23 de junho de 2026
Aqui, apresentamos um protocolo para o desenho guiado por estrutura da interação de ligação proteína-ligante entre Sangliferina A e Ciclofilina A/Ganoderiol-F, essencial para a descoberta de novos medicamentos. A estabilidade do complexo ligante-receptor foi avaliada por meio de simulação de dinâmica molecular.
Esta pesquisa foca no desenvolvimento de novos inibidores da ciclofilina A e antiproliferativos gan-it-role para atingir o eixo DCDK da ciclofilina e inibir a proliferação do câncer celular. Os principais desafios incluem alcançar a interação geométrica ótima ligante-receptor e manter complexos ligante-proteína estáveis sob condições experimentais e fisiológicas dinâmicas. Para começar, abra o arquivo 1NMK".
Localize o aminoácido arginina na posição número 55 e registre as coordenadas X, Y e Z na interface do AutoDock. Abra o menu "Arquivo", selecione Ler Moléculas. Escolha o arquivo 1NMK e clique em Abrir.
Adicione átomos de hidrogênio selecionando Editar, escolhendo Hidrogênio e clicando em Adicionar. Depois escolha "Apenas Polar" e confirme com OK. Depois vá novamente ao menu Editar, escolha Átomos e selecione Atribuir Tipo de Átomo AD4. Em seguida, escolha "Charges" e selecione Kollman Charges.
Salve o receptor preparado como 1NMK. pdbqt"selecionando Arquivo, escolhendo Salvar, definindo o tipo de arquivo e confirmando a localização do salvamento. Em seguida, abra o menu Ligand, selecione Input.
Clique em Abrir, escolha o arquivo PDB e clique em "Abrir" novamente. Quando a janela de informações aparecer, revise os detalhes dos ligantes. Para detectar a raiz do ligante, selecione Ligante, depois escolha "Árvore de Torção" e clique em Detectar Raiz.
Salve o ligando selecionando Ligando, escolhendo Saída e clicando em Salvar como PDBQT. Prepare a grade receptora selecionando Grade, escolhendo Macromolécula, selecionando 1NMK e clicando em Molécula. Confirme o aviso e salve como 1NMK.pdbqt.
Para definir os tipos de mapa, selecione Grade, seguido de Definir Tipos de Mapa, Ligando. Escolha Ligando" e, finalmente, selecione Ligando" novamente. Depois, defina o centro da caixa da grade selecionando Grade, escolhendo Grade Box e clicando em Centro.
Depois, selecione um átomo e insira as coordenadas da caixa da grade. Salve o parâmetro da grade como um arquivo GPF. Configure o docking selecionando Docking, seguido de "Macromolecule" e defina o nome rígido do arquivo.
Navegue até a pasta necessária e clique em 1NMK.pdbqt. para abri-la, selecione Docking, escolha Output, clique em Lamarckian GA e salve o arquivo de parâmetros de docking como 1NMK.dpf. No terminal do Cygwin, digite CD C:e pressione enter; Então digite CD projeto" e pressione enter novamente.
Em seguida, digite moléculas de cd e pressione enter. Depois digite CD 3" e aperte enter. Digite o comando AutoGrid" para gerar mapas de grade e pressione enter para executar o AutoGrid.
Após a execução, digite cauda f 1NMK. glg"e pressione enter para ver o progresso do log, digite o comando para simulação de acoplamento molecular. Para gerar o arquivo de log de docking, e pressione enter para iniciar o AutoDock.
Depois, digite cauda f 1NMK. DLG" e pressione enter para monitorar o processo de acoplamento. Depois de criar todos os arquivos DLG, vá até a pasta 1 e abra o arquivo DLG no WordPad, pressione Ctrl+F.
Digite a palavra-chave de busca e pressione enter três vezes para chegar à tabela RMSD. Copie a energia de ligação e as informações correspondentes de execução de cada molécula da tabela RMSD, compile as 20 principais moléculas em uma planilha com colunas criadas para número de série, energia mínima de ligação e execute. No terminal Cygwin", navegue até a pasta de moléculas específicas dentro do diretório do projeto.
Digite o comando para extrair coordenadas de ligantes acoplados do DLG e ajuste os dados. Pressione enter novamente para finalizar, confirmando a criação do arquivo PDBQT"run 1NMK. Verifique se o arquivo PDB da execução 1NMK foi criado na mesma pasta.
Em seguida, abra o software PyMOL 2.5"" e o AutoDock na área de trabalho, e abra o arquivo receptor para selecionar a estrutura do receptor para visualização. Abra o arquivo de configuração correspondente do ligando para a molécula escolhida e exiba o ligando carregado no espaço de trabalho 3D. Selecione "Ocultar Tudo" no menu, importe o arquivo para o Maestro para visualizar a estrutura, e então clique em Interação de Ligandos para obter o diagrama de interação de ligandos.
Abra o software UCSF Chimera a partir da área de trabalho. Selecione Arquivo, seguido de Abrir. Navegue para dirigir C, projeto e moléculas.
Selecione o arquivo 1NMK. pdb" e clique em Abrir. No menu, selecione "Residue" e escolha UNL Zoom" para focar na região de residue UNL.
Selecione a Zona. Depois, pressione OK" para confirmar. Em seguida, selecione Ação.
Escolha Rótulo, depois selecione "Resíduo" e escolha Nome Mais Especificador para rotular os resíduos. Abra as Ferramentas, selecione Análise de Estrutura e então clique em FindHBond. Na janela padrão de FindHBond, marque as caixas para Ligações H de Cor que Não Atendam a Critérios Precisos e encontre apenas ligações H com Selecionado.
Limpe a seleção de zonas para iniciar uma nova pesquisa. Depois, selecione os parâmetros da zona e dê zoom para a tela molecular, observando as linhas azul e laranja que representam as ligações de hidrogênio. Por fim, examine a estrutura visualizada e conte o número total de ligações de hidrogênio visíveis.
A confirmação do acoplamento do complexo ligante-receptor foi visualizada usando PyMOL 2.5, mostrando 109 hidroxi-seis hidroxietil ligado ao bolso ativo do receptor 1NMK. O ligante ácido 4-hidroximandélico formou ligações de hidrogênio com o receptor 1NMK", especialmente com a arginina 55 a uma distância de 1,53 angstroms. A análise estrutural bidimensional ilustrou os aminoácidos com os quais os ligantes interagiram por meio de ligações de hidrogênio.
Simulações de dinâmica molecular confirmam a estabilidade do complexo ligante-receptor por meio da análise do raio de giro ao longo de 1000 picossegundos. O gráfico RMSD mostrou estabilização consistente do complexo após um nanossegundo de simulação, indicando ligação estável proteína-ligante. A densidade média do sistema foi de aproximadamente 10¹⁹ quilos por metro cúbico, confirmando o equilíbrio sob condições NVT, e a pressão do sistema permanece estável durante o equilíbrio NPT por 100 picossegundos.
A temperatura estabilizou-se em torno de 300 kelvin durante a fase NVT, confirmando o equilíbrio térmico bem-sucedido. A caixa de trajetória do complexo ligante-proteína foi visualizada após a simulação, mostrando a distribuição das moléculas de água ao redor do complexo acoplado. Poucos estudos investigam o antiproliferativo gan-it-role como alvo terapêutico oncogênico.
Esse protocolo preenche essa lacuna projetando e validando inibidores usando acoplamento molecular e análise dinâmica. Nosso protocolo interroga múltiplas ferramentas computacionais em um fluxo de trabalho unificado, garantindo uma análise abrangente de ligando-proteína ou receptor. Nossas pesquisas futuras focarão na validação desses inibidores in vitro e in vivo, explorando a aplicação na fronteira dos inibidores da Ciclofilina A em múltiplos tipos de células cancerígenas.
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Este estudo concentra-se no desenvolvimento e validação de novos inibidores da Ciclofilina A que visam o eixo Ciclofilina D-CDK para suprimir a proliferação de células cancerígenas. Utilizando uma abordagem guiada pela estrutura, os pesquisadores desenvolveram 117 moléculas ligantes e avaliaram suas interações com o receptor enzimático Sanglifehrina A (1NMK) por meio de encaixe molecular e simulações de dinâmica molecular. O fluxo de trabalho integrou múltiplas ferramentas computacionais para otimizar a ligação entre ligante e receptor, avaliar a estabilidade e identificar resíduos interagentes-chave para o desenvolvimento potencial de fármacos anticâncer.
O design computacional guiado por estrutura permite a identificação rápida de inibidores da Ciclofilina A com ligação otimizada ao eixo Ciclofilina D-CDK, um alvo oncológico validado. Essa abordagem reduz a eliminação em estágios iniciais ao priorizar ligantes com forte interação com o alvo prevista e estabilidade do complexo. O fluxo de trabalho auxilia na identificação de compostos líderes ao integrar docking, análise de interações e dinâmica molecular para reduzir os riscos das hipóteses mecanicistas antes da síntese.
O método insere-se no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos promissores, permitindo uma triagem computacional antes dos testes em laboratório.