20 de março de 2026
Descrevemos um método para isolar células individuais de embriões iniciais de Xenopus laevis e separá-las pelo tamanho celular.
Nossa pesquisa foca em como o tamanho celular regula decisões sobre genomas e sulfatos no desenvolvimento inicial do embrião. Métodos existentes ignoram a heterogeneidade de tamanho nos embriões de xenopo iniciais. Esse protocolo permite separação física precisa e ordenação por tamanho de célula.
Para começar, adicione aproximadamente 15 mililitros de CMFM a uma nova placa de Petri de 60 milímetros revestida com gel 1,5% AGROS. Usando uma pipeta plástica de transferência, transfira de 10 a 100 embriões de Xenopus laevis para o recipiente. Coloque a antena sob um microscópio estereoscópico.
Cuidadosamente capture a membrana vitelina na superfície dos embriões com uma pinça e retire a membrana com outra pinça. Evite danificar os embriões durante esse processo. Incube os embriões devitalinados no CMFM por uma hora em temperatura ambiente.
Agite suavemente o prato a cada cinco minutos para facilitar a dissociação celular. Verifique regularmente até que não apareçam pilhas de blastômeros. Durante a dissociação dos blastômeros, submerga os filtros celulares de 40 micrômetros, 70 e 100 micrômetros em placas individuais de Petri preenchidas com CMFM.
Organize os pratos da esquerda para a direita na ordem indicada. Coloque dois pratos adicionais cheios de CMFM entre os grupos para uma lavagem rápida dos peneiros durante a seleção. Agora, gire suavemente o prato contendo os blastômeros isolados para enriquecê-los no centro.
Em seguida, transfira cuidadosamente os blastômeros para o filtro de 40 micrômetros submerso no CMFM. Agite suavemente o escorredor algumas vezes para permitir a passagem de blastômeros menores que 40 micrômetros. Mova rapidamente a peneira para um recipiente cheio de CMFM para lavagem rápida.
Depois, transfera cuidadosamente os blastômeros retidos no filtro para o filtro de 70 micrômetros. Repita o procedimento de separação usando peneiras progressivamente maiores até que os blastômeros sejam coletados no filtro de 100 micrômetros. Gire delicadamente cada prato contendo blastômeros separados para enriquecê-los no centro.
Em seguida, transfere cuidadosamente aproximadamente quatro mililitros de blastômeros para o topo de 0,5 mililitros de meio com gradiente de densidade de 15% em um tubo de separação celular ativado por fluorescência, sem misturar. Após 10 minutos, os blastômeros intactos se depositam no fundo pela gravidade, separando-os dos glóbulos de gema derivados de blastômeros de explosão. O controle não ordenado e o tamanho dos blastômeros únicos foram fixados e fotografados sob um microscópio de campo claro.
Os blastômeros ordenados apresentaram distribuições de tamanho estreitas dentro de suas respectivas faixas esperadas em relação aos blastômeros não classificados de controle. O grupo com menos de 40 micrômetros apresentou um diâmetro médio de aproximadamente 33 micrômetros. O grupo de 40 a 70 micrômetros apresentou um diâmetro médio de aproximadamente 55 micrômetros, enquanto o grupo maior que 70 micrômetros apresentou um diâmetro médio de aproximadamente 91 micrômetros.
Esse protocolo permite que pesquisadores estudem funções e mecanismos mediados pelo tamanho celular. A consideração mais importante para esse protocolo é manusear cuidadosamente as células dissociadas, pois elas são frágeis. Após esse protocolo, as células ordenadas podem ser usadas para análise do ciclo celular, sequenciamento de célula única e imagem confocal.
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Este protocolo demonstra um método para isolar e classificar células individuais de embriões iniciais de Xenopus laevis com base no tamanho celular. Esta técnica aborda as limitações dos métodos existentes que ignoram a heterogeneidade de tamanho, facilitando estudos sobre funções relacionadas ao tamanho celular no desenvolvimento.
O isolamento preciso e a separação baseada no tamanho de células individuais de embriões iniciais de Xenopus permitem investigar mecanismos regulatórios dependentes do tamanho durante o desenvolvimento inicial. Essa capacidade preenche uma lacuna crítica na compreensão de como a heterogeneidade do tamanho celular influencia decisões de desenvolvimento, apoiando a confiança preditiva na validação de alvos e na redução de riscos mecanicistas. O método fornece uma plataforma escalável para gerar populações celulares padronizadas e definidas por tamanho para fluxos de trabalho de descoberta e translacionais posteriores.
Este protocolo integra-se ao continuum de descoberta, desde a verificação inicial de hipóteses até o desenvolvimento de ensaios e pesquisas translacionais, permitindo estudos mecanicistas baseados em tamanho e preparações padronizadas de células para análises posteriores.