10 de abril de 2026
Fornecemos um protocolo minimamente invasivo para o transplante intramuscular de ilhéus de células-tronco pancreáticas derivadas de células-tronco humanas em camundongos imunodeficientes, para implantação in vivo e análise posterior.
Estudamos o desenvolvimento do pâncreas endócrino humano usando ilhós derivados de células-tronco para entender a base genética do diabetes. O transplante tradicional de cápsulas renais é altamente invasivo. O protocolo de transplante intramuscular oferece uma alternativa mais simples, reproduzível e minimamente invasiva.
Para começar, adicione 0,5 mililitros de solução antiaderente a 5% para cobrir o fundo de uma placa de micropoços de 24 poços contendo micropoços piramidais invertidos. Centrifuge a placa a 1.300 g por 10 minutos em temperatura ambiente. Depois, examine os micropoços ao microscópio em busca de bolhas de ar.
Após recentrifugar a placa, para remover qualquer ar preso, aspire a solução antiaderente. Depois, lave cada poço com 0,5 mililitros de PBS e repita a etapa de lavagem mais uma vez. Em seguida, lave os progenitores pancreáticos cultivados desenvolvidos a partir de hPSCs com um mililitro de PBS com 0,5 milimolar de EDTA.
Aspire o PBS com 0,5 milimolar de EDTA e cubra os poços com tripsina. Depois, incube a 37 graus Celsius por oito a doze minutos. Dilua a tripsina com dois volumes de DMEM/F12 ou PBS e ressuspenda suavemente as células por pipeteamento.
Transfira a suspensão para um tubo cônico e imediatamente prossiga para a próxima etapa. Centrifuge a suspensão a 200 g por três minutos em temperatura ambiente. Aspire cuidadosamente o sobrenadante e re-suspenda delicadamente a bola em meio S4 pré-aquecido.
Em seguida, aspire o PBS das antenas micropoços. Adicione suavemente 1,25 mililitros das células suspensas a cada poço da placa do micropoço. Centrifuge a placa a 100 g por três minutos em temperatura ambiente para distribuir as células uniformemente nos micropoços.
Transfira cuidadosamente a placa do micropoço para uma incubadora umidificada. Para realizar mudanças no meio com meios diferenciadores, aspire suavemente e dispense o meio ao longo das paredes do poço para evitar turbulência e o deslocamento de agrupamentos celulares dos micropoços. Após transferir a quantidade apropriada de aglomerados gerados para um tubo microcentrífuga de 1,5 mililitros, conecte a seringa ao conjunto do tubo da agulha e preencha-o com meio S7.
Aspire os aglomerados diretamente para o tubo da microcentrífuga. Dobre o tubo ao meio e insira a seção dobrada em uma ponta de pipeta de 200 microlitros. Depois, insira o conjunto da agulha do tubo da ponta em um tubo cônico de 15 mililitros e fixe as extremidades na borda do tubo usando fita.
Centrifuge o tubo a 100 g por dois minutos a 4 graus Celsius para compactar os aglomerados e imediatamente coloque o tubo no gelo. Para transplantar os aglomerados para os camundongos NOD scid anestesiados, raspe a parte medial da perna direita abaixo do joelho e desinfete com etanol a 70%. Depois, desconecte o tubo da ponta da pipeta e conecte-o à seringa.
Corte o tubo próximo aos cachos compactados e prenda-o na extremidade romba da agulha. Pressione o soro até que o primeiro aglomerado chegue à ponta da agulha. Depois, posicione o rato deitado, inclinando-se para o lado direito e estenda a perna direita.
Insira a agulha de quatro a cinco milímetros de profundidade no compartimento medial da coxa direita, entre os músculos adutor e grácil. Em seguida, injete os aglomerados enquanto retrai a agulha em aproximadamente três milímetros. Gire a seringa, retire a agulha e deixe o rato se recuperar.
Após a recuperação do enxerto seis semanas após o transplante e a secção do tecido, realize imunocoloração para possibilitar análises de imagem subsequentes. Suspensões de célula única dos progenitores pancreáticos do estágio quatro foram encaixadas em placas de micropoço para gerar agregados tridimensionais controlados por tamanho. Em 24 a 48 horas, compactos aglomerados esféricos se formaram.
A microscopia de fluorescência confirmou a presença de PDX1 e células expressoras de insulina em linhas de hPSC repórteres. Após seis semanas, o local do enxerto foi visualizado macroscopicamente com massas semelhantes a olhos identificáveis dentro do músculo. Após a excisão, os explantos foram identificados sob um microscópio estereoscópico como estruturas esféricas pálidas de laço.
A detecção robusta de células positivas para peptídeos C foi observada em animais transplantados. A coloração por insulina confirmou a presença de células humanas semelhantes a betas dentro do enxerto. Células positivas para glucagon e somatostatina foram detectadas, indicando preservação das populações de células alfa e delta.
Esse protocolo facilita ensaios funcionais in vivo e a avaliação da sobrevivência e maturação de enxertos humanos transplantados. A consideração mais importante é garantir a diferenciação de células-tronco de alta qualidade e o manuseio suave das células durante a formação dos aglomerados para maximizar a viabilidade e garantir uma boa sobrevivência celular. Esses modelos facilitam a investigação dos mecanismos genéticos subjacentes ao diabetes monogênico e à disfunção das células beta.
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Este artigo do JoVE apresenta um protocolo detalhado para o transplante intramuscular de ilhotas pancreáticas derivadas de células-tronco pluripotentes humanas (hPSC) em camundongos imunodeficientes. O método oferece uma alternativa menos invasiva ao transplante na cápsula renal ou subcutâneo, permitindo acesso cirúrgico direto e recuperação confiável do enxerto. O protocolo permite a avaliação da função das ilhotas por meio da secreção de insulina estimulada pela glicose (GSIS) in vivo após um desafio oral com glicose e facilita análises histológicas posteriores.
O transplante intramuscular de células endócrinas pancreáticas derivadas de células-tronco pluripotentes humanas fornece um modelo pré-clínico minimamente invasivo e reprodutível para o desenvolvimento da terapia celular do diabetes. Essa abordagem permite a avaliação funcional de ilhotas derivadas de células-tronco por meio da secreção de insulina estimulada por glicose in vivo e possibilita a recuperação confiável do enxerto para análises posteriores, superando limitações importantes dos sítios tradicionais de transplante. O método aumenta a confiabilidade preditiva da avaliação pré-clínica ao oferecer um contexto fisiológico para a maturação e função das ilhotas, ao mesmo tempo que melhora o acesso cirúrgico e reduz a invasividade nos animais.
Este método integra-se ao continuum de descoberta ao apoiar a verificação de hipóteses na fase inicial de descoberta, permitindo a padronização de ensaios para triagem e fornecendo leituras funcionais que orientam as decisões de identificação de compostos promissores e avanço pré-clínico.