19 de dezembro de 2025
Este protocolo apresenta uma técnica simples de microaspiração para isolar células somáticas (SCs) viáveis a partir do sêmen criopreservado de equinos. Diferentemente das abordagens tradicionais, essa técnica evita cultivos in vitro prolongados e supera a contaminação por espermatozoides, permitindo o uso imediato na clonagem de células somáticas.
Nosso objetivo é mostrar que células somáticas do sêmen criopreservado de cavalos podem ser úteis para recuperar indivíduos de alto valor genético. Nosso desafio atual é conseguir selecionar células somáticas com DNA diploide intacto para serem usadas como doadoras nucleares. Para começar, remova os canudos de sêmen equino do tanque de nitrogênio líquido.
Exponha-os ao ar por 10 segundos e descongele-os em banho-maria a 37 graus Celsius por 30 segundos. Pegue uma amostra de 250 microlitros do sêmen descongelado. Dilua com um mililitro de meio DMEM-F12 suplementado.
Incube a mistura de sêmen a 37 graus Celsius por 30 minutos. Pipete 25 microlitros da diluição incubada para um tubo e dilua em 975 microlitros de DPBS suplementados com 0,1 miligrama por mililitro de álcool polivinílico ou polivinil pirrolida. Misture suavemente a suspensão.
Mantenha a mistura de sêmen diluído a 37 graus Celsius durante todo o processo de coleta celular. Coloque uma tampa de placa de Petri contendo sêmen equino diluído no palco do microscópio para preparar a coleta de células somáticas. Selecione uma micropipeta de diâmetro adequado para coleta de células somáticas e conecte-a ao sistema mecânico de aspiração.
Insira cuidadosamente a micropipeta no micro drop e alinhe-a com a base da tampa do prato. Uma vez que a pipeta aspira o meio de cultivo, inicie a captura individual das células somáticas. Foque na parte inferior da microqueda, onde várias morfologias celulares são visíveis.
Posicione a ponta da micropipeta ao lado de cada célula somática e aspire sob pressão negativa. Colete células todas as redondas e alongadas, independentemente do tamanho. Após coletar 10 células, deposite-as em uma microgota de 10 microlitros localizada na superfície superior da tampa da panela.
Retenha todas as células somáticas coletadas dentro desse micro drop durante todo o processo de coleta. Uma vez coletado o número desejado de células somáticas, realize um procedimento simples de lavagem usando microgotas para remover espermatozoides, detritos e contaminantes microbianos. Usando uma segunda tampa de prato, realize uma lavagem sequencial de três etapas das células somáticas.
Use uma micropipeta para transferir as células somáticas para a primeira gota e deixe-as se acalmar por três a cinco minutos. Transfira as células da primeira gota para a segunda gota usando o mesmo procedimento. Repita a transferência mais uma vez e coloque as células somáticas na terceira gota.
Por fim, deposite as células somáticas isoladas em uma micro gota preparada designada para transferência nuclear de células somáticas. A técnica de microaspiração recuperou com sucesso células somáticas de sêmen equino criopreservado, com taxas de captura variando de 317,7 a 424,7 células por hora em três garanhões. Garanhão número 3 mostrando o maior rendimento.
Cinco tipos distintos de células somáticas foram identificados com base no tamanho e na morfologia. Identificamos uma população de células somáticas que difere em morfologia e viabilidade no sêmen equino criopreservado, que pode ser útil como doador nuclear. As células podem ser selecionadas com base em sua morfologia, e o procedimento não requer o estabelecimento de cultura primária.
Vamos focar em melhorar a viabilidade dessas células após o aumento do volume do sêmen equino.
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Este protocolo apresenta uma técnica de microaspiração para isolar células somáticas viáveis de sêmen equino crioconservado. Este método evita longos períodos de cultura in vitro e contaminação por espermatozoides, permitindo uso imediato na clonagem de células somáticas.
Efficient recovery of viable somatic cells from cryopreserved equine semen addresses a critical bottleneck in genetic resource utilization for advanced reproductive technologies. This microaspiration technique enables immediate access to diploid donor cells for somatic cell nuclear transfer (SCNT), bypassing the need for prolonged culture and mitigating sperm contamination. The approach expands the potential for genetic rescue and portfolio diversification in animal biotechnology pipelines.
This microaspiration method integrates at the interface of genetic resource recovery and SCNT-based cloning, bridging cryopreservation banking with immediate nuclear donor preparation.