Name: Intubação endotraqueal via traqueotomia e subsequente toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 43 s
Description: Aprenda intubação endotraqueal via traqueotomia e toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência. Este método padronizado melhora a precisão da ventilação invasiva em modelos animais.

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Todas as atividades com animais descritas aqui foram aprovadas pelo comitê institucional de cuidados e uso de animais (IACUC) do Conselho Regional de Baden-Württemberg em Karlsruhe, Alemanha. Os animais experimentais foram gerenciados de acordo com os padrões institucionais e de acordo com as leis alemãs para uso e cuidados com os animais e de acordo com as diretrizes do Conselho da Comunidade Europeia (2010/63/UE), bem como as diretrizes ARRIVE, e foram conduzidos em instalações credenciadas. Foram utilizados ratos machos da raça Spraque Dawley da Janvier Labs com peso de 400 g.
1. Preparação do procedimento (Figura 1)
<ol>
	<li>Prepare os ganchos de preparação cirúrgica dobrando cânulas em um ângulo de 135° a 1 cm em relação à ponta, conectando-as a tubos de perfusão de plástico via Luer-lock e aplicando tensão usando uma pinça cirúrgica contra mosquitos (Figura 1A,B).</li>
	<li>Prepare um aparelho de exposição cirúrgica de roedores. NOTA: Além da disponibilidade de plataformas comerciais, estas também podem ser facilmente autoconstruídas de forma econômica, como neste estudo.<ol>
		<li>Para isso, use uma placa de aço de 40 cm x 50 cm com 4 mm de espessura. Crie vários furos de 8 mm usando uma broca de aço no local desejado para os pontos de tensão subsequentes. Coloque as hastes de fixação em forma de Y nesses locais.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Coloque uma almofada de aquecimento em cima da placa de aço do aparelho de exposição cirúrgica para fornecer suporte térmico.</li>
	<li>Prepare os ganchos de preparação cirúrgica com tubos de plástico acoplados e pinças cirúrgicas contra mosquitos para posteriormente aplicar tensão ao tecido para exposição cirúrgica.</li>
	<li>Remova o plugue de uma seringa de plástico de 10 mL com uma extremidade Luer-lock macho e corte a extremidade proximal da seringa. Insira a parte distal na bolsa de ventilação conforme ilustrado e feche-a hermeticamente, cobrindo-a com um tubo termoencolhível e aplicando calor suave usando uma tocha de laboratório (Figura 1D-F).</li>
	<li>Encurte e chanfre diferentes tamanhos de cateteres intravenosos e insira um fio-guia de um conjunto de cateterismo líder arterial com a extremidade do fio flexível na ponta no tamanho do cateter mais apropriado para o respectivo tamanho de animal (presumivelmente 14 G) para a técnica de Seldinger subsequente22,23 durante a intubação (Figura 1G,H).</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig01v2.jpg"> 
Figura 1: Configuração experimental. (A) Uma cânula dobrada conectada a um tubo de perfusão usado como gancho de preparação cirúrgica. (B) Gancho de preparação com grampo posicionado em uma haste de fixação metálica. (C) Animal sedado antes da intervenção. (D) Bolsa de ventilação de neonatologia. (E-F) Montagem hermética de uma seringa Luer-lock na bolsa de ventilação usando um tubo termoencolhível. (G) Cateteres intravenosos encurtados e chanfrados em diferentes tamanhos com fio-guia de um conjunto de cateterismo líder arterial para a técnica de Seldinger. (H) Construção final feita sob medida. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig01largev2.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
2. Anestesia e analgesia
<ol>
	<li>Anestesie o rato com a medicação de sua escolha. NOTA: Aqui, a anestesia e a analgesia foram estabelecidas com cetamina 10% (100 mg/mL), xilazina 2% (20 mg/mL), carprofeno 50 mg/mL e isoflurano. Uma diluição de 1:10 de xilazina e carprofeno foi usada como soluções estoque para aplicação.<ol>
		<li>Induzir a anestesia colocando o animal em uma caixa de indução inundada com oxigênio a 100% a uma taxa de entrada de 5 L/min complementada por 4% (v) de isoflurano usando um vaporizador.</li>
		<li>Após a inconsciência, remova o animal da caixa de indução e injete (i.p.) com 100 mg / kg de peso corporal de cetamina e 4 mg / kg de peso corporal de xilazina. NOTA: Isso corresponde a 40 mg de cetamina (0,4 mL da solução original) e 1,6 mg de xilazina (0,08 mL da solução original ou 0,8 mL da solução 1:10) para um animal de 400 mg.</li>
		<li>Coloque o animal de volta na caixa de indução inundada com isoflurano até que o efeito da injeção intravenosa se instale.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Garanta a profundidade anestésica adequada testando a falta de resposta do rato a uma pinça firme do dedo do pé.</li>
	<li>Aplique pomada oftálmica nos olhos.</li>
	<li>Avalie e mantenha a profundidade da anestesia durante a cirurgia.<ol>
		<li>Quando os efeitos narcóticos parecerem diminuir com o tempo (aproximadamente a cada hora), injete (s.c) no animal 50 mg / kg de peso corporal de cetamina e 1 mg / kg de peso corporal de xilazina. Isso corresponde a 20 mg de cetamina (0,2 mL da solução original) e 0,4 mg de xilazina (0,2 mL da solução 1:10) para um animal de 400 mg.</li>
		<li>Forneça analgesia adicional antes da toracotomia com uma injeção s.c. de 5 mg / kg de peso corporal de carprofeno. Isso corresponde a 2 mg de carprofeno (0,04 mL da solução original ou 0,4 mL da solução 1:10) para um animal de 400 mg.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Preparo cirúrgico (Figura 2)
<ol>
	<li>Saturar a circulação animal com oxigênio, oferecendo inalação de oxigênio a 100% por meio de uma máscara neonatal transnasal (Figura 2A).</li>
	<li>Após 5 min, troque a máscara neonatal transnasal para a confecção de uma bolsa de ventilação neonatal com uma seringa plástica masculina com ponta Luer-lock conforme descrito acima e ofereça oxigênio em transbordamento com a ponta da seringa próxima à ponta nasal do animal (Figura 2B).</li>
	<li>Realize uma incisão na pele toracocervical mediana no comprimento desejado e exponha a situação cirúrgica usando os ganchos de preparação cirúrgica (Figura 2C,D).</li>
	<li>Avance a preparação por dissecção romba com tesoura fina através da fáscia cervical. Exponha o músculo esternocleidomastóideo e infra-hióideo e lateralize o músculo infra-hióideo mediano para a direita após a dissecção da membrana lateral esquerda (Figura 2E-G).</li>
	<li>Realize a dissecção romba em direção à traqueia e tunelização da traqueia usando pinças overholt (Figura 2H-I).</li>
	<li>Estilingue a traqueia usando uma alça de vaso de silicone e estilingue duplo a traqueia distal usando uma sutura de polifilamento para posterior fixação da cânula endotraqueal (Figura 2J-N).</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig02.jpg"> 
Figura 2: Preparação da traqueia. (A) Inalação de oxigênio via máscara. (B) Mude da máscara para a seringa Luer-lock macho para aplicação de oxigênio. (C) Incisão cutânea toracocervical. (D) Preparação através da fáscia cervical. (E) exposição do músculo esternocleidomastóideo e do músculo infra-hióideo. (F) Lateralização do músculo infra-hióideo mediano. (G) Dissecção romba em direção à traqueia. (H) tunelização da traqueia usando pinças overholt. (I) Lançamento da traqueia usando uma alça de vaso de silicone. (J-N) Duplo slinging caudal da traqueia com sutura de polifilamento para posterior fixação da cânula endotraqueal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
4. Procedimento de intubação (Figura 3)
<ol>
	<li>Alongue a traqueia com um alicate atraumático (Figura 3A, B).</li>
	<li>Realizar uma incisão parcial da traqueia de 180° de circunferência com tesoura (Figura 3C-F).</li>
	<li>Introduzir um fio-guia de Seldinger com a extremidade flexível na traqueia (Figura 3G-H) e, em seguida, introduzir o cateter intravenoso modificado de circunferência apropriada na traqueia guiado pelo fio de Seldinger (Figura 3I-N).</li>
	<li>Remova o fio de Seldinger (Figura 3O), conecte a ponta Luer-lock do cateter traqueal à bolsa de ventilação modificada e inicie uma ventilação manual suave e protetora dos pulmões com alta frequência e baixo volume corrente (Figura 3P). Realize a ventilação manual enquanto a toracotomia mediana não tiver sido realizada e o pulmão não estiver à vista.</li>
	<li>Amarre a sutura bloqueada previamente colocada com um nó deslizante para evitar vazamento aéreo e remoção acidental do cateter (Figura 3Q-T).</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig03.jpg"> 
Figura 3: Intubação endotraqueal por traqueostomia. (A) Situação inicial após o preparo. (B) Alongamento caudal da traqueia com alicate atraumático. (C-F) Incisão parcial da traqueia de 180° de circunferência. (G, H) Introdução de um fio-guia de Seldinger na traqueia. (I-M) Introdução do cateter intravenoso modificado na traqueia guiado pelo fio de Seldinger. (NO) Remoção do fio de Seldinger. (P) Conexão Luer-lock do cateter traqueal à bolsa de ventilação modificada. (Q-T) Amarração da sutura bloqueada previamente colocada para evitar a remoção acidental do cateter. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
5. Ventilação manual e toracotomia mediana (Figura 4)
<ol>
	<li>Inicie a toracotomia mediana a partir do xifóide usando uma tesoura de material rombudo e estável (Figura 4A,B) e continue cranialmente através do esterno. Sempre pausar a ventilação por alguns segundos ao avançar com a tesoura subesternalmente e ao cortar para evitar trauma no pulmão (Figura 4C-E).</li>
	<li>Ganhe exposição torácica usando ganchos de preparação cirúrgica e remova as membranas serosais mediastinais (Figura 4F-H).</li>
	<li>Continue a ventilação manual com a frequência e o volume corrente desejados e expanda o monitoramento (por exemplo, estabelecer uma medição da pressão arterial intra-arterial, instalar um cateter venoso central ou arterial pulmonar, dependendo da finalidade ou da respectiva questão de pesquisa) (Figura 4I-L).</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig04.jpg"> 
Figura 4: Ventilação manual e toracotomia mediana. (A) situação inicial após a intubação. (BE) Toracotomia mediana a partir do xifóide. (F-I) Exposição torácica com ganchos de preparo cirúrgico. (J) Configuração final durante a ventilação. (K-L) o processo de ventilação manual. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig04large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
6. Eutanásia
<ol>
	<li>Alcançar a eutanásia por cardiectomia abrupta e afiada usando tesoura no animal profundamente anestesiado.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Protocolo de intubação endotraqueal baseado em traqueotomia para modelos de ratos não sobreviventes

<ol><li>Czigany, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limb+remote+ischemic+conditioning+of+the+recipient+protects+the+liver+in+a+rat+model+of+arterialized+orthotopic+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Limb remote ischemic conditioning of the recipient protects the liver in a rat model of arterialized orthotopic liver transplantation.</a> PLoS One. 13 (4), e0195507(2018).</li>
<li>Czigány, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+research+practice+in+rat+orthotopic+and+partial+orthotopic+liver+transplantation%3A+A+review%2C+recommendation%2C+and+publication+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Improving research practice in rat orthotopic and partial orthotopic liver transplantation: A review, recommendation, and publication guide.</a> Eur Surg Res. 55 (1-2), 119-138 (2015).</li>
<li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+procedures+for+a+rat+model+of+partial+orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+arterial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction.</a> J Vis Exp. 73, e4376(2013).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+assessment+of+laryngotracheal+injury+following+transoral+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for assessment of laryngotracheal injury following transoral intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 113, 4-10 (2018).</li>
<li>Lamoureux, L., Radhakrishnan, J., Gazmuri, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+of+ventricular+fibrillation+and+resuscitation+by+conventional+closed-chest+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A rat model of ventricular fibrillation and resuscitation by conventional closed-chest technique.</a> J Vis Exp. 98, 52413(2015).</li>
<li>Wang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoinducer-2+of+streptococcus+mitis+as+a+target+molecule+to+inhibit+pathogenic+multi-species+biofilm+formation+in+vitro+and+in+an+endotracheal+intubation+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Autoinducer-2 of streptococcus mitis as a target molecule to inhibit pathogenic multi-species biofilm formation in vitro and in an endotracheal intubation rat model.</a> Front Microbiol. 7, 88(2016).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+tracheal+mucosal+damage+assessment+of+following+long+term+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for tracheal mucosal damage assessment of following long term intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 128, 109738(2020).</li>
<li>Rivard, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+intubation+and+ventilation+for+surgical+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Surg%22%5BJournal%5D)">Rat intubation and ventilation for surgical research.</a> J Invest Surg. 19 (4), 267-274 (2006).</li>
<li>Na, N., Zhao, D. Q., Huang, Z. Y., Hong, L. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+rat+intubation+and+thymectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Med+J+%28Engl%29%22%5BJournal%5D)">An improved method for rat intubation and thymectomy.</a> Chin Med J (Engl). 124 (17), 2723-2727 (2011).</li>
<li>Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+protocols+in+laboratory+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomed%22%5BJournal%5D)">Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes.</a> Acta Biomed. 89 (3), 337-342 (2018).</li>
<li>Fuentes, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videoendoscopic+endotracheal+intubation+in+the+rat%3A+A+comprehensive+rodent+model+of+laparoscopic+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Videoendoscopic endotracheal intubation in the rat: A comprehensive rodent model of laparoscopic surgery.</a> J Surg Res. 122 (2), 240-248 (2004).</li>
<li>Bryda, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mighty+mouse%3A+The+impact+of+rodents+on+advances+in+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Mo+Med%22%5BJournal%5D)">The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research.</a> Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).</li>
<li>Lazopoulos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+thoracotomy+for+pneumothorax%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Dis%22%5BJournal%5D)">Open thoracotomy for pneumothorax.</a> J Thorac Dis. 7 (S1), S50-S55 (2015).</li>
<li>Rendell, V. R., Giamberardino, C., Li, J., Markert, M. L., Brennan, T. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complete+thymectomy+in+adult+rats+with+non-invasive+endotracheal+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Complete thymectomy in adult rats with non-invasive endotracheal intubation.</a> J Vis Exp. 94, 52152(2014).</li>
<li>Thomas, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+mice+via+direct+laryngoscopy+using+an+otoscope%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope.</a> J Vis Exp. 86, 50269(2014).</li>
<li>Nelson, A. M., Nolan, K. E., Davis, I. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Repeated orotracheal intubation in mice.</a> J Vis Exp. 157, 60844(2020).</li>
<li>Das, S., Macdonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A simple method of mouse lung intubation.</a> J Vis Exp. 73, e50318(2013).</li>
<li>Massick, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+learning+curve+for+percutaneous+dilatational+tracheotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Quantification of the learning curve for percutaneous dilatational tracheotomy.</a> Laryngoscope. 110 (2 Pt 1), 222-228 (2000).</li>
<li>Giugliano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Learning+curve+for+translaryngeal+tracheotomy+in+head+and+neck+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Learning curve for translaryngeal tracheotomy in head and neck surgery.</a> Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 628-633 (2001).</li>
<li>Mort, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emergency+tracheal+intubation%3A+Complications+associated+with+repeated+laryngoscopic+attempts%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts.</a> Anesth Analg. 99 (2), 607-613 (2004).</li>
<li>Hasegawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+between+repeated+intubation+attempts+and+adverse+events+in+emergency+departments%3A+An+analysis+of+a+multicenter+prospective+observational+study%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Emerg+Med%22%5BJournal%5D)">Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study.</a> Ann Emerg Med. 60 (6), 749-754.e742 (2012).</li>
<li>Titu, I. M., Delaca, G. B., Teterea, F., Ciulic, S. A., Palade, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+tracheostomy+using+the+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Multimed+Man+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Percutaneous tracheostomy using the Seldinger technique.</a> Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, (2023).</li>
<li>Garry, B. P., Bivens, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Anesth%22%5BJournal%5D)">The Seldinger technique.</a> J Cardiothorac Anesth. 2 (3), 403(1988).</li>
<li>Carbone, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimating+mouse+and+rat+use+in+American+laboratories+by+extrapolation+from+animal+welfare+act-regulated+species%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Estimating mouse and rat use in American laboratories by extrapolation from animal welfare act-regulated species.</a> Sci Rep. 11 (1), 493(2021).</li>
<li>Su, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacious+and+safe+orotracheal+intubation+for+laboratory+mice+using+slim+torqueable+guidewire-based+technique%3A+Comparisons+between+a+modified+and+a+conventional+method%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Anesthesiol%22%5BJournal%5D)">Efficacious and safe orotracheal intubation for laboratory mice using slim torqueable guidewire-based technique: Comparisons between a modified and a conventional method.</a> BMC Anesthesiol. 16, 5(2016).</li>
<li>Clary, E. M., O'halloran, E. K., De La Fuente, S. G., Eubanks, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videoendoscopic+endotracheal+intubation+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Videoendoscopic endotracheal intubation of the rat.</a> Lab Anim. 38 (2), 158-161 (2004).</li>
<li>Ghali, M. G. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+technique+for+tracheostomy+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22MethodsX%22%5BJournal%5D)">Microsurgical technique for tracheostomy in the rat.</a> MethodsX. 5, 61-67 (2018).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Ambu Spur II Bolsa de ventilação de uso único para recém-nascidos</td><td>Meier Medizintechnik</td><td>335 102 000</td><td>Bolsa de ventilação</td></tr><tr><td>BD Microlance 3 cânula 20 G</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>301300</td><td>Cânula</td></tr><tr><td>BD Microlance Discardit II Seringa de 20 mL</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>300296</td><td>Seringa de plástico</td></tr><tr><td>Hastes de fixação</td><td>Legefirm</td><td>&lrm; 500343896</td><td>Diapasões utilizados como hastes de fixação metálicas em forma de Y</td></tr><tr><td>Tubo termo-retráctil</td><td>Sekesoer</td><td>RSG-400</td><td>Tubo termo-retráctil</td></tr><tr><td>Cateter intravenoso</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>393230</td><td>BD Venflon Pro Cateter intravenoso de segurança 14 G; encurtado com tesoura; em alternativa, pode ser utilizado 16 G ou 18 G</td></tr><tr><td>Tubo perfusor de plástico</td><td>M. Schilling GmbH</td><td>S702NC150</td><td>Tubo de ligação COEX 150 cm</td></tr><tr><td>Sutura de polifilamento</td><td>COVIDIEN</td><td>CL331</td><td>Sutura cirúrgica de polifilamento recomendada com uma força de 1 a 2; a agulha pode ser removida</td></tr><tr><td>Royal Gardineer Almofada de aquecimento Tamanho S, 20 Watt</td><td>Royal Gardineer</td><td>IP67</td><td>Almofada de aquecimento</td></tr><tr><td>Fio guia Seldinger</td><td>VYGON</td><td>115.798</td><td>Fio guia de metal do conjunto de líder arterial</td></tr><tr><td>Abraçadeira de laço de vaso de silicone</td><td>SERAG WIESSNER</td><td>SL26</td><td>Gravata de laço de vaso de silicone 2,5 mm vermelho</td></tr><tr><td>Ratos Spraque Dawley</td><td>Janvier Labs</td><td></td><td>Ratos machos pesando 400 gramas</td></tr><tr><td>Placa de aço</td><td>Maschinenbau Feld GmbH</td><td>C010206</td><td>Chapa galvanizada, 40 x 50 cm, espessura 4,0 mm</td></tr></tbody></table>

intubação endotraqueal via traqueotomia e subsequente toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência

Endotracheal Intubation via Tracheotomy and Subsequent Thoracotomy in Rats for Non-Survival Applications

A intubação endotraqueal via traqueotomia e subsequente toracotomia foi realizada em 10 ratos machos (peso médio de 405 ± 30 g) para aplicações de não sobrevivência. O procedimento foi realizado por um residente cirúrgico do segundo ano. A taxa de sucesso definida pela sobrevida acima de 20 min de intubação e ventilação foi de 100%. A duração média do preparo e intubação do procedimento desde a incisão na pele até a fixação do tubo de intubação foi de 6:55 ± 0:53 min (Tabela 1).
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Número de animais utilizados</td>
			<td>10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peso corporal (média e desvio-padrão)</td>
			<td>405 ± 30 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taxa de sucesso da intubação</td>
			<td>100%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Duração do procedimento (média e desvio-padrão)</td>
			<td>6:55 ± 0:53 min</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Saturação média de oxigênio</td>
			<td>96%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Saturação mínima de oxigênio</td>
			<td>92%</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 1: Resultados representativos. Resultados representativos do protocolo em 10 animais.
A saturação foi monitorada por meio de uma sonda de oximetria de pulso autoadesiva de uso único na perna traseira e nunca caiu abaixo de 92%. A ventilação espontânea foi contida até a incisão do diafragma. Todos os ratos sobreviveram aos 20 minutos necessários para as medidas experimentais até a eutanásia intencional por meio de cardioectomia aguda abrupta (Figura 5).
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig05.jpg"> 
Figura 5: Saturação periférica de oxigênio. Saturação periférica de oxigênio medida durante toda a duração deste procedimento. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig05large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Intubação endotraqueal via traqueotomia e subsequente toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that ...

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Research

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Medicine

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Neste vídeo, demonstramos a intubação traqueal — um procedimento invasivo para inserção de um tubo endotraqueal pela boca em um modelo de coelho. Este procedimento permite a ventilação mecânica dos pulmões.

Intubação Traqueal para Ventilação Mecânica: Procedimento para Inserção de Tubo Endotraqueal na Traqueia de Coelho Modelo

Nós desenvolvemos um método simples, confiável e relativamente barata para a intubação traqueal em ratos através de laringoscopia direta utilizando um otoscópio com um espéculo 2,0 mm. Esta técnica é não traumático e pode ser usado para as medições repetidas em experiências crónicas. Achamos superior à traqueostomia ou relatado anteriormente técnicas não cirúrgicas.

Entubação endotraqueal em Ratos<em&gt; Via</em&gt; Laringoscopia direta Usando um otoscópio

A timectomia com roedores é uma técnica valiosa na pesquisa imunológica.  Aqui, é descrito um protocolo para timectomia completa em ratos adultos usando uma miniesternotomia juntamente com intubação não invasiva e ventilação com pressão positiva para minimizar a morbidade e mortalidade perioperatórias.

Timectomia completo em ratos adultos com não-invasiva entubação endotraqueal

Este artigo apresenta um método rápido e simples para a administração de bleomicina diretamente na traquéia do mouse através de intubação. As principais vantagens deste método é que ele é altamente reprodutível, fácil de dominar, e não requer equipamento especializado ou tempos de recuperação longos.

Um método melhorado para rápida de intubação da traqueia em Ratos

Este protocolo induz lesão pulmonar aguda em um camundongo que tem estreita fidelidade à patogênese da pneumonite ácida observada em humanos. Geramos uma lesão pulmonar aguda não letal máxima de baixo pH e consideramos as diferenças na estrutura respiratória anatômica roedor-humano usando uma traqueostomia aberta acoplada à liberação de pressão circunferencial.

Abrir traqueostomia ácido gástrico aspiração Modelo murino de lesão pulmonar aguda Resultados em Maximal aguda não-letal Lung Injury

A roedor pneumonectomia esquerda é uma técnica valiosa na investigação de hipertensão pulmonar. Aqui, apresentamos um protocolo para descrever o procedimento de pneumonectomia de rato e cuidados pós-operatórios para garantir mínima morbidade e mortalidade.

A pneumonectomia esquerda combinado com Monocrotaline ou Sugen como modelo de hipertensão pulmonar em ratos

O objetivo deste artigo é descrever um método refinado de intubação do rato de laboratório. O método é não invasivo e, portanto, ideal para estudos que requerem monitoramento serial da função respiratória e/ou instilação de tratamentos no pulmão.

Intubação Orotraqueal Repetida em Camundongos

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Estudo de modelos experimentais de doação de órgãos para transplante pulmonar

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Uma abordagem estruturada para extubação em ratos ventilados mecanicamente

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Intubação Orotraqueal Assistida por Vídeo em Ratos Usando um Otoscópio Conectado a Smartphone de Baixo Custo

Aprenda intubação endotraqueal via traqueotomia e toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência. Este método padronizado melhora a precisão da ventilação invasiva em modelos animais.

Intubação endotraqueal via traqueotomia e subsequente toracotomia em ratos para aplicações de não sobrevivência

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