10 de outubro de 2025
Este protocolo descreve um método de microscopia de luz de baixo custo para avaliar a morfologia e função cardíaca em embriões de peixe-zebra, permitindo a avaliação reprodutível da cardiotoxicidade do desenvolvimento sem a necessidade de sistemas avançados de imagem.
Microscopia de alta resolução, repórteres fluorescentes e análise de imagens digitais são algumas tecnologias que permitem avaliação detalhada da função cardíaca embrionária em peixes-zebra. Manter condições de imagem consistentes e minimizar o movimento do embrião continuam sendo grandes desafios para medições precisas da função cardíaca. Para começar, grave vídeos de embriões de peixe-zebra às 96 horas pós-produção em formatos não comprimidos, para permitir uma análise precisa da dinâmica do movimento cardíaco.
Sequencialmente, clique em Arquivo, Abrir e depois escolha o arquivo AVI no ImageJ para importar os vídeos. Use Analisar, depois clique em Definir Escala, insira o diâmetro do campo conhecido e ative a opção global para aplicar a escala em todas as medições. Use as ferramentas ROI para marcar os eixos ventricular longo e curto durante a extremidade da sístole e a extremidade da diástole.
Depois, determina a área da superfície ventricular usando a fórmula de aproximação da elipse. Estime o volume ventricular no final da diástole e na extremidade da sístole usando a fórmula do volume elipsoide. Agora calcule a variação fracionária da área e o encurtamento fracionado.
Depois, determine o volume do golpe, SV, e a fração de ejeção, EF. Para análise automatizada, inicie o software Z-Embryo Analyzer e clique em Arquivo, depois abra Vídeo para importar o vídeo desejado. Clique no botão Detectar Coração para permitir que o software localize automaticamente a região de interesse com base nas flutuações de brilho entre os quadros de vídeo. Deixe o software analisar as mudanças de brilho dentro da região detectada de interesse para estimar a frequência cardíaca, depois calcule o débito cardíaco.
Os gráficos mostram a área e o volume da câmara ventricular medidos na diástole final e na sístole final em embriões de peixe-zebra 96 horas após a fertilização. As diferenças quantitativas entre a diástole final e a sístole final refletem a função sistólica normal durante o desenvolvimento cardíaco inicial, apoiando a aplicabilidade desse método. Em embriões saudáveis de peixe-zebra, o volume médio de AVC foi de 0,213 nanolitros.
O débito cardíaco foi de 27,8 nanolitros por minuto. A fração de ejeção foi de 41,99% e a frequência cardíaca média foi de 130 batimentos por minuto. Em embriões saudáveis de peixe-zebra, a variação média fracionária da área foi de 61,2% e o encurtamento fracionado foi de 44,5%. Embriões expostos ao cádmio apresentaram morfologia cardíaca anormal com ventrículos aumentados e edema pericárdico.
Em embriões expostos ao cádmio, o volume do AVC foi significativamente maior do que nos controles. O débito cardíaco aumentou e a frequência cardíaca foi reduzida. O protocolo aborda a falta de métodos padronizados e acessíveis para quantificar a função cardíaca embrionária do peixe-zebra com fluxos de trabalho reprodutíveis.
Esse protocolo utiliza microscopia padrão e análise de código aberto, tornando viável uma avaliação cardíaca de alta qualidade sem equipamentos especializados. Os resultados fornecem um protocolo confiável que melhora a comparabilidade entre os estudos e possibilita uma avaliação mais precisa dos fenótipos cardíacos.
Veja a transcrição completa e aceda a milhares de vídeos científicos
Este protocolo descreve um método de microscopia de luz de baixo custo para avaliar a morfologia e função cardíaca em embriões de peixe-zebra, permitindo uma avaliação reproduzível da cardiotoxicidade do desenvolvimento sem a necessidade de sistemas de imagem avançados. O método permite uma análise detalhada da função cardíaca usando microscopia padrão e software de código aberto.
Quantitative cardiac imaging in zebrafish embryos enables early-stage detection of developmental cardiotoxicity, supporting predictive de-risking in cardiovascular drug discovery. Standardized video analysis workflows provide reproducible, high-throughput functional readouts, facilitating robust target validation and mechanistic interrogation. This approach enhances portfolio triage by enabling scalable, resource-efficient assessment of cardiac liabilities in preclinical models.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven cardiac function testing, assay standardization, and quantitative analytics in zebrafish embryos.