimos que as células B entram no pulmão logo após a lesão de isquemia-reperfusão e recrutam monócitos clássicos em um receptor de células B de maneira dependente de TLR4. Em última análise, isso resulta em aumento do extravasamento de neutrófilos para o pulmão. Nosso protocolo envolve ligadura reversível do hilo pulmonar esquerdo com nó corrediço.
A natureza flexível e discreta da sutura permite o fechamento do tórax, o que é útil para estudar períodos mais longos de isquemia quente, pois o fechamento do tórax minimiza as perdas de calor e fluidos insensíveis no camundongo.
Este protocolo descreve um método confiável para a pinça do hilo pulmonar esquerdo para estudar lesão de isquemia-reperfusão pulmonar em modelos de camundongos. O estudo visa entender os mecanismos celulares e moleculares envolvidos nessa lesão, focando particularmente no papel dos neutrófilos e células B.
The murine left pulmonary hilar clamp model provides a reproducible and accessible system for dissecting the cellular and molecular mechanisms of lung ischemia reperfusion injury (IRI), a critical barrier in lung transplantation. By enabling precise isolation of IRI effects without confounding surgical trauma, this model supports mechanistic de-risking and target validation in early discovery. Its reliability and adaptability make it a valuable asset for translational research and portfolio triage in respiratory and transplant-focused R&D.
This model integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, target validation, and mechanistic studies prior to lead identification and translational research.