In vivo Microscopia confocal: um procedimento operacional padrão para a detecção de ácaros Demodex na margem da pálpebra

Estamos desenvolvendo um protocolo padronizado de microscopia confocal in vivo para detectar a pálpebra de ácaros demodex para expandir a adoção clínica. Estamos ajustando o protocolo padronizado de IVCM, que limita a detecção de ácaros demodex in vivo na prática clínica. Ele fornece detecção in vivo não invasiva, indolor e rápida com fácil acompanhamento, eliminando a dor da denominação e os problemas leves de resíduos.

[Narrador] Para começar, limpe a lente do dispositivo usando lenços de limpeza de lentes. Use bolas de algodão embebidas em álcool para desinfetar bem o encosto de cabeça e o apoio do queixo. Pressione as duas alavancas pretas juntas e puxe o apoio de queixo para frente até que ele se encaixe para garantir que esteja na posição horizontal correta. Agora, gire o parafuso de ajuste para afastar a câmera do paciente antes do exame. Aplique aproximadamente 0,02 mililitros de gel oftálmico à base de carbômero na superfície frontal da lente do microscópio do dispositivo. Em seguida, remova uma tampa de polimetilmetacrilato descartável estéril de sua capa protetora. Pressione as laterais da tampa firmemente na lente do microscópio sem tocar na superfície anterior. Em seguida, aplique uma gota de substituto de lágrima de gel na superfície frontal da tampa. Crie um novo arquivo de paciente no software. Agora, aplique uma gota de cloridrato de proparacaína na margem da pálpebra a ser examinada. Mova a câmera de varredura para a esquerda do ponto de vista do operador. Em seguida, gire a lente objetiva da câmera CCD para ajustar a imagem de controle perpendicularmente ao eixo óptico da câmera a laser do scanner. Inicie um novo exame usando o software. Na guia Dados do exame, selecione Heidelberg Retina Tomograph Cornea na lista suspensa Dispositivo e observe a caixa de diálogo Configurações do módulo Cornea. Escolha FOV 400 na lista suspensa Field Lens e clique em OK para confirmar. Em seguida, aguarde a abertura da janela de aquisição e verifique a exibição da imagem ao vivo da câmera a laser de varredura e da imagem de controle. Em seguida, defina os fatores na janela de aquisição. Selecione 1x no menu suspenso Fator de zoom CCD para definir o tamanho da imagem de controle. Marque as caixas de brilho automático e automático para ativar o controle automático de brilho. Certifique-se de que o Tipo de digitalização de seção esteja selecionado. Para adquirir uma imagem de referência, desative o controle automático de brilho. Em seguida, ajuste o plano focal com o pino de ajuste até que a imagem ao vivo escureça e, posteriormente, um reflexo brilhante apareça, indicando a superfície anterior da tampa de polimetilmetacrilato. Clique em Redefinir na seção Micrômetro de posição de foco e aguarde até que o valor atinja 0. Em seguida, marque a caixa Brilho automático e desative a reinicialização automática. Agora, ajuste a altura da mesa de exame. Coloque o queixo do paciente no apoio de queixo e a testa contra o apoio de testa. Ajuste a elevação do apoio de queixo usando o parafuso preto para que as pálpebras superiores do paciente se alinhem com as marcas vermelhas na coluna do encosto de cabeça. Instrua o paciente a olhar para baixo em direção à fonte de luz fixa e manter um olhar firme. Com um cotonete, vire a pálpebra superior e exponha totalmente a raiz dos cílios e a margem palpebral. Gire o parafuso de ajuste para alinhar a reflexão do feixe de laser no nível da pálpebra superior. Em seguida, mova a câmera a laser de varredura até que a margem superior da pálpebra entre em contato suavemente com o centro da tampa de polimetilmetacrilato. Examine cuidadosamente a raiz dos cílios do lado temporal para o nasal usando movimentos horizontais minuciosos da margem palpebral. Gire a lente do microscópio no sentido horário ou anti-horário para modificar o foco e observar folículos e raízes inteiros. Grave todas as imagens suspeitas de demodex usando o pedal. Depois de sair do exame, selecione Classificar por tempo de aquisição rapidamente na caixa de diálogo Opções para exibir imagens do lado temporal para o lado nasal. Em 2024, o número de indivíduos submetidos à microscopia confocal in vivo para detecção de demodex aumentou significativamente em todas as faixas etárias em comparação com 2023, com o maior número observado na faixa etária de 21 a 30 anos. O procedimento operacional padrão introduzido em 2024 permitiu a inclusão de indivíduos de quatro anos a mais de 90 anos de idade.