28 de fevereiro de 2025
Aqui, demonstramos o método de caracterização de vesículas extracelulares (EVs) coletadas de fluidos biológicos, como lágrimas e saliva, de seres humanos. O scanner usado neste método é capaz de detectar o fenótipo, tamanho e contagem total de partículas de EVs a partir de 1 μL da amostra.
As vesículas extracelulares servem como biomarcadores de doenças, refletindo estados fisiológicos. Nossa abordagem permite a extração de dados ricos de pequenos volumes de lágrimas, avançando na pesquisa de EV em fluidos biológicos. Os principais desafios experimentais incluem a obtenção de concentrações suficientes de vesículas extracelulares a partir de pequenas amostras, minimizando a perda de amostras durante o isolamento e otimizando a análise para evitar a supersaturação do chip ou a detecção de sinal fraco.
Este protocolo ignora as etapas de isolamento, reduzindo o tempo de processamento e permite a análise de vesículas extracelulares de pequenos volumes de amostra, tornando-o ideal para amostras biológicas limitadas, como lágrimas. Os biomarcadores não invasivos são cruciais para a detecção precoce e o tratamento de distúrbios da córnea. Os biomarcadores de vesículas extracelulares permitem o monitoramento da doença, tratamentos personalizados, melhor adesão do paciente e melhor qualidade de vida.
Nosso laboratório foi pioneiro na análise de vesículas extracelulares em amostras de lágrimas de indivíduos com KC, identificando assinaturas únicas de tEV. Isso abre caminho para futuros diagnósticos e alvos terapêuticos focados em EV. Para começar, coloque as amostras biológicas e um chip de tetraspanina no espaço de trabalho.
Pipete 70 microlitros de amostras biológicas humanas que foram pré-misturadas com a solução B de um kit de tetraspanina humana em um chip. Coloque o filme em uma placa de lavagem de cavacos para evitar a evaporação da amostra. Após 16 horas, coloque a placa na arruela de cavacos.
Trave-o no lugar e feche a tampa. Pressione a opção CW-TETRA v0 na arruela de cavacos. Enquanto os cavacos estão sendo lavados, prepare 300 microlitros de solução de bloqueio por cavaco.
Adicione 0,6 microlitros de cada anticorpo por chip à solução de bloqueio. Vortex a solução de bloqueio com o coquetel de anticorpos para garantir uma mistura completa. Quando a lavagem do chip estiver concluída, adicione 250 microlitros da solução de bloqueio com o coquetel de anticorpos em cima de cada chip.
Em seguida, feche a tampa e pressione Continuar. Quando o lavador de cavacos chilrear, remova a placa de lavagem de cavacos. Mova os cavacos pela rampa.
Coloque a placa de volta na arruela de cavacos, garantindo que ela trave firmemente no lugar. Feche a tampa e pressione Continuar. Para começar, ligue um analisador de nanopartículas.
Inicie o programa de software de digitalização na área de trabalho conectada ao analisador de nanopartículas. Selecione a pasta de cavacos para escolher cada cavaco de tetraspanina e localize-o na posição do cavaco no mandril. Clique nos três quadrados abaixo de Posição do chip para ativar a fluorescência.
Os quadrados ficarão amarelos, azuis e vermelhos. Pressione a tampa do mandril e puxe-a para removê-la. Em seguida, prenda firmemente os chips de tetraspanina carregados com amostra no mandril.
Alinhe os pinos da tampa do mandril com os orifícios e pressione para baixo. Deslize a tampa para travá-la no lugar. Em seguida, coloque o mandril no palco e trave-o no lugar.
Em seguida, clique em Scan Chips na interface do software e, em seguida, clique em OK. Quando o stage se mover totalmente para dentro da máquina, feche a porta. Quando a verificação estiver concluída, abra a porta para ejetar o palco e verificar os resultados. Se as varreduras forem bem-sucedidas, descarte os chips.
Coloque o próximo conjunto de cavacos no mandril. Em alternativa, volte a colocar o mandril vazio no palco. Saia do software e desligue a máquina quando terminar.
Níveis ótimos de fluorescência de vesículas extracelulares foram observados nos canais CD63, CD81 e CD9, enquanto o canal de controle MIgG permaneceu preto, confirmando a especificidade do controle. O CD81 foi reduzido para fluidos biológicos. A ausência de fluorescência nos canais CD63, CD81 e CD9 é indicativa de ausência de vesículas extracelulares.
A supersaturação da fluorescência foi evidente, dificultando o discernimento de dados significativos devido à marcação excessiva, particularmente nos canais CD63, CD81 e CD9.
Este estudo apresenta um método inovador para caracterizar vesículas extracelulares (EVs) coletadas de fluidos biológicos humanos, como lágrimas e saliva. Ao utilizar um chip de tetraspanina, a abordagem facilita a análise de EVs a partir de volumes mínimos de amostra, avançando o estudo de biomarcadores não invasivos para monitoramento de doenças.
Characterizing extracellular vesicles (EVs) from minimal biological fluid volumes addresses a critical bottleneck in non-invasive biomarker discovery and disease monitoring. This workflow enables high-content EV phenotyping from scarce patient samples, supporting translational research and early-stage target validation. The approach enhances predictive confidence for biomarker-driven portfolio decisions in ocular and systemic disease pipelines.
This EV characterization protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum, bridging early biomarker identification with translational validation in limited-sample contexts.