6 de junho de 2025
Este protocolo apresenta um método acessível para criar um ambiente à prova de gás para administrar anestésicos voláteis a larvas de peixe-zebra para experimentos comportamentais.
Nossa pesquisa se concentra na farmacologia anestésica, que inclui um interesse nos mecanismos anestésicos, bem como nos mecanismos dos efeitos colaterais anestésicos. O uso de larvas de peixe-zebra como modelo comportamental para estudar a farmacologia anestésica está se expandindo rapidamente e tem muitas vantagens, incluindo sua adequação para uso em experimentos de triagem em larga escala. A comparação de anestésicos voláteis e intravenosos continua sendo um desafio porque a administração de anestésicos voláteis a animais não aquáticos é muito mais fácil do que anestésicos intravenosos.
Ao contrário, os anestésicos intravenosos são mais facilmente administrados a animais aquáticos do que os anestésicos voláteis. Este protocolo fornece um meio relativamente barato e acessível de administrar anestésicos voláteis em uma câmara fechada para realizar experimentos comportamentais em larvas de peixe-zebra. Outros protocolos dessa natureza geralmente exigem alguma forma de aparelho personalizado que pode ser caro ou não facilmente acessível para aqueles sem meios para criar ou adquirir esse tipo de equipamento.
Para começar, coloque uma folha de silicone de 0,5 milímetro em uma superfície limpa e plana. Inspecione as folhas quanto a vincos e evite-os quando possível. Limpe as folhas com álcool 70% para remover qualquer óleo ou detritos.
Quando a folha estiver completamente seca, use um aplicador, como um pincel, para aplicar uma camada fina e uniforme de primer adesivo na folha de silicone. Depois que o primer adesivo for aplicado, alinhe a fita dupla face com a folha de silicone com o suporte de papel voltado para cima. Aplique gradualmente a fita no silicone usando um rolo para alisar a superfície e remover as bolhas de ar.
Reaplique o primer em pequenas seções conforme necessário e continue a aplicação da fita enquanto o primer seca em um a cinco segundos. Vire a folha de silicone para trabalhar com o lado do silicone para cima para ajudar na visualização e remoção de bolhas de ar. Em seguida, corte o silicone adesivo em tiras de pelo menos 10 milímetros de largura.
Certifique-se de que as tiras sejam longas o suficiente para cobrir pelo menos a largura de uma fileira da placa do poço. Para preparar os anestésicos voláteis, adicione um volume do solvente não volátil a um frasco de HPLC ou cintilação, garantindo um espaço mínimo após a diluição final do anestésico volátil Use uma seringa estanque a gás Hamilton para adicionar o anestésico volátil e selar rapidamente o frasco.
Misture os frascos por vórtice ou sonicação, conforme necessário. Armazene-os temporariamente enquanto prepara pratos de peixe-zebra. Para configurar o experimento comportamental, transfira uma larva de peixe-zebra cinco dias após a fertilização para todas as outras fileiras de uma placa de vidro de 96 poços.
Remova cuidadosamente a solução E-three de cada poço. Use uma pipeta de transferência para encher cada poço na linha com a solução experimental. Usando as tiras adesivas de silicone, pressione a tira para baixo rapidamente para evitar a formação de bolhas e o transbordamento de peixes para os poços adjacentes.
Em seguida, pressione firmemente a parte superior da placa para garantir que cada poço esteja selado. Repita o processo de selagem até que a solução seja trocada e todos os poços em todas as outras fileiras da placa sejam selados. Vire suavemente a placa e verifique se há bolhas de ar.
Coloque a placa na unidade de observação do comportamento com o lado adesivo de silicone voltado para baixo e execute o experimento comportamental. Nos poços selados, a concentração de sevoflurano apresentou perda mínima em três horas, e o isoflurano apresentou uma diminuição de 4% na concentração. Nenhum dos anestésicos apresentou perda significativa durante os primeiros 30 a 60 minutos.
A concentração efetiva média de sevoflurano foi de 62 micromolares para movimento espontâneo e 126 micromolares para movimento provocado, com a escada sendo notavelmente menor do que os 240 micromolares relatados anteriormente, o que pode ser devido à melhoria na criação de vedação estanque a gás com este método. Uma diferença significativa no movimento espontâneo foi observada entre os poços abertos e selados, surgiu na marca de duas horas, provavelmente devido ao esgotamento de oxigênio no poço, e é uma limitação importante dessa técnica.
Veja a transcrição completa e aceda a milhares de vídeos científicos
Este estudo apresenta um protocolo para criar um ambiente hermético ao gás, a fim de administrar anestésicos voláteis a larvas de peixe-zebra para experimentos comportamentais. O método permite aos pesquisadores explorar a farmacologia anestésica e seus efeitos no comportamento, aproveitando as vantagens das larvas de peixe-zebra como modelo comportamental.
A administração confiável de anestésicos voláteis em peixes-zebra larvais permite estudos escalonáveis de farmacologia comportamental, apoiando a validação precoce de alvos e a redução de riscos mecanicistas na descoberta de fármacos para o sistema nervoso central. Este método acessível supera um gargalo fundamental nos fluxos de trabalho com modelos aquáticos, facilitando a avaliação quantitativa dos efeitos anestésicos e reforçando a confiabilidade preditiva em pesquisas translacionais. A abordagem aprimora a tomada de decisões em portfólios ao permitir a geração de dados robustos e reprodutíveis em um sistema vertebrado geneticamente manipulável.
Este método integra-se ao continuum de descoberta, desde a fase inicial de testes de hipóteses até a identificação de compostos líderes e validação pré-clínica, particularmente para programas de farmacologia do sistema nervoso central e anestésicos.