Name: Determinação do Débito Cardíaco em Modelo Suíno para Perfusão Pulmonar Ex Vivo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-06-28T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: Aprenda a determinar o débito cardíaco em modelo suíno para perfusão pulmonar ex vivo usando cateter de termodiluição. Esta técnica avalia fluxos de perfusão adequados para preservação pulmonar.

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Os autores querem agradecer a Roberto, Rueda e Sergio Martínez por sua inestimável assistência técnica com suporte técnico com animais.

O protocolo (B09-17) foi aprovado pelo comitê de bioética do INER (Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias "Ismael Cosio Villegas"). Vinte e três porcos Landrace clinicamente saudáveis de ambos os sexos, pesando entre 20-25 kg, foram usados para este estudo. Os animais foram manejados de acordo com as especificações técnicas para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório da Norma Oficial Mexicana17 e do Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório dos EUA18. Todos os animais foram obtidos do Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias Ismael Cosio Villegas e foram alojados em gaiolas individuais em condições ambientais idênticas, providos de água e ração ad libitum. Em todos os animais, um cateter de termodiluição foi colocado na veia jugular direita e um cateter arterial foi colocado na artéria carótida do mesmo lado para coletar a gasometria e então calcular o DC. Os detalhes dos reagentes e equipamentos usados estão listados na Tabela de Materiais.
1. Preparação experimental
<ol><li>Diluir 1000 UI de heparina em cada uma das três soluções de cloreto de sódio a 0,9% de 250 mL (solução salina, SS).</li>
	<li>Conecte os transdutores de pressão ao monitor de sinais vitais. Utilizar cada transdutor para medir a pressão na porta correspondente do cateter de termodiluição.</li>
	<li>Conecte as soluções heparinizadas ao transdutor por meio de infusão intravenosa sem agulha. Certifique-se de que eles estejam limpos e prontos para serem conectados ao cateter.</li>
	<li>Remova o cateter de termodiluição da embalagem. Mergulhe a extremidade distal em NaCl a 0,9% para verificar a integridade do balão.</li>
	<li>Verifique a permeabilidade das conexões distal e proximal do cateter. Mantenha o cateter na mesa de instrumentos cirúrgicos até o uso.</li>
</ol>2. Preparação animal
<ol><li>Administrar 0,05 mg/kg de atropina e 4 mg/kg de tiletamina-zolazepam por via intramuscular a todos os suínos na sala de preparação animal (seguindo protocolos aprovados institucionalmente).</li>
	<li>Deixe os porcos sem perturbação, mas sob vigilância até que fiquem deitados e permaneçam nessa posição sem sinais de excitação ou resposta a estímulos nociceptivos.</li>
	<li>Coloque o animal sedado em decúbito ventral e insira um cateter na veia marginal da orelha esquerda.</li>
	<li>Transfira o animal para a sala de cirurgia para cirurgia.</li>
	<li>Coloque o animal em posição dorsal e administre 4 mg/kg de propofol IV, 300 μg/kg de brometo de vecurônio e 0,1 mg/kg de fentanil IV.</li>
	<li>Abaixe a mandíbula do porco com a ajuda da equipe do laboratório para manter a boca aberta e a língua para fora.</li>
	<li>Pulverize lidocaína a 10% nas cordas vocais, limpe a saliva acumulada com gaze presa por pinça anelar e separe a epiglote da abertura laríngea.</li>
	<li>Identifique a entrada traqueal com um laringoscópio e uma lâmina reta número 3 e, em seguida, insira um tubo endotraqueal de 7 Fr com um balão.</li>
	<li>Encha o balão e fixe o tubo na mandíbula após verificar sua colocação nas vias aéreas.</li>
	<li>Conecte o porco à máquina de anestesia para manter um estado anestésico com sevoflurano a 2,5% a 3% (Figura 1).</li>
	<li>Ventilar o animal em modo ventilatório controlado por volume com frequência de 25 respirações/min, volume corrente de 6-8 mL/kg de peso, FiO2% de 50%-70% para manter SaO2 maior que 90%, gatilho de 2, pressão expiratória final positiva (PEEP) de 5 cmH2O, razão de inspiração de 1:2 s e fluxo inspiratório de 15 L/min e máximo de 30 L/min.</li>
</ol>3. Colocação do cateter de termodiluição e medição do débito cardíaco
<ol><li>Manter o animal em decúbito dorsal sob anestesia geral e realizar antissepsia da região cervical com iodopovidona (Figura 2). Faça uma incisão paramediana de 10 cm usando um lápis de eletrocautério e disseque o tecido subcutâneo para expor a veia jugular externa direita por dissecção romba.</li>
	<li>Colocar dois pontos de seda 2-0, um na porção distal e outro na porção proximal do vaso dissecado (Figura 3).</li>
	<li>Insira o cateter extracorpóreo do local do pescoço para a região torácica onde o coração está localizado. Meça a profundidade de inserção usando marcações no cateter para alcançar a artéria pulmonar (PA). Ligue a porção distal do vaso e coloque uma alça dupla na porção proximal para prender o cateter uma vez inserido.</li>
	<li>Faça uma incisão transversal de 2 mm na porção ventral do vaso usando uma tesoura de íris. Abra as bordas da incisão com pinça hemostática de mosquito de Halsted e insira o cateter de termodiluição 5Fr na veia jugular direita (Figura 4, Figura 5 e Figura 6). Direcione o cateter para a artéria pulmonar (AP) seguindo as curvas exibidas no monitor.</li>
</ol>4. Colocação do cateter arterial
<ol><li>Uma vez que a veia é dissecada e as suturas de referência são colocadas, desloque o músculo esternocefálico (equivalente ao esternocleidomastóideo) lateralmente.</li>
	<li>Disseque a musculatura pré-traqueal (esterno-hióidea) até que a artéria carótida seja exposta.</li>
	<li>Canular a artéria carótida semelhante à veia jugular e conectá-la ao transdutor de pressão para monitorar a pressão arterial sistêmica.</li>
</ol>5. Avaliação
<ol><li>Uma vez colocado o cateter de termodiluição na veia jugular direita e o cateter arterial na artéria carótida do mesmo lado, colher amostras para gasometria.</li>
	<li>Obter os valores da gasometria e avaliar o débito cardíaco (DC) pelo método de termodiluição, área de superfície corporal e método de Fick. NOTA: Para procedimentos detalhados, consulte os relatórios publicados anteriormente19-21.</li>
</ol>6. Análise estatística
<ol><li>Analisar dados que demonstrem uma distribuição normal usando análise de variância (ANOVA) e realizar o teste post hoc de Tukey. Expresse os valores como a média ± erro padrão. Considere valores de p <0,05 como indicativos de significância estatística.</li>
</ol>7. Medição de termodiluição
<ol><li>Injectar um bólus de 5 ml de SS frio a 4 °C no lúmen proximal do cateter de termodiluição em menos de 4 s.</li>
	<li>Observe a curva de termodiluição (temperatura/tempo) na tela do monitor. A curva deve mostrar uma subida rápida seguida por uma descida suave e gradual até a linha de base, com valores numéricos exibidos com uma ou duas casas decimais.</li>
	<li>Repita o processo de injeção em bolus com dois bolus adicionais de SS frio até que as curvas sejam válidas, semelhantes e dentro de 10% do valor médio.</li>
	<li>Depois de confirmar a validade e semelhança das curvas, calcule a média dos três valores e registre-a como o valor final de CO em litros por minuto. Obter CO e outros índices da curva de termodiluição utilizando cálculos baseados na equação de Stewart-Hamilton21.</li>
</ol>8. Determinação do débito cardíaco ajustado para a área de superfície corporal (BSA) ou índice cardíaco
<ol><li>Para determinar o débito cardíaco (IC) ajustado, calcule a área de superfície corporal (SCC) usando a fórmula de DuBois-DuBois19: SCQ = 0,007184 × (Altura (cm) 0,725) × (Peso (kg) 0,425).</li>
	<li>Uma vez obtida a BSA, calcular o IC utilizando a fórmula20: IC = CO/BSA. NOTA: CO é determinado na etapa 7.</li>
</ol>9. Estimativa do débito cardíaco pelo método de Fick
<ol><li>Para calcular o débito cardíaco (DC) pelo método de Fick, determine-se o consumo de oxigênio (VO2) e a diferença nos níveis de oxigênio obtidos a partir da gasometria arterial (SaO2) e venosa (SvO2). Calcular VO2 utilizando a fórmula21: VO2 = CO x (SaO2 - SvO2).</li>
	<li>Em seguida, determine o débito cardíaco usando a fórmula21: CO = VO2 / ([SaO2 - SvO2] × 10).</li>
</ol>10. Estimando o débito cardíaco por peso corporal
<ol><li>Determinar o débito cardíaco por peso corporal dos animais seguindo relatos prévios 8,15. NOTA: No protocolo de PPEV, vários grupos relataram que o débito cardíaco (DC) estimado por peso corporal em suínos é de 100 mL/kg 8,15.</li>
</ol>11. Eutanásia
<ol><li>Eutanasiar todos os animais com uma overdose de pentobarbital sódico (150 mg / kg / IV) através da bainha da veia jugular (seguindo protocolos aprovados institucionalmente) assim que todas as medições forem concluídas.</li>
	<li>Continuar a anestesia geral e a monitorização cardíaca até que o traçado eletrocardiográfico (ECG) não mostre atividade elétrica cardíaca17,18.</li>
</ol>

Técnica Cirúrgica para Colocação de Cateter de Termodiluição da Veia Jugular em Suínos

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<li>Cypel, M., Keshavjee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+lung+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Oper+Tech+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Ex vivo lung perfusion.</a> Oper Tech Thorac Cardiovasc Surg. 19 (4), 433-442 (2014).</li>
<li>Langmuur, S. J. J., Max, S. A., Çelik, M., Mahtab, E. A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+lung+perfusion%3A+A+procedural+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Multimed+Man+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Ex vivo lung perfusion: A procedural guide.</a> Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, 10.1510/mmcts.2023.011 (2023).</li>
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</ol>

Os autores declararam que não existem interesses conflitantes.

A PPEV em suínos tem uma tradução direta para a prática clínica humana, dada a comparabilidade no tamanho, fisiologia e sequência genômica das duas espécies22. De acordo com o protocolo de PPEV selecionado pela pesquisadora, a medida do DC é essencial para determinar o fluxo necessário para perfundir os pulmões. Além disso, dependendo dos recursos e conhecimentos disponíveis, o método adequado pode ser escolhido. No entanto, nenhum estudo comparou os métodos de avaliação do CO simultaneamente com um método de referência. Portanto, este estudo foi desenhado para comparar quatro técnicas de medição do DC para estimar o fluxo pulmonar durante a PPEV. Incluímos duas técnicas tipicamente utilizadas em estudos laboratoriais hemodinâmicos experimentais e duas técnicas que empregam parâmetros cardiovasculares calculados utilizados no atendimento clínico. Este estudo mostrou que em suínos saudáveis, quando as quatro técnicas foram comparadas diretamente, o valor produzido pelo método BSA ajustado foi significativamente diferente.
O método de referência, termodiluição, oferece medições rápidas, fáceis e instantâneas; Portanto, se alguém tiver acesso a instrumentos de medição e aquisição de dados, e dependendo das necessidades do protocolo, os cateteres de termodiluição são ideais. Além disso, esse método é baseado em princípios físicos simples e é muito preciso, pois utiliza indicadores que quantificam indiretamente o fluxo sanguíneo23. Este método foi descrito pela primeira vez em 1970; Depois de injetar um volume predeterminado de solução salina fria na porta proximal de um cateter de artéria pulmonar, as variações térmicas no sangue são medidas. Neste estudo, a dissecção vascular aberta foi utilizada para canulação da veia jugular e da artéria carótida devido à facilidade de visibilidade ao incisar a pele e separar os músculos do pescoço, o que levou ao uso rotineiro dessa técnica em nosso laboratório. Vale ressaltar que a técnica de Seldinger pode ser utilizada neste modelo experimental; No entanto, além de exigir equipamentos adicionais, em nossa experiência, essa técnica é difícil de ser executada em suínos se não houver treinamento suficiente.
As vantagens da técnica de termodiluição incluem sua confiabilidade e a facilidade de realizar medidas seriadas sem a necessidade de obtenção de amostras de sangue, conforme exigido pelo método de Fick23. Por outro lado, os parâmetros cardiovasculares calculados são importantes ferramentas clínicas que complementam as medidas diretas na avaliação do estado do sistema cardiovascular. O IC é usado para mostrar como o CO e a BSA estão correlacionados. Esse índice cardiovascular derivado é importante e fácil de calcular, o que o torna atraente para uso na tomada de decisões em ambientes com recursos limitados20. No entanto, neste estudo, o método BSA apresentou valores significativamente maiores do que os outros métodos, o que pode indicar uma superestimação do fluxo de perfusão pulmonar quando comparado com o fluxo obtido pelos outros métodos.
A medição do débito cardíaco de Fick foi descrita pela primeira vez em 1870 como um método para medir o DC em humanos. Fick postulou que a captação total ou liberação de oxigênio pelos pulmões é o produto do fluxo sanguíneo através dos pulmões e da diferença arteriovenosa no oxigênio no sangue. Essa técnica é utilizada em laboratórios de cateterismo cardíaco por ser muito precisa e fornecer informações sobre tendências numéricas baseadas em modelos matemáticos; no entanto, não é prático para uso em ambientes clínicos ou para medição contínua de CO21,24.
Em relação ao DC obtido pelo método de peso, verificou-se que esse valor é menor do que os dos outros métodos, mas pode ser útil para quem realiza PPEV em suínos. Conforme descrito por Beller et al.8, que compararam a PPEV com fluxos de 20% do DC previsto, verificou-se que essa abordagem melhorou a função pulmonar, reduziu o edema e atenuou a inflamação após o transplante.
Finalmente, a literatura indica que as diferentes técnicas de monitoramento de CO têm suas próprias limitações e que nenhum dispositivo pode atender a todos os requisitos da prática. No entanto, dependendo das necessidades do pesquisador, se houver acesso limitado a ferramentas avançadas de medição, a determinação do DC por cálculo também é confiável, simples, reprodutível e requer menos tempo do que as técnicas invasivas 2,20. Embora esses métodos para estimar o CO sejam confiáveis, existem diferenças significativas entre eles. Portanto, cada método deve ser avaliado pelo pesquisador para determinar qual deles atende às necessidades de seu protocolo.
Deve-se mencionar que este estudo tem uma limitação, pois a comparação com outras técnicas de medida de DC amplamente utilizadas, como a tecnologia Doppler (transtorácica, transesofágica e ecocardiografia) ou bioimpedância-biorreactância elétrica torácica, não foi incluída aqui. A inclusão desses métodos pode fornecer informações valiosas sobre a concordância entre essas técnicas e o cateterismo da artéria pulmonar (CAP) para medição de CO em suínos.

Nos centros de transplante pulmonar, a perfusão pulmonar ex vivo (PPEV) é uma ferramenta que ajuda a aumentar o potencial de doação de pulmões que não atendem aos critérios padrão para transplante1. Isso é conseguido preservando e melhorando a funcionalidade pulmonar de doadores com morte encefálica ou parada cardíaca, bem como avaliando o desempenho pulmonar antes do transplante 2,3,4. Na PPEV, uma bomba de circulação extracorpórea permite que a perfusão do pulmão seja transplantada através de um trocador gasoso de membrana e um filtro de captura de leucócitos5.
Até o momento, vários protocolos de PPEV foram descritos (Toronto, Lund e Organ Care System). Estes são diferenciados pelo tipo de solução de perfusão utilizada, se o átrio esquerdo é mantido aberto ou fechado durante a perfusão, e pelo fluxo de perfusão, que varia de 40% a 100% (dependendo da técnica utilizada) do débito cardíaco (DC) estimado do doador 6,7,8. DC é a quantidade de sangue bombeada pelo coração por minuto9 e é o mecanismo pelo qual a perfusão tecidual é mantida. Assim, o monitoramento do CO garante a oxigenação tecidual adequada. O CO, produto da freqüência cardíaca e do volume sistólico, é medido em litros 10,11,12. No entanto, essa abordagem para manter a perfusão tecidual também depende de outros fatores, como retorno venoso, uso periférico de oxigênio, resistência vascular sistêmica, respiração, volume sanguíneo total e posição corporal12.
Existem vários dispositivos para medir e monitorar o CO, alguns dos quais usam princípios físicos simples, enquanto outros usam modelos matemáticos. Esses métodos incluem o princípio de Fick, termodiluição (diluição transpulmonar ou de lítio), análise da onda de pressão arterial para estimar o volume sistólico (VS) e métodos menos invasivos, como Doppler ou biorreatância torácica. No entanto, nenhum dispositivo de monitorização do CO pode atender a todos os requisitos clínicos devido às limitações da técnica de monitorização correspondente10,13.
A medição do CO por termodiluição transcardíaca é um método simples e facilmente reprodutível em suínos. Envolve a colocação de um cateter com termistor na artéria pulmonar e a injeção de um volume de líquido com temperatura inferior à do sangue. O termistor detecta mudanças na temperatura ao longo do tempo, que são então plotadas na forma de uma curva, com a área sob a curva representando o volume minuto14. Vários estudos descreveram que, para modelos animais de PPEV, o CO pode ser calculado pelo peso (100 mL/kg)15, termodiluição e método deFick10,13. No entanto, na clínica, o DC é calculado usando o índice cardíaco (IC), que é o DC ajustado à área de superfície corporal do doador16. No entanto, não há estudos comparando esses métodos em modelos experimentais de suínos.
O objetivo deste estudo foi reproduzir a medida de CO por termodiluição em suínos e comparar sua precisão e acurácia com as obtidas por meio de CO ajustado por BSA, peso e método de Fick para estabelecer o fluxo de perfusão durante a PPEV.

<table><tbody><tr><td>Máquina de anestesia</td><td>General Electric</td><td>Carescape 620</td><td></td></tr><tr><td>Atropine</td><td>Amixteria, Stern Pharma GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cateter Insyte Autoguard 20 GA</td><td>Becton Dickinson</td><td>381434</td><td></td></tr><tr><td>Lápis de eletrocautério</td><td>BBraun Aesculap</td><td>GN211</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal com balão de 7 Fr</td><td>Rush</td><td>MG 027770 002</td><td></td></tr><tr><td>Fentanil</td><td>Janssen-Cilag</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Iodopovidona</td><td>Degasa</td><td>NDC6732635208</td><td></td></tr><tr><td>Laringoscópio</td><td>Riester</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lidocaína Spray</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Transdutores de pressão</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>PX260</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sevofluorano</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Suturas de seda 2-0</td><td>Covidien</td><td>GS833</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital sódico</td><td>Pfizer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>lâmina reta do laringoscópio #3</td><td>Miller; Cateter</td> de termodiluição Riester <td></td><td></td></tr><tr><td>Swan-Ganz 5Fr</td><td>Arrow Thermodilution Ballon Catheter</td><td>Ref AI-07165</td><td></td></tr><tr><td>Tiletamine-zolazepam</td><td>Virbac</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Brometo de vecurônio</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

determinação do débito cardíaco em modelo suíno para perfusão pulmonar ex vivo

Determination of Cardiac Output in a Porcine Model for Ex Vivo Pulmonary Perfusion

Devido às suas semelhanças fisiológicas com os humanos, os porcos são usados como modelos experimentais para perfusão pulmonar ex vivo (EVLP). A PPEV é uma técnica que perfunde pulmões que não são adequados para transplante por meio de uma bomba de circulação extracorpórea para melhorar sua função e aumentar sua viabilidade. Os protocolos de PPEV existentes são diferenciados pelo tipo de solução de perfusão e fluxo de perfusão, que varia de 40% a 100% do débito cardíaco (DC) estimado de acordo com a área de superfície corporal (SCC). Os dispositivos para medir o CO usam princípios físicos simples e outros modelos matemáticos. A termodiluição em modelos animais continua sendo o padrão de referência para estimar o CO devido à sua simplicidade e facilidade de reprodução. Portanto, o objetivo deste estudo foi reproduzir a medida de DC por termodiluição em suínos e comparar sua precisão e exatidão com as obtidas pela BSA, peso e método de Fick, para estabelecer o fluxo de perfusão durante a PPEV. Em 23 suínos, um cateter de termodiluição foi colocado na veia jugular direita e a artéria carótida do mesmo lado foi canulada. Amostras de sangue foram obtidas para gasometria e o DC foi estimado por termodiluição, área de superfície corporal ajustada, princípio de Fick e por peso corporal. O CO obtido pela BSA foi maior (p = 0,0001, ANOVA, Tukey) do que o obtido pelos outros métodos. Concluímos que, embora os métodos utilizados neste estudo para estimar o DC sejam confiáveis, existem diferenças significativas entre eles; portanto, cada método deve ser avaliado pelo investigador para determinar qual atende às necessidades do protocolo.

Todos os animais sobreviveram ao procedimento cirúrgico e ao tempo de estudo. Um animal (4,3%) desenvolveu ruptura da veia jugular devido à tração excessiva durante a inserção do cateter. Além disso, nenhum dos vasos intervencionados apresentou sangramento. Nos animais estudados, foi necessária uma média de 25-30 cm de inserção do cateter para atingir a AP. Em três casos (13%), o cateter foi direcionado para o membro superior direito do porco. Nesses casos, o cateter foi retraído para o local de inserção, o membro superior do porco foi reposicionado em direção à cabeça e a veia jugular foi ocluída manualmente para guiar o cateter em direção ao coração. Dois animais (8,6%) desenvolveram taquicardia e arritmias durante a inserção do cateter. Estes foram resolvidos por conta própria e não exigiram tratamento farmacológico. Ao comparar o CO obtido pelos quatro métodos, o valor ajustado pela área de superfície corporal (p &lt; 0,05; ANOVA, Tukey) foi maior do que a obtida com o método de termodiluição e o CO ajustado em peso (Figura 7).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig01.jpg"> Figura 1: Configuração da intubação e anestesia. Porco intubado e conectado a uma máquina de anestesia inalatória. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig02.jpg"> Figura 2: Antissepsia da região cervical. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig03.jpg"> Figura 3: Dissecção da veia jugular. A veia jugular dissecada e suturas de referência colocadas ao seu redor. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig04.jpg"> Figura 4: Inserção do cateter. Inserção do cateter na incisão transversal na porção ventral da veia jugular. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig04large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig05.jpg"> Figura 5: Rastreamento de inserção do cateter de termodiluição. Traçado de inserção normal durante a colocação do cateter de termodiluição. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig05large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig06.jpg"> Figura 6: Colocação final do cateter. Fim da colocação do cateter na veia jugular (A) e na artéria carótida (B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig06large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig07.jpg"> Figura 7: Estimativa do débito cardíaco. Maior débito cardíaco (média ± erro padrão) estimado pelo método da área de superfície corporal ajustada. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig07large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Este protocolo descreve a técnica cirúrgica utilizada para a colocação de um cateter de termodiluição através da veia jugular em suínos para estimar o débito cardíaco e garantir a perfusão pulmonar adequada durante a perfusão pulmonar ex vivo (PPEV).

Determinação do Débito Cardíaco em Modelo Suíno para Perfusão Pulmonar Ex Vivo

Due to their physiological similarities to humans, pigs are used as experimental models for ex vivo lung perfusion (EVLP). EVLP is a technique that ...

determination-cardiac-output-porcine-model-for-ex-vivo-pulmonary

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este vídeo descreve uma técnica ex situ para preservar um coração suíno isolado, perfundindo-o com uma solução de perfusato oxigenado e rica em nutrientes. A técnica permite a avaliação abrangente do desempenho cardíaco em condições fisiológicas.

Perfusão Cardíaca Ex Situ: Uma Técnica para Preservar a Função Cardíaca Suína Isolada

A maioria dos estudos envolvendo o aparelho de Langendorff usa modelos de pequenos animais devido ao aumento da complexidade dos sistemas para mamíferos maiores. Descrevemos um sistema de Langendorff para modelos animais de grande porte que permite o uso em uma variedade de espécies, incluindo humanos, e aquisição de dados relativamente fácil.

Um Sistema de coração isolado para Grandes Modelos Animais

avaliação fiável e exacta resultado é a chave para a tradução de terapias pré-clínicos para o tratamento clínico. O presente artigo descreve como avaliar três parâmetros de resultado primário clinicamente relevantes de desempenho cardíaco e danos em um modelo de infarto do miocárdio porco aguda.

Avaliação do resultado principal em um modelo suíno de Infarto Agudo do Miocárdio

Aqui, nós descrevemos um modelo pré-clínico do grande-animal (porcine) da transplantação transplantação orthotopic do do coração que foi estabelecida firmemente e utilizada para investigar estratégias cardioprotetores novas.

Um modelo pré-clínico porcino de transplante cardíaco ortotópico

O protocolo descreve um modelo de doação pós-morte circulatória de animais de grande porte (suínos), seguido de perfusão regional normotérmica toracoabdominal, que simula de perto o cenário clínico do transplante cardíaco e tem o potencial de facilitar estudos e estratégias terapêuticas.

Modelo de Doação em Animais de Grande Porte após Morte Circulatória e Perfusão Regional Normotérmica para Avaliação Cardíaca

O protocolo aqui mostra como a administração contínua de cristalóides nas veias centrais de um porco/leitão euvolêmico permite a investigação apropriada dos efeitos fisiológicos da sobrecarga de volume aguda.

Modelo suíno adulto e pediátrico de sobrecarga de volume aguda

O rastreamento da doença arterial coronariana pode aumentar a captação de corações de doadores com critérios estendidos. Um protocolo para a realização de angiografia coronariana reprodutível durante a perfusão cardíaca ex-situ é descrito aqui em um modelo suíno.

Angiografia coronária durante perfusão cardíaca ex-situ em modelo suíno

O protocolo descreve um sistema de perfusão cardíaca ex vivo suíno no qual a carga direta do ventrículo esquerdo pode servir como uma técnica de avaliação da saúde do enxerto e, ao mesmo tempo, fornecer uma avaliação holística da função do enxerto. Uma discussão sobre o design do sistema e possíveis métricas de avaliação também é fornecida.

Carga Cardíaca usando Pressurização Passiva do Átrio Esquerdo e Pós-Carga Passiva para Avaliação do Enxerto

O protocolo aqui descrito descreve um modelo de transplante cardíaco suíno de alta fidelidade após doação após morte circulatória utilizando perfusão ex vivo do aloenxerto.

Um modelo suíno de alta fidelidade de transplante cardíaco ortotópico após doação após morte circulatória

Aqui, apresentamos um protocolo para um sistema de perfusão ex vivo normotérmico modificável e de código aberto, projetado para superar o alto custo e a flexibilidade limitada das plataformas existentes, permitindo um uso mais acessível, econômico e iterativo na pesquisa biomédica pré-clínica.

Um sistema de perfusão normotérmica de código aberto projetado para cientistas pesquisadores

Aprenda a determinar o débito cardíaco em modelo suíno para perfusão pulmonar ex vivo usando cateter de termodiluição. Esta técnica avalia fluxos de perfusão adequados para preservação pulmonar.

Determinação do Débito Cardíaco em Modelo Suíno para Perfusão Pulmonar Ex Vivo

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