21 de novembro de 2025
Este protocolo mede quantitativamente a estabilidade e a meia-vida de RNAs potenciadores intergênicos e intragênicos em células-tronco embrionárias de camundongo, utilizando tratamento com Actinomicina D, RT-qPCR e análise de regressão não linear. Estratégias de normalização específicas de posição são incorporadas para modelar com precisão a dinâmica do decaimento do eRNA de forma dependente do contexto.
Nosso laboratório estuda epigenética, com foco na modificação e potenciadores de RNA em nível molecular. Recentemente descobrimos que a enzima RNA m5C Nsun2 é regulada por um potenciador intragênico em células-tronco embrionárias de camundongo. Para começar, pré-cobra os poços de uma placa de cultura celular de seis poços com dois mililitros de gelatina por poço.
Incube as placas a 37 graus Celsius por 10 minutos. Aspire a gelatina de cada poço e lave cada poço uma vez com um mililitro de PBS. Esterilize as placas colocando-as sob luz ultravioleta por pelo menos 15 minutos.
Semeie células-tronco embrionárias de camundongos sobre placas revestidas de gelatina usando dois mililitros de meio de cultivo celular completo por poço. Incube as células a 37 graus Celsius em uma incubadora umidificada com 5% de dióxido de carbono. Em seguida, dissolve Actinomicina D em dimetil sulfóxido para preparar uma solução padrão a uma concentração de um miligrama por mililitro.
Dois dias após a semeadura das células ou no dia da colheita, adicione a solução de estoque de Actinomicina D ao meio de cultura. Colete amostras aos 0, 5, 10, 15, 20 e 30 minutos após o tratamento. Após a parada transcricional, a expressão dos RNAs potenciadores diminuiu rapidamente em cinco minutos, enquanto os RNAs mensageiros diminuíram de forma mais gradual e permaneceram relativamente estáveis por 30 minutos. A análise de meia-vida revelou que os RNAs potenciadores apresentavam meia-vida de aproximadamente dois a três minutos, enquanto os RNAs mensageiros tinham meia-vida significativamente mais longa, ultrapassando 60 minutos.
Para o RNA potenciador intergênico Pou5f1, a normalização para o RNA mensageiro TBP ou para o valor limiar do ciclo em zero minutos produziu estimativas semelhantes de meia-vida. Os dados do sequenciamento de RNA nascente mostraram valores elevados de RPKM na região do realçador Nsun2 em comparação com o controle negativo. A análise RT-qPCR confirmou uma expressão normalizada mais alta do RNA potenciador intergênico Nsun2 dois na região do realçador Nsun2 em comparação com o controle negativo.
O método de normalização usado para os realçadores intergênicos é apropriado, pois o padrão de expressão relativo ao controle negativo é consistente com o padrão observado usando RPKM. Nosso estudo fornece um método para medir e normalizar a curta linha de meio de potenciadores que se degradam rapidamente. Abordamos a falta de métodos claros para comparar a atividade de potenciadores intergênicos e intragênicos.
Ele simplifica o processamento de dados e permite o cálculo rápido do decaimento do mESC usando passos claros e precisos.
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Este protocolo mede quantitativamente a estabilidade e a meia-vida de RNAs de enhancer intergênicos e intragênicos em células-tronco embrionárias de camundongo utilizando tratamento com Actinomycin D, RT-qPCR e análise de regressão não linear. Estratégias de normalização específicas para cada posição são incorporadas para modelar com precisão a dinâmica de degradação de eRNA de maneira dependente do contexto.
A avaliação quantitativa da estabilidade do RNA de enhancer (eRNA) em células-tronco embrionárias de camundongo aborda uma lacuna crítica na compreensão da dinâmica da regulação transcricional durante a fase inicial de descoberta. A medição precisa da cinética de degradação do eRNA permite a desvinculação mecanicista e orienta estratégias de validação de alvos para elementos reguladores de genes. Essa capacidade reforça a confiança preditiva na modulação da atividade de enhancers em pipelines de descoberta terapêutica.
Este método quantitativo de estabilidade de eRNA se integra ao continuum de descoberta inicial até a identificação de compostos líderes, apoiando tanto a verificação de hipóteses quanto o desenvolvimento de ensaios subsequentes.