October 4th, 2024
Aqui, descrevemos um método abrangente para medir a fosforilação oxidativa mitocondrial em fibras musculares esqueléticas permeabilizadas frescas de músculos humanos ou de camundongos. Este método permite a quantificação em tempo real da respiração mitocondrial e a avaliação da preferência de combustível e flexibilidade metabólica, preservando as redes mitocondriais existentes e a integridade da membrana.
Nossa pesquisa se concentra na interseção do metabolismo e das respostas ao estresse na doença metabólica, um tema importante do programa NORD da Universidade de Washington. Por meio de sinergismos entre nossos núcleos NORD, somos capazes de lidar com questões complexas no metabolismo nutricional e doenças por meio de uma abordagem interdisciplinar e colaborativa. Os ensaios tradicionais de respiração mitocondrial examinaram mitocôndrias isoladas.
O isolamento das mitocôndrias é demorado e pode comprometer a integridade da membrana mitocondrial externa. Além disso, as mitocôndrias não funcionam sozinhas, mas fazem parte de uma rede dinâmica de adaptação metabólica celular. Nosso protocolo mantém essa rede para fornecer uma avaliação fisiologicamente relevante da função mitocondrial.
Nosso foco se estendeu à identificação de reguladores da adaptação metabólica que são importantes na saúde e na doença. As principais perguntas que estamos fazendo incluem: esses reguladores, como a protease do sítio 1, são igualmente importantes em diferentes tipos de tecidos? E qual é o seu significado fisiológico?
Este estudo apresenta um protocolo abrangente para medir a fosforilação oxidativa mitocondrial em fibras musculares esqueléticas permeabilizadas frescas de modelos humanos ou de camundongos. O método permite a quantificação em tempo real da respiração mitocondrial, preferência de combustível e flexibilidade metabólica, preservando as redes mitocondriais e a integridade da membrana.
High-resolution respirometry in permeabilized skeletal muscle fibers enables precise, physiologically relevant measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation, a critical determinant of cellular energy metabolism. This approach supports early discovery and target validation for metabolic disease portfolios by providing robust, quantitative insights into mitochondrial function and metabolic flexibility. Integrating these measurements enhances predictive confidence at key inflection points in metabolic and muscle health R&D pipelines.
This high-resolution respirometry protocol bridges early discovery, lead identification, and preclinical research by enabling robust mitochondrial function assessment in both human and mouse muscle fibers.