Name: Fabricação dos canais microfluídicos Termoplásticos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-02-03T23:56:00.000+00:00
Duration: 16 min
Description: Aprenda a fabricação de dispositivos microfluídicos termoplásticos por embossagem térmica e soldagem térmica. Este método demonstra isolamento de ácidos nucleicos por extração em fase sólida para aplicações em PCR e diagnósticos.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os canais microfluídicos são fabricados em uma poliolefina cíclico (Zeonex ® 690R, Zeon Chemical Inc., Louisville, KY). Zeonex tem uma temperatura de transição vítrea (T g) de 136 ° C e é UV transparente, o que é essencial para a química de luz dirigido usado na formação porosa monólito. Os microcanais são fabricados por micro-hot-relevo com um eletroformada Nico mestre-mofo, que tem a negativa (inversa) os recursos da plataforma microfluídica. A estampagem a quente é feito da seguinte forma: <ol><li> O molde eo substrato de polímero são colocados entre duas Placas metálicas paralelas. </li><li> Os pratos são aquecidos até a temperatura embossing (166 ° C), que é de 30 º C acima da T g de Zeonex. </li><li> Os pratos são então pressionados juntos por cerca de 5 min ea pressão é mantida em 250 psi. </li><li> O molde eo substrato são então removidos da platens aquecida, deixou esfriar por 1-2 min, e depois manualmente separados uns dos outros. </li><li> Poços de 1,5 mm de diâmetro são perfurados nas extremidades dos canais para a introdução da amostra e coleta. </li><li> O substrato plástico é, então, em relevo termicamente ligado com outro pedaço de Zeonex fechado para formar canais microfluídicos. O substrato em relevo e a peça de tampa pode ser de ozônio UV ou plasma tratados antes da colagem térmica para melhorar a eficiência de vedação e garantir a fidelidade da estrutura de canal fechado (Bhattacharyya e Klapperich, 2007). </li></ol> Fabricação de extração de fase sólida coluna (SPE) dentro dos canais microfluídicos de plástico Fabricação da fase sólida é um processo de duas etapas. Na primeira, os microcanais fabricados são superfície modificada, a fim de melhorar a aderência da coluna SPE para o dispositivo de plástico. Enxertia via fotopolimerização de superfície é usado para funcionalizar as paredes dos microcanais poliméricos. O procedimento de enxerto é a seguinte: <ol><li> Os microcanais são preenchidos com uma mistura 1:1 de diacrilato de etileno (EDA) e metacrilato de metila (MMA) com benzofenona 3%, que é um fotoiniciador hidrogênio abstrair. A EDA, MMA e benzofenona forem comprados de Sigma-Aldrich, St. Louis, MO. </li><li> O chip é então UV-irradiado por 10 min a 254 nm de comprimento de onda UV e 200 mJ / cm 2 de energia em um instrumento exposição aos raios ultravioleta (CL-1000 Agente de crosslinking UV, UPV Inc., Upland, CA). A enxertia ocorre via abstração H-polimerização e resulta em correntes de superfície amarrados polímero, que são incorporadas dentro da mistura de polimerização utilizado para a preparação do monolito na segunda etapa. </li><li> O monômero em excesso é removido os canais de lavagem com 15 mL de metanol por meio de aspiração a vácuo. </li></ol> Após o processo de photografting, um polímero microporoso monólito é formada dentro da microcanais que prender as partículas de sílica para extração de DNA. O monólito poroso é preparado in situ da seguinte forma: <ol><li> Os canais de superfície modificada são preenchidos com uma mistura de precursor monólito consistindo de Buma (15% em peso), EDMA (10% em peso), 1-dodecanol (52,5% em peso), ciclohexanol (22,5% em peso), DMPAP (wt 1% com relação de monômeros) e 0,7 mM partículas de sílica (15% em relação ao volume total da mistura pré-polímero). A sílica microesferas foram adquiridos da Polysciences, Inc. (Warrington, PA) e os monômeros e solventes porogenic forem comprados de Sigma-Aldrich, St. Louis, MO. </li><li> O chip é irradiada com UV no reticulador UV a 200 mJ / cm 2 para 1,1 min para iniciar a polimerização e do monômero em excesso é removido os canais de lavagem com 15 mL de metanol por meio de aspiração a vácuo. </li><li> As conexões fluídicas (TM NanoPorts conexões, Upchurch Científico, Oak Harbor, WA) são fixadas sobre a introdução e poços de captação dos canais microfluídicos. </li><li> O monólito poroso é lavada novamente com metanol por pelo menos 30 min usando a bomba de seringa a uma vazão de 100mL/hour. </li></ol> Fabricação de CNT lise monólito dentro dos canais microfluídicos de plástico Fabricação do (nanotubos de carbono) lise CNT monólito é um processo de duas etapas. Primeiro, os microcanais fabricados são superfície modificada (enxertada) da mesma maneira como para as colunas SPE no dispositivo de plástico. Após o processo de photografting, um polímero microporoso monólito é formada dentro da microcanais que está impregnada com nanotubos de carbono de paredes múltiplas. O monólito poroso é preparado in situ da seguinte forma: <ol><li> Multi-walled nanotubos são ressuspenso em ciclohexanol em uma concentração de 2.27M. Esta é a ressuspensão ultrasonicated durante 30 minutos a amplitude de 50% e 50% ciclo de trabalho com uma célula sonifier disruptor (Sonifier S-250D, fabricado pela Branson Ultrasonic, Danbury, CT). A sonicação desde uma suspensão eficaz e estável 0.5M de nanotubos de carbono. Os nanotubos de carbono foram comprados da Nanolabs (Brighton, MA). </li><li> Os canais de superfície modificada são preenchidos com uma mistura semelhante precursor monólito exceto que agora a solução de ciclohexanol + nanotubos de carbono é utilizado. A mistura monólito consiste em Buma (15% em peso), EDMA (10% em peso), 1-dodecanol (52,5% em peso), e + ciclohexanol CNTs (22,5% em peso). Para esta solução a DMPAP fotoiniciador é adicionado (1,13% em peso com respeito ao monômeros). Os monômeros, solventes e porogenic DMPAPA forem comprados de Sigma-Aldrich, St. Louis, MO. </li><li> O chip é irradiada com UV no reticulador UV a 120 mJ / cm 2 para 0,9 min para iniciar a polimerização. O dispositivo é girado 180 graus no crossliker e irradiado para uma outra min 0,9 a 120 mJ / cm 2. O monômero em excesso é removido os canais de lavagem com 50 mL de metanol por meio de aspiração a vácuo. </li><li> As conexões fluídicas (TM NanoPorts conexões, Upchurch Científico, Oak Harbor, WA) são fixadas sobre a introdução e poços de captação dos canais microfluídicos. </li></ol> Preparação de amostras de bactérias para uso com CNT lise monólito A preparação da amostra para uma amostra bacteriana envolve tomar uma medida de densidade óptica a 600nm para garantir que a amostra não é extremamente concentrado, de modo a evitar o entupimento do canal. <ol><li> Tome uma leitura de OD 600nm com as bactérias na mídia, isso é feito com um biophotometer (Eppendorf BioPhotometer, Eppendorf Scientific, Inc., Westbury, NY). Diluir a amostra até que as leituras OD estão dentro do intervalo 0,18-0,25 A. </li><li> Centrifugar a amostra a 6.500 rpm por 5 minutos e decantar o sobrenadante. </li></ol> Lise <ol><li> Ressuspender as bactérias em GuSCN * + 0,01% SDS + 4% Proteinase K (0.8mg/ml). Brevemente Vortex (1ml de bactérias em meios de comunicação deve ser ressuspenso em 1ml GuSCN). Proteinase K foi adicionada à solução para ajudar com desnaturação de proteínas que estão ligadas ao DNA bacteriano e inibir DNAases e RNAases. Um benefício adicional do K proteinase é que ele também ajuda com a quebra das proteínas da parede celular que é desejável uma vez que tanto bactérias gram-positivas e gram-negativas paredes celulares de bactérias contêm grandes quantidades de proteína (embora bactérias gram-negativas geralmente têm mais proteínas ). O buffer caotrópicos adicionalmente auxilia o K proteinase com desnaturação de proteínas, enquanto o detergente rompe a parede celular. Proteinase K e tiocianato guanidinium (GuSCN) foram adquiridos da Qiagen Inc. (Valencia, CA). SDS (dodecil sulfato de sódio) foi comprado de Pierce (Rockford, IL). </li><li> Imediatamente carga da amostra em uma seringa conectada ao tubo de PEEK. Aspirar a seringa de modo que nenhum ar é no sistema. Conecte o tubo à nanoport e canal. </li></ol> A bomba de seringa KDS100 (fabricado pela KD Scientific, Holliston, MA) foi utilizado para os experimentos ea vazão utilizada é de 450 mL / hora para todas as etapas. Fluxo do canal lise da amostra em 450ul/hr. <ol><li> Coletar a amostra e proceder à extracção de DNA através de SPE (ver protocolo de extração de DNA). Observação: Este exemplo bacteriana não precisará seguir passo de carga 2, desde a suspensão é GuSCN *. </li></ol> Extração de DNA Protocolo O procedimento de extração consiste em 3 passos: <ol><li> Carga. </li><li> Washington </li><li> Eluir. </li></ol> KDS100 bomba de seringa (fabricado pela KD Scientific, Holliston, MA) foi utilizado para os experimentos ea vazão utilizada foi de 300 mL / hora para todas as etapas. Carga <ol><li> Condição de canal com tampão caotrópicos (GuSCN *, tiocianato guanidinium) por 1-2 min antes de iniciar o experimento. </li><li> Misturar a amostra com tampão caotrópicos na relação de 1:1. </li><li> Fluxo de mistura da amostra através do canal durante 3 min. </li></ol> Lavar <ol><li> Lavar o canal com etanol 70% por 2 min. </li><li> Lavar o canal com etanol 100% por 2 min. </li></ol> Eluir <ol><li> Eluir o DNA extraído em água millipore por 3 min. Colete 15 mL de purificado, pronto PCR-DNA. </li></ol> * O GuSCN do kit Qiagen (buffer RLT) foi utilizado.

<ol><li>Bhattacharyya, A., Klapperich, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+and+chemical+analysis+of+plasma+and+ultraviolet-ozone+surface+treatments+for+thermal+bonding+of+polymeric+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Mechanical and chemical analysis of plasma and ultraviolet-ozone surface treatments for thermal bonding of polymeric microfluidic devices.</a> Lab Chip. 7, 876-882 (2007).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a declarar.

fabricação dos canais microfluídicos termoplásticos

Fabrication of the Thermoplastic Microfluidic Channels

Em nosso laboratório, conseguimos isolados ácidos nucléicos diretamente microlitro e submicroliter volumes de sangue humano, urina e fezes utilizando polímero / composto de nanopartículas de lise micro e colunas de extração em fase sólida. As amostras recuperadas estão concentradas, as amostras de pequeno volume que são PCRable, sem qualquer limpeza adicional. Aqui, demonstramos como fabricar chips microfluídicos termoplástico usando estampagem a quente e selagem a quente. Então, demonstrar como usar a luz na superfície situ dirigido enxertia e polimerização através do chip lacrado para formar o composto colunas fase sólida. Demonstramos enxertia e de polimerização de um nanotubo de carbono coluna / polímero para a lise celular bacteriana. Em seguida, mostrar o processo de lise seguido por extração em fase sólida de ácidos nucléicos a partir da amostra no chip usando um sílica / polímero coluna composta. Os protocolos anexos contêm instruções detalhadas sobre como fazer tanto lise e colunas de extração em fase sólida.

Aqui demonstramos como fabricar chips microfluídicos termoplástico usando estampagem a quente e selagem a quente. Então demonstrar como usar a luz na superfície situ dirigido enxertia e polimerização através do chip lacrado para formar o composto colunas fase sólida.

Fabricação dos canais microfluídicos Termoplásticos

Em nosso laboratório, isolamos com sucesso ácidos nucleicos diretamente de volumes de microlitros e submicrolitros de sangue, urina e fezes humanas utilizando...

Olá, meu nome é Aida Pria e acabei de concluir meu doutorado no laboratório da Dra. Katherine KLAS aqui na BU. E hoje vou demonstrar a fabricação de um dispositivo microfluídico termoplástico utilizando micro-replicação a quente e união térmica. Em seguida, demonstrarei o isolamento de ácidos nucleicos usando uma fase sólida contendo partículas de sílica, sendo que os ácidos nucleicos extraídos podem então ser utilizados para detecção por amplificação em PCR ou qualquer outro módulo diagnóstico.Olá, meu nome é Dominika Kalinski e sou aluna de pós-graduação no Laboratório de Microdispositivos Biomédicos e Microambientes da Universidade de Boston. Vou falar sobre a formação de um monólito de lisagem de nanotubos de carbono em um dispositivo microfluídico e sobre a formação de um monólito para extração em fase sólida para extração de DNA em um dispositivo microfluídico. Hoje vamos demonstrar um experimento sobre a produção e aplicação de colunas de lisagem em microescala e colunas de extração em fase sólida dentro de canais microfluídicos termoplásticos.Essas colunas podem ser usadas para a lise de células bacterianas e isolamento de ácidos nucleicos a partir do lisado celular. O primeiro passo do processo é a fabricação dos dispositivos microfluídicos. Em poliolefina cíclica, utilizamos um polímero, que é comercializado sob a denominação xx XX six 90 R, possui uma temperatura de transição vítrea de 136 graus Celsius e é transparente à luz UV.A transparência à UV é muito essencial para a química direcionada por luz utilizada na fabricação do monólito poroso dentro dos canais microfluídicos. Esta plataforma microfluídica é fabricada utilizando prensagem térmica micro e ligação térmica. Primeiramente, vou demonstrar o processo de prensagem térmica micro.Então, começamos com um molde mestre, que é um molde eletroformado de níquel-cobalto, e possui as características negativas ou invertidas do que é necessário na plataforma microfluídica. Colocamos, então, as paletas de Zion Nex sobre as características que desejamos no substrato plástico. O molde é então colocado em uma prensa quente, aquecida a 30 graus acima da temperatura de transição vítrea do polímero.Em seguida, isso é coberto com outra placa de metal e prensado a uma pressão entre 50 e 500 PSI, o que é adequado. Após cinco minutos, podemos liberar a pressão e remover os PLAs. Deixamos esfriar um pouco e, então, as duas placas são separadas manualmente e o molde é desprendido do substrato.É assim que o substrato fica. Após ser removido do molde, fazemos furos de 1,5 milímetro nas extremidades do canal para servir como poços de introdução e coleta. Em seguida, este substrato em relevo é termossoldado a outro pedaço liso de plástico para formar e fechar as estruturas microfluídicas.As duas peças são coladas na placa aquecida desta forma. A temperatura é reduzida à temperatura de transição vítrea do polímero, que é 136 Celsius. Para o processo de união térmica, novamente, as placas de metal são colocadas na prensa quente, que é aquecida até a temperatura de transição vítrea, ou seja, 136 graus Celsius, e prensadas juntas a 250 PSI por dois minutos.Na temperatura de transição vítrea, o polímero começa a derreter e fundir-se, e é assim que obtemos características microfluídicas fechadas. Após dois minutos, a pressão é liberada. É assim que o dispositivo microfluídico final se apresenta, com os canais fechados e os orifícios de acesso para introdução e coleta da amostra. Agora vamos preparar os microcanais para a formação do monólito polimérico poroso.O primeiro passo desse processo é um procedimento de enxertia. Alteramos a química da superfície dos microcanais e da plataforma Xan X six 90 R. Isso é necessário para que possamos obter a fixação covalente do monólito polimérico poroso dentro do microcanal.Essa modificação de superfície é um processo de enxertia, que envolve uma proporção de um para um de EDA para MMA com um fotoiniciador benzo fenona. Então, o que estou fazendo aqui é preparar uma concentração equimolar de MMA e EDA na solução. Adiciono 3% de benzo fenona para que possamos reticular este monólito dentro do canal.Uma vez que a solução de enxerto tenha sido misturada, pipetamos esta na microcanalização, onde, por ação capilar, preenche o canal. Após o preenchimento do canal, colocamos este em um cruzador UV, onde será reticulado por 10 minutos com um nível de energia de 200 milijoules por centímetro quadrado. Após os 10 minutos de exposição à UV, a solução de enxerto e a microcanalização são lavadas com metanol, utilizando aspiração a vácuo.O que farei aqui é colocar metanol em uma extremidade do canal usando vácuo para enxaguar o canal com metanol. Isso serve para remover qualquer solução em excesso que não foi polimerizada. Esta é uma comparação entre ciclol, etanol e ciclina, todos com nanotubos de carbono numa concentração de 2,27 molar.A ciclagem com nanotubos de carbono será realizada para obter uma dispersão uniforme dos nanotubos de carbono dentro da solução. Após o processo de enxerto, a química da superfície foi modificada e agora está pronta para uma fixação firme do monólito dentro do microcanal. Agora descreverei a formação do monólito de nanotubos de carbono VICIS.Isso é composto por grupos genéticos, solventes e monômeros. Os quatro elementos envolvidos neste processo são al a ecol, butil metacrilato e EDMA. Além disso, adicionamos um iniciador fotossensível para que possamos formar o monólito in situ por meio de uma polimerização por UV.Vou preparar uma amostra de cem microlitros. Vou pipetar 52,5 microlitros de ecol. Isso precisa ser feito lentamente, pois o ecol é viscoso.Após a ecol, adicionaremos os nanotubos de carbono com cyclo anol. É necessário vortexar vigorosamente por alguns minutos para garantir uma dispersão adequada. Novamente, precisamos pipetar lentamente o cyclo andal e os nanotubos de carbono, pois esta é uma solução Abicus.Em seguida, adicionamos 15 microlitros de butil metAly. E, finalmente, adicionamos 10 microlitros de EDMA. Vamos agitar brevemente em vórtex, adicionar o nosso iniciador fotossensível e então sonicar esta mistura.O fotoiniciador que adicionamos é o DM PAP ao monólito de lise. Este é adicionado numa concentração de 1,13 ao volume total desta solução de cem microlitros. Após a adição, como se trata de um fotoiniciador, devemos cobrir a nossa solução de monólito de lise para garantir que não haja exposição enquanto sonicamos esta.Isso será submetido à sonicação por 30 minutos com uma amplitude de 50% e ciclo de trabalho de 50%. Esse ciclo de trabalho de 50% tem como finalidade evitar o superaquecimento da solução. É extremamente importante retirar a solução após a sonicação e trabalhar rapidamente.Isso porque queremos garantir uma dispersão uniforme dos nanotubos de carbono na solução, já que iremos pipetar a solução para dentro do microcanal. Aqui temos a solução de lise. Logo após a sonicação e trabalhando muito rapidamente, pipetamos o volume para dentro do microcanal utilizando ação capilar; a solução flui para dentro do canal.Colocamos isso no crosslinker por 0,9 minutos a um nível de energia de 120 milijoules por centímetro quadrado. Após esses 0,9 minutos, viramos o dispositivo. Esse giro tem como finalidade permitir uma polimerização mais uniforme e uma distribuição mais homogênea dos nanotubos de carbono no canal.Uma vez que o monólito tenha sido polimerizado e lavado com metanol, a solução do monômero, o monólito em seu interior não estará mais transparente, mas sim branco intenso, com pequenas partículas pretas, que serão os nanotubos de carbono no monólito. O monólito para extração em fase sólida é produzido de maneira semelhante ao monólito de nanotubos de carbono e lise. Este é o cultivo bacteriano em meio líquido, e aqui temos uma amostra do nosso meio de cultura.Uma vez que tenhamos diluído a amostra, pipetaremos este volume para um tubo e o centrifugaremos. Em seguida, decantaremos o meio, tomando cuidado para não perturbar o pellet bacteriano na parede do tubo einor. Então, as bactérias são ressuspendidas em uma solução contendo gudo, dium, thio, SDS e protease K. A gu diem tiocianato pipetada possui o mesmo volume em que as bactérias foram suspensas.Aqui, as bactérias foram suspensas em um mil, então eu vou ressuspendê-las em um mil de tiocianato de guanidina para o tiocianato de gu. Vou adicionar proteinase K. Estou adicionando 45 microlitros e RNAs. A última solução que estou adicionando é SDS.Após isso, a solução é vortexada. Após a vortexagem, pipetaremos a amostra bacteriana em uma seringa descartável. Aqui estamos usando uma seringa descartável Excel de três mil.Isso possui um encaixe para isca, que se conecta ao tubo capilar, e faremos a conexão ao nosso dispositivo por meio de nanoconectores. Então, vou pipetar a solução na seringa descartável. Precisamos aspirar para garantir que não haja ar no sistema.Você deve fazer isso até obter uma ou duas gotas saindo da outra extremidade. Agora que temos nossa solução pronta para conexão ao nosso dispositivo, colocaremos nossa seringa descartável na bomba de seringa KDS e conectaremos a extremidade do nosso adaptador ao nosso dispositivo com licença, que possui portas nano nas quais aplicamos epóxi em cada extremidade. Isso permite uma conexão firme ao dispositivo.Essas são conexões parafusáveis, e normalmente gostamos de fixar o dispositivo com fita para garantir que ele não vire. Aqui, vamos ajustar a taxa de fluxo para quatro ou cinco mililitros por hora. Esta é uma bomba de deslocamento, que forçará a solução através da seringa, pela tubulação e até esta conexão, passando pelo canal.E coletaremos a amostra por meio desta nanoporta de saída. Podemos coletar o poluente usando uma pipeta, e este poluente será submetido à próxima etapa, o processo de extração em fase sólida, para isolar o DNA bacteriano para o isolamento dos ácidos nucleicos. A fase sólida contendo as partículas de sílica é condicionada com guanidina contendo tampão de lise.Isso é feito preenchendo uma seringa com o tampão de lise e conectando-a à bomba de seringa, e o tampão é fluído através do canal a uma taxa de fluxo de 300 microlitros por hora. Em seguida, realiza-se a carga da amostra. A amostra aqui é o lisado celular bacteriano que obtivemos da etapa anterior de lise.Novamente, a carga, esta amostra é carregada por três minutos a uma taxa de fluxo de 300 microlitros por hora. Após isso, o canal é lavado com etanol a 70%, novamente a uma taxa de fluxo de 300 microlitros por hora. Este passo de lavagem remove todas as proteínas absorvidas e contaminantes, e o resíduo é coletado a partir do coletor.Bem, usando uma pipeta após a etapa de lavagem, que remove todos os contaminantes. O DNA que estava ligado à sílica é então eluído em água. Então, esta é uma seringa contendo água destilada.Ele é fixado no chip e, novamente, a água é fluída a uma taxa de fluxo de 300 microlitros por hora, coletando-se a amostra na outra extremidade. Isso é feito por três minutos, coletando-se 15 microlitros de eluente, que é apenas DNA puro em água, e está pronto para PCR para a fabricação do dispositivo termoplástico. O maior desafio é o aspecto da união térmica, pois a ligação é feita em uma temperatura muito alta, na ou próxima à temperatura de transição vítrea do polímero, com a aplicação de alguma pressão, e pequenas variações na pressão ou na temperatura podem completamente obliterar o canal ou criar um selamento inadequado entre as duas partes plásticas.Portanto, manter a temperatura e a pressão ideais é muito importante e pode ser um pouco desafiador. Os elementos principais que apresentam dificuldades nesse processo são a obtenção de uma distribuição uniforme de nanotubos de carbono na solução de monômero que é polimerizada por UV in situ. Esse é também um desafio semelhante ao de obter uma dispersão homogênea das partículas de sílica no monólito polimérico poroso para extração em fase sólida.

fabrication-of-the-thermoplastic-microfluidic-channels

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Fonte: Kurz, D. L., et al. Plataforma microfluídica para estudar bioentupimento em meios porosos. J. Vis. Exp. (2022)O vídeo demonstra o uso de um dispositivo microfluídico para estudar a formação de biofilmes. Uma suspensão bacteriana é introduzida no microcanal, seguida de incubação para permitir o desenvolvimento do biofilme. O fluxo é então retomado, e o monitoramento de pressão junto com imagens é usado para detectar formação de biofilme e obstrução dos poros ao longo do tempo.

Um dispositivo microfluídico para imagem em tempo real e acompanhamento de pressão durante a formação do biofilme

Uma plataforma de microcanais-on-a-chip foi desenvolvido pela combinação da técnica fotolitográfica refluído fotossensível, litografia macia, e microfluidos. A plataforma de microcanais reendotelizados imita a geometria tridimensional (3D) de microvasos in vivo, é executado sob fluxo de perfusão contínua controlada, permite a imagem de alta qualidade e em tempo real, e pode ser aplicado para a pesquisa microvascular.

Procedimento para o Desenvolvimento da Multi-profundidade Circular transversal reendotelizados microcanais-on-a-chip

Dois fluidos adjacentes que passam por um canal microfluido ranhurado podem ser direcionados para formar uma baia em torno de um núcleo prepolímero; determinando, assim, tanto a forma quanto a seção transversal. A polimerização fotoincializada, como a química do clique de tiol, é adequada para solidificar rapidamente o fluido do núcleo em uma microfibra com tamanho e forma predeterminados.

Fabricação microfluida de fibras poliméricas e biohibridas com tamanho e forma predesigned

É descrito um protocolo para a fabricação de dispositivos microfluídicos plástico com vista-portas transparentes para a imagem latente de luz visível e infravermelho.

Procedimento litográfico macio para a produção de dispositivos microfluídicos plástico com vista-portas transparentes à luz visível e infravermelho

Um canal de microfluidic com paredes laterais deformáveis oferece controle de fluxo, manipulação de partículas, personalização de dimensão do canal e outras reconfigurações durante a utilização. Nós descrevemos um método para fabricar um canal microfluidic com paredes laterais de uma matriz de pinos que permite que sua forma de mudar.

Canal de Microfluidic reconfiguráveis com Sidewalls Pin-diferenciado

Vários métodos estão disponíveis para a fabricação de canais das seções não-retangulares incorporadas em dispositivos microfluídicos de polidimetilsiloxano. A maioria deles envolve várias etapas fabricação e extenso alinhamento. Neste trabalho, uma abordagem de uma etapa é relatada para fabricar microfluidic canais de diferentes geométrica das secções transversais pelo polidimetilsiloxano sequencial gravura molhado.

Abordagem de uma etapa para fabricar polidimetilsiloxano Microfluidic canais de diferentes seções geométricas por processos sequenciais gravura molhado

Este protocolo descreve a fabricação de dispositivos microfluídicos de MY133-V2000 eliminar artefatos que surgem frequentemente em microcanais devido os índices de refracção incompatível entre estruturas microchannel e uma solução aquosa. Este protocolo utiliza um suporte de acrílico para comprimir o dispositivo encapsulado, melhorando a adesão tanto quimicamente e mecanicamente.

Fabricação de dispositivos de refração-índice-combinada para microfluídica biomédica

Aqui apresentamos um protocolo para projetar e fabricar dispositivos microfluídicos personalizados com o mínimo de investimento financeiro e de tempo. O objetivo é facilitar a adoção de tecnologias microfluídicas em laboratórios de pesquisa biomédica e ambientes educacionais.

Fabricação rápida de dispositivos microfluídicos personalizados para pesquisa e aplicações educacionais

A microfluídica é uma ferramenta poderosa para o desenvolvimento de testes de diagnóstico. No entanto, equipamentos e materiais caros, bem como técnicas de fabricação e manuseio trabalhosas, são frequentemente necessários. Aqui, detalhamos o protocolo de fabricação de um dispositivo microfluídico acrílico para imunoensaios magnéticos baseados em micro e nanopartículas em um ambiente de baixo custo e simples de usar.

Microfresagem de Controle Numérico Computacional de um Dispositivo Acrílico Microfluídico com uma Restrição Escalonada para Imunoensaios Magnéticos Baseados em Nanoppartículas

O presente protocolo descreve uma plataforma microfluídica para estudar o desenvolvimento de biofilme em meios porosos quase-2D, combinando imagens de microscopia de alta resolução com medidas simultâneas de diferença de pressão. A plataforma quantifica a influência do tamanho dos poros e das taxas de fluxo de fluido em meios porosos no bioentupimento.

Uma plataforma microfluídica para o estudo do bioentupimento em meios porosos

Aprenda a fabricação de dispositivos microfluídicos termoplásticos por embossagem térmica e soldagem térmica. Este método demonstra isolamento de ácidos nucleicos por extração em fase sólida para aplicações em PCR e diagnósticos.

Fabricação dos canais microfluídicos Termoplásticos

Explorar mais vídeos