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<ol><li>Balakhanlou, E., Webster, J., Borgia, M., Resnik, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequency+and+severity+of+phantom+limb+pain+in+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22PM+R%22%5BJournal%5D)">Frequency and severity of phantom limb pain in veterans with major upper limb amputation: results of a national survey.</a> PM R. 13 (8), 827-835 (2021).</li>
<li>Resnik, L., Ekerholm, S., Borgia, M., Clark, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+national+study+of+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+survey+methods%2C+participants%2C+and+summary+findings%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A national study of veterans with major upper limb amputation: survey methods, participants, and summary findings.</a> PLoS One. 14 (3), e0213578(2019).</li>
<li>Ephraim, P. L., Wegener, S. T., MacKenzie, E. J., Dillingham, T. R., Pezzin, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phantom+pain%2C+residual+limb+pain%2C+and+back+pain+in+amputees%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Phantom pain, residual limb pain, and back pain in amputees: results of a national survey.</a> Arch Phys Med Rehabil. 86 (10), 1910-1919 (2005).</li>
<li>R, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prosthesis+satisfaction+in+a+national+sample+of+veterans+with+upper+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22Prosthet+Orthot+Int%22%5BJournal%5D)">Prosthesis satisfaction in a national sample of veterans with upper limb amputation.</a> Prosthet Orthot Int. 44 (2), 81-91 (2020).</li>
<li>Kuiken, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+for+real-time+myoelectric+control+of+multifunction+artificial+arms%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation for real-time myoelectric control of multifunction artificial arms.</a> JAMA. 301 (6), 619-628 (2009).</li>
<li>Valerio, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preemptive+treatment+of+phantom+and+residual+limb+pain+with+targeted+muscle+reinnervation+at+the+time+of+major+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Surg%22%5BJournal%5D)">Preemptive treatment of phantom and residual limb pain with targeted muscle reinnervation at the time of major limb amputation.</a> J Am Coll Surg. 228 (3), 217-226 (2019).</li>
<li>Chang, B., Mondshine, J., Attinger, C., Kleiber, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+improves+pain+and+ambulation+outcomes+in+highly+comorbid+amputees%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation improves pain and ambulation outcomes in highly comorbid amputees.</a> Plast Reconstr Surg. 148 (2), 376-386 (2021).</li>
<li>Dumanian, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+treats+neuroma+and+phantom+pain+in+major+limb+amputees%3A+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation treats neuroma and phantom pain in major limb amputees: a randomized clinical trial.</a> Ann Surg. 270 (2), 238-246 (2019).</li>
<li>Woo, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+peripheral+nerve+interfaces+for+the+treatment+of+postamputation+neuroma+pain%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg+Glob+Open%22%5BJournal%5D)">Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment of postamputation neuroma pain: a pilot study.</a> Plast Reconstr Surg Glob Open. 4 (12), e1038(2016).</li>
<li>Dehdashtian, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexually+dimorphic+pattern+of+pain+mitigation+following+prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28RPNI%29+in+a+rat+neuroma+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Sexually dimorphic pattern of pain mitigation following prophylactic regenerative peripheral nerve interface (RPNI) in a rat neuroma model.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1192-1201 (2023).</li>
<li>Senger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+direct+comparison+of+targeted+muscle+reinnervation+and+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+neuroma+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A direct comparison of targeted muscle reinnervation and regenerative peripheral nerve interfaces to prevent neuroma pain.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1180-1191 (2023).</li>
<li>Kuniak, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+postamputation+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Prophylactic regenerative peripheral nerve interfaces to prevent postamputation pain.</a> Plast Reconstr Surg. 144 (3), 421e-430e (2019).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87 (2), 149-158 (2000).</li>
<li>Hu, P., McLachlan, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+reactions+of+cutaneous+and+muscle+afferent+neurons+to+peripheral+nerve+transection+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Selective reactions of cutaneous and muscle afferent neurons to peripheral nerve transection in rats.</a> J Neurosci. 23 (33), 10559-10567 (2003).</li>
<li>Welin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+and+regeneration+of+cutaneous+and+muscular+afferent+neurons+after+peripheral+nerve+injury+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Survival and regeneration of cutaneous and muscular afferent neurons after peripheral nerve injury in adult rats.</a> Exp Brain Res. 186 (2), 315-323 (2008).</li>
<li>Jivan, S., Novikova, L. N., Wiberg, M., Novikov, L. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+delayed+nerve+repair+on+neuronal+survival+and+axonal+regeneration+after+seventh+cervical+spinal+nerve+axotomy+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">The effects of delayed nerve repair on neuronal survival and axonal regeneration after seventh cervical spinal nerve axotomy in adult rats.</a> Exp Brain Res. 170 (2), 245-254 (2006).</li>
<li>Garg, R., Uygur, S., Cwykiel, J., Siemionow, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+targeted+muscle+reinnervation+model+in+hind+limb+amputated+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reconstr+Microsurg%22%5BJournal%5D)">Development of targeted muscle reinnervation model in hind limb amputated rats.</a> J Reconstr Microsurg. 34 (7), 509-513 (2018).</li>
<li>Lago, N., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+long-term+regenerative+potential+in+an+experimental+nerve+amputee+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Peripher+Nerv+Syst%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the long-term regenerative potential in an experimental nerve amputee model.</a> J Peripher Nerv Syst. 12 (2), 108-120 (2007).</li>
<li>Hogan, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+pain+models%5BTitle%5D)+AND+%22Reg+Anesth+Pain+Med%22%5BJournal%5D)">Animal pain models.</a> Reg Anesth Pain Med. 27 (4), 385-401 (2002).</li>
<li>Sadler, K. E., Mogil, J. S., Stucky, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innovations+and+advances+in+modelling+and+measuring+pain+in+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Innovations and advances in modelling and measuring pain in animals.</a> Nat Rev Neurosci. 23 (2), 70-85 (2022).</li>
<li>Svientek, S. R., Ursu, D. C., Cederna, P. S., Kemp, S. W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+the+composite+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28C-RPNI%29+in+the+adult+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Fabrication of the composite regenerative peripheral nerve interface (C-RPNI) in the adult rat.</a> J Vis Exp. (156), e60841(2020).</li>
<li>Zepeda, J. L., Mraz, G., Roth, E., Weihrauch, D., Hoben, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+hindlimb+amputation+model+shows+analgesia+and+sexually+dimorphic+cold+hypersensitivity+with+immediate+targeted+muscle+reinnervation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pain%22%5BJournal%5D)">Rat hindlimb amputation model shows analgesia and sexually dimorphic cold hypersensitivity with immediate targeted muscle reinnervation.</a> J Pain. 33, 105460(2025).</li>
<li>Roth, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+prevents+and+reverses+rat+pain+behaviors+after+nerve+transection%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation prevents and reverses rat pain behaviors after nerve transection.</a> Pain. 164 (2), 316-324 (2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>10-0 nylon microsuture (Arosurgical)</td><td>AROSurgical</td><td>T04A10N07-13</td><td>Sutura fina de coaptação de nervos. Sutura micro 10-0. </td></tr><tr><td>4-0 polyglycolic acid suture</td><td>Ethicon</td><td>AQ1268</td><td>Sutura de fechamento para músculo e pele. Sutura absorvível 4-0. </td></tr><tr><td>5-0 silk surgical suture</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Sutura de ligação de nervo</td></tr><tr><td>Adult Sprague-Dawley rats</td><td>Charles River Laboratories</td><td>Generic</td><td>Animal experimental</td></tr><tr><td>Alcohol prep pads</td><td>Dukal Corporation</td><td>Generic</td><td>Antisséptico para a pele</td></tr><tr><td>Betadine 10%</td><td>Avrio Health LP</td><td>Generic</td><td>Antisséptico</td></tr><tr><td>Bone scissors</td><td>FST</td><td>16030</td><td>Instrumento para corte de osso</td></tr><tr><td>Cautery device</td><td>FST</td><td>18010-00</td><td>Dispositivo de hemostasia</td></tr><tr><td>Cotton tip applicator (ProAdvantage)</td><td>ProAdvantage</td><td>Ref 76100</td><td>Manipulação de tecido</td></tr><tr><td>Curved microdissector scissors</td><td>FST</td><td>15019-10</td><td>Tesoura fina para neurolise</td></tr><tr><td>Forceps (fine Dumont)</td><td>FST</td><td>11254-20</td><td>Instrumento para manuseio de nervos</td></tr><tr><td>Forceps (suture tying Dumont)</td><td>FST</td><td>11063-07</td><td>Instrumento para manuseio de sutura</td></tr><tr><td>Gauze USP type VII (Cardinal Health)</td><td>Cardinal Health</td><td>Ref 2146</td><td>Mantém campo estéril</td></tr><tr><td>Heating pad warmer (TC1000 temperature controller)</td><td>Generic</td><td>TC1000</td><td>Dispositivo de controle de temperatura</td></tr><tr><td>Induction chamber (Braintree Scientific)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>Generic</td><td>Para indução da anestesia</td></tr><tr><td>Isoflurane (Isospire)</td><td>Phoenix</td><td>Generic</td><td>Agente anestésico</td></tr><tr><td>Meloxicam (Ostilox)</td><td>VetONE</td><td>5 mg/mL</td><td>Agente analgésico</td></tr><tr><td>Ruler</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Ferramenta de medição para marcos anatômicos</td></tr><tr><td>Sterile saline</td><td>Baxter</td><td>0.9 Sodium Lot Y425131</td><td>Solução de irrigação</td></tr><tr><td>Surgical blade 15&nbsp;</td><td>FST</td><td>10015-00</td><td>Ferramenta para incisão da pele</td></tr><tr><td>Tuberculin syringe</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Administração de medicação</td></tr><tr><td>Vaporizer (Surgivet model 100)</td><td>Surgivet</td><td>Model 100 S/N W2211123</td><td>Para manutenção da anestesia</td></tr><tr><td>Vetbond tissue adhesive</td><td>World Precision Instruments</td><td>Generic</td><td>Adesivo para pele</td></tr></tbody></table>

modelo de amputação do membro posterior do rato abaixo do joelho e reinervação muscular imediata direcionada

Rat Hindlimb Below-Knee Amputation Model and Immediate Targeted Muscle Reinnervation

Modelo de amputação do membro posterior do rato abaixo do joelho e reinervação muscular imediata direcionada

Amputation-related pain reduces patient quality of life, contributes to opioid use, and can reduce functional rehabilitation and prosthesis use. ...

Uma pesquisa examina a dor relacionada a lesão nervosa e amputação e como o redirecionamento de nervos pode afetar essa dor. A amputação limita as avaliações padrão de dor. Este protocolo utiliza testes modificados e alternativos para medir comportamentos de dor pós-amputação.Para começar, obtenha uma rata Sprague Dawley com idade entre oito e 10 semanas e peso entre 250 e 300 gramas. Ligue o tapete aquecido e prepare um campo cirúrgico estéril. Organize todas as ferramentas e materiais estéreis necessários para a cirurgia.Após anestesiar o rato com isoflurano em uma dose de indução de 4% e uma dose de manutenção de 1 a 2%, faça a depilação da área começando pela região lombar e seguindo ao longo de todo o comprimento do membro posterior. Limpe o local cirúrgico com solução antisséptica de poviodina, seguido pela limpeza com um lenço umedecido com álcool. Repita este procedimento mais duas vezes.Use uma seringa tuberculínica para injetar um miligrama por quilograma de meloxicam por via subcutânea. Use uma régua para marcar a linha da articulação do joelho. E faça duas marcas adicionais, dois centímetros e três centímetros distais ao joelho.Use um bisturi para fazer uma incisão cutânea circunferencial a três centímetros distal ao joelho. Realize uma dissecação romba e afiada para separar circunferencialmente a pele dos músculos subjacentes até que ela se retrai livremente. Repita o processo de descolamento através das camadas musculares mais profundas para dissecar até o osso, preservando os planos teciduais.Use um marcador para marcar a tíbia e a fíbula um centímetro proximal ao corte circunferencial. Use tesoura óssea pequena para seccionar a tíbia e a fíbula no local marcado. Use cauterização para controlar o sangramento e obter hemostasia.Examine a extremidade do osso e retire ou corte as bordas afiadas conforme necessário. Use uma sutura absorvível trançada 4-O para aproximar as bordas anteriores dos compartimentos musculares sobre a tíbia e fixe-a com quatro a seis pontos separados e espaçados uniformemente. Alinhe e feche os compartimentos musculares anterior e posterior juntos sobre o osso para formar uma almofada muscular.Fechamento da pele lateralmente com suturas absorvíveis trançadas interrompidas 4-O, evitando a colocação sobre o coto de sustentação de peso. Aplicar adesivo dérmico ao longo da linha da incisão. Fazer uma incisão longitudinal de separação glútea de 1,5 a dois centímetros, aproximadamente cinco milímetros posterior ao fêmur.Utilize dissecação romba para separar os músculos glúteo e isquiotibiais e expor o nervo ciático próximo à sua trifurcação. Identifique os ramos motores proximais, incluindo o ramo grande localizado abaixo do músculo femoral caudal ou CFM e suas divisões. Eleve o CFM com pinça e seccione-o.Use pin&ccedil;as microcir&uacute;rgicas finas do tipo Dumont para neuralizar as divis&otilde;es do semimembranoso e do b&iacute;ceps femoral por meio de disseca&ccedil;&atilde;o romba. Segure o epineuro e abra-o longitudinalmente utilizando tesoura fina curva de mola. Em seguida, separe os ramos nervosos.Preserve o ramo caudofemoral e divida os ramos restantes próximos ao tronco isquiático. Curve os ramos motores inferiormente para facilitar a coaptação. Utilize tesoura curva de mola para abrir o epineúrio e dividi-lo a fim de neuralizar a trifurcação isquiática.Use pin&ccedil;as finas para separar suavemente os ramos nervosos. Use pin&ccedil;as para segurar cada um dos tr&ecirc;s ramos, peroneal comum, tibial e sural, a cinco a dez mil&iacute;metros distalmente &agrave; trifurca&ccedil;&atilde;o. Enquanto aplica tens&atilde;o, seccione cada nervo distalmente e excise um segmento de cinco a dez mil&iacute;metros.Utilize suturas de náilon 10-0 para realizar as coaptações, conectando primeiro o nervo perineal comum ao semimembranoso. Faça pelo menos três nós por sutura. Assegure uma colocação sem tensão, evitando apertar em excesso e dobrar o nervo, e posicione as coaptações sem angulações acentuadas.Em seguida, conecte o nervo tibial ao ramo grande do bíceps femoral e conecte o nervo sural ao ramo pequeno do bíceps femoral. Para amputação sem reinervação muscular-alvo, após expor os ramos do nervo ciático, utilize um fio de sutura de seda 5-0 e uma pinça para ligar os nervos fibular comum, tibial e sural, garantindo que a ligadura amarre o nervo e seja fixada com quatro nós quadrados. Puxe suavemente cada nervo proximalmente utilizando o nó e seccione um a dois milímetros distal à ligadura.Remova 10 milímetros do segmento nervoso distal e, em seguida, prossiga com a amputação conforme demonstrado anteriormente. Após o fechamento da incisão, aplique adesivo cutâneo ao longo da linha da incisão. Monitore a rata diariamente por sete dias quanto à integridade da ferida, sinais de infecção, dor ou desconforto, e intervenha se necessário conforme as diretrizes do IACUC.Os limiares de retirada mecânica medidos pelo teste de Von Frey foram significativamente reduzidos em relação à linha de base e permaneceram diminuídos nos diferentes momentos após a amputação. O teste com agulha demonstrou uma tendência ao aumento das respostas nociceptivas ao longo do tempo em comparação com a linha de base. A hipersensibilidade ao frio do coto foi acentuada e manteve-se sustentada em comparação com a linha de base em todos os momentos avaliados.Este protocolo permite avaliar diferentes estratégias de manejo nervoso no contexto de amputação. O maior desafio durante a realização deste protocolo é manipular os nervos de forma indolor, sendo sua largura inferior a um milímetro. Estudos futuros podem expandir este trabalho para aprimorar modelos e desenvolver métodos mais confiáveis para o estudo da dor fantasma do membro.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Aqui nós descrevemos o rato ortotópico membro-hind procedimento de transplante, o que parece ser o padrão...

Transplante Limb-Hind ortotópico em ratos

Fonte: Brakkee, E. M., et al. Cirurgia e Teste Comportamental no Modelo de Transposição do Neuroma Tibial em Ratos. J. Vis. Exp. (2023). Este vídeo demonstra um procedimento para gerar um modelo de transposição de neuroma tibial de rato (TNT). Depois de expor o nervo tibial na perna traseira de um rato anestesiado, faça o transeccionamento do nervo. Em seguida, crie um túnel subcutâneo, passe o nervo cortado pelo túnel e suture-o no lugar. Na ausência de um alvo para reinervação, as...

Gerando um modelo de rato de transposição de neuroma tibial

O modelo de corte transversal do nervo tibial é um modelo bem-tolerado, validado, e reprodutível de atrofia do músculo esquelético. O protocolo cirúrgico modelo é descrito e demonstrado em ratinhos C57Black6.

Secção do nervo tibial - um modelo padronizado para denervação induzida por atrofia muscular em ratos

Este novo modelo de transplante de membro posterior ortotópico em ratos, aplicando uma técnica manguito não sutura para a anastomose super-microvascular, fornece uma ferramenta poderosa para in vivo pesquisa imunológica mecanicista relacionadas com alotransplante composta vascularizado (VCA).

Ortotópico Hind Limb Transplantation no mouse

Este protocolo apresenta um modelo robusto e reprodutível de alotransplante composto vascularizado (VCA) voltado para o estudo simultâneo de imunologia e recuperação funcional. O tempo investido em técnica meticulosa em um transplante ortotópico do membro traseiro da coxa direita com anastomoses vasculares costurados à mão e coaptation neural produz a capacidade de estudar a recuperação funcional.

Dando o próximo passo: um modelo de transplante ortotópico ortotópico de coaptation ortotópico para maximizar a recuperação funcional em ratos

Este artigo apresenta um protocolo de transplante de retalho osteomyocutâneo heterotópico em ratos e seus resultados potenciais no acompanhamento a médio prazo.

Modelo de transplante de hindlimb heterotópico parcial em ratos

Este trabalho apresenta um protocolo para melhorar a função protética após cirurgia seletiva de transferência de nervo. As intervenções de reabilitação incluem informações e seleção do paciente, suporte à cicatrização de feridas, reativação cortical de áreas sensoriais-motoras do membro superior, treinamento de ativação muscular seletiva, manuseio de próteses no dia a dia e avaliações regulares de acompanhamento.

Intervenções terapêuticas para amputados de membros superiores submetidos a transferências seletivas de nervos

Este manuscrito fornece um método inovador para o desenvolvimento de uma interface biológica do nervo periférico denominada Muscle Cuff Regenerative Peripheral Nerve Interface (MC-RPNI).  Esta construção cirúrgica pode amplificar os sinais eferentes motores do nervo periférico associado para facilitar a detecção precisa da intenção motora e o controle potencial de dispositivos exoesqueletos.

A Interface Regenerativa do Nervo Periférico do Manguito Muscular para a Amplificação de Sinais Nervosos Periféricos Intactos

O protocolo descreve o procedimento cirúrgico para o tratamento da dor pós-amputação usando a reinervação muscular direcionada (TMR). A TMR será comparada com duas outras técnicas cirúrgicas, especificamente a Interface Regenerativa do Nervo Periférico (RPNI) e a excisão do neuroma, seguida de enterramento imediato no músculo no contexto de um estudo internacional randomizado controlado.

Reinervação Muscular Direcionada: Protocolo Cirúrgico para um Estudo Controlado Randomizado em Dor Pós-amputação

Este protocolo apresenta um modelo de rato reprodutível usando nervos sensoriais para mimetizar a dor do neuroma humano e avaliar tratamentos cirúrgicos, oferecendo uma ferramenta valiosa para a pesquisa translacional do neuroma.

Novo modelo cirúrgico de roedores para estudar as opções de tratamento da dor do neuroma usando reinervação muscular direcionada através do nervo safeno

Medical College of Wisconsin.  Este protocolo demonstra como realizar uma amputação abaixo do joelho em ratos e realizar imediatamente a inervação muscular direcionada (iTMR) para investigar estratégias de tratamento e prevenção da dor relacionada à amputação e para melhor compreender os mecanismos da dor associados à amputação.

Modelo de amputação do membro posterior do rato abaixo do joelho e reinervação muscular imediata direcionada

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