ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol>
	<li>Hasik AZ, et al. Parasitism as a driver of host diversification. Nat Rev Biodivers. 2025;1(6):401-410.</li>
	<li>Pennacchio F, Strand MR. Evolution of developmental strategies in parasitic Hymenoptera. Annu Rev Entomol. 2006;51:233-258.</li>
	<li>Quicke DL. Parasitic Wasps. 1997:221-255.</li>
	<li>Moreau S, Asgari S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological functions. Toxins. 2015;7(7):2385-2412.</li>
	<li>Huang J, Chen XX, Zhan S. Molecular mechanisms underlying parasitoid-derived host manipulation strategies. Annu Rev Entomol. 2026;71:51-68.</li>
	<li>Belokobylskij SA. Key to the Insects of Russian Far East. Tribe Alysiini. In: Ler PA, ed. 1998;4(3):163-298.</li>
	<li>Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Host range of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Entomol Sci. 2008;11(1):1-6.</li>
	<li>Mitsui H, Van Achterberg K, Nordlander G, Kimura MT. Geographical distributions and host associations of larval parasitoids of frugivorous Drosophilidae in Japan. J Nat Hist. 2010;41(25-28):1731-1738.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Whole-genome sequencing analysis and protocol for RNA interference of the endoparasitoid wasp Asobara japonica. DNA Res. 2022;29(4):1-14.</li>
	<li>Kamiyama T, et al. Parasitoid wasp venoms degrade Drosophila imaginal discs for successful parasitism. Sci Adv. 2025;11(5).</li>
	<li>Shrestha B, Aryal B, Lee Y. The taste of vitamin C in Drosophila. EMBO Rep. 2023;24(6).</li>
	<li>Murata Y, Ideo S, Watada M, Mitsui H, Kimura MT. Genetic and physiological variation among sexual and parthenogenetic populations of Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae), a larval parasitoid of drosophilid flies. Eur J Entomol. 2009;106(2):171-178.</li>
	<li>Werren JH, Baldo L, Clark ME. Wolbachia: master manipulators of invertebrate biology. Nat Rev Microbiol. 2008;6(10):741-751.</li>
	<li>Furihata S, Hirata M, Matsumoto H, Hayakawa Y.&#160;Bacteria endosymbiont,&#160;Wolbachia, promotes parasitism of parasitoid wasp Asobara japonica. PLoS One. 2015;10(10).</li>
	<li>Yamashita S, Takahashi KH. Artificial transfer of a thelytoky-inducing Wolbachia endosymbiont between strains of the endoparasitoid wasp Asobara japonica (Hymenoptera: Braconidae). Appl Entomol Zool. 2018;53(3):403-409.</li>
	<li>Wang X, Biondi A, Daane KM. Functional responses of three candidate Asian larval parasitoids evaluated for classical biological control of Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae). J Econ Entomol. 2020;113(1):73-80.</li>
	<li>Niwa R, Niwa YS. Molecular mechanisms of ecdysteroid biosynthesis. Compr Mol Insect Sci. 2026:106-137.</li>
	<li>Zhang J, et al. A set of novel venom proteins enables parasitoid wasps to exploit older hosts and coexist with competitors. Adv Sci. 2026;13(4).</li>
	<li>Schott S, et al. A fluorescent toolkit for spatiotemporal tracking of apoptotic cells in living Drosophila tissues. Development. 2017;144(20):3840-3846.</li>
	<li>Kacsoh BZ, Bozler J, Ramaswami M, Bosco G. Social communication of predator-induced changes in Drosophila behavior and germ line physiology. eLife. 2015;4.</li>
	<li>Sadanandappa MK, Sathyanarayana SH, Kondo S, Bosco G. Neuropeptide F signaling regulates parasitoid-specific germline development and egg-laying in Drosophila. PLoS Genet. 2021;17(3).</li>
	<li>Amano S, Akada T, Takahashi KH. In vivo and in vitro developmental profiling of Asobara japonica, a larval endoparasitoid of drosophilid flies. Entomol Exp Appl. 2019;167(5).12790.</li>
	<li>Shirai Y, Piulachs MD, Belles X, Daimon T. DIPA-CRISPR is a simple and accessible method for insect gene editing. Cell Rep Methods. 2022;2(5):100215.</li>
	<li>Zhang X, Singh A, Soriano Martinez K, Ferree PM. Direct parental (DIPA) CRISPR in the jewel wasp, Nasonia vitripennis. G3 (Bethesda). 2024;14(7).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>50 mL tube</td><td>Greiner Bio-One</td><td>210261</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>1 mL syringe</td><td>TERUMO</td><td>SS-01T</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Daisin, Ltd.</td><td>P-700</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;40&times;13.5mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-01</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Asnol Petri Dish &phi;55&times;17mm</td><td>As One Corporation</td><td>1-8549-02</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Blue dye (Erioglaucine disodium salt)</td><td>Sigma-Aldrich Co. Llc.</td><td>861146-25G</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Butyl p-Hydroxybenzoate</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>06327-15</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>CO2 pressure regulator</td><td>YAMATOSANGYO</td><td>YR-507F-2</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Confocal laser scanning microscope</td><td>Zeiss</td><td>LSM700</td><td>Image analysis</td></tr><tr><td>Corn meal</td><td>Sunny Maize Co., Ltd.</td><td>No.4M</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>PI62247</td><td>Nuclei staining, 1:10000</td></tr><tr><td>Deionized water</td><td>Millipore Inc.</td><td>ZLXEV030WW</td><td>Infection assay</td></tr><tr><td>Dual-Stage Glass Micropipette Puller</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Fiji</td><td>NA</td><td><a href="https://fiji.sc/">https://fiji.sc</a></td><td>Image analysis</td></tr><tr><td>Filter paper</td><td>Advantec</td><td>ITEM 526</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Fly food vial</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>KFB-3M</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Fly food vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., Ltd.</td><td>AS-275</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Dumont Biologie</td><td>11252-20</td><td>Dissection</td></tr><tr><td>Freezer, -20 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>GS-3120HC</td><td>Sample storage</td></tr><tr><td>Freezer, -80 &deg;C</td><td>Nihon Freezer</td><td>CLN-52UD2</td><td>Sample storage</td></tr><tr><td>Glass slides</td><td>Matsunami Glass Ind., Ltd</td><td>S7213</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Showa Sangyo Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Not availavle</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>KOD Plus Neo</td><td>Toyobo</td><td>KOD-401</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Panasonic</td><td>MIR-254-PJ</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Ligation high Ver.2</td><td>Toyobo</td><td>LGK-201</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Micropipette Grinder</td><td>Narishige</td><td>EG-401</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Mineral oil</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>23306-84</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject III</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-207</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Nanoject Glass Capillaries</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>3-000-203-G/X</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>pBluescript KS (+) plasmid</td><td>Not availavle</td><td>Not availavle</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>pBluescript SK (-) plasmid</td><td>Not availavle</td><td>Not availavle</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>PrimeScript reverse Transcriptase</td><td>Takara</td><td>2680A</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Propionic acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>29018-55</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>PROWIPE</td><td>Daio Paper Corporation</td><td>2-2624-02</td><td>Infection assay, dsRNA injection.</td></tr><tr><td>ReverTra Ace qPCR RT Master Mix with gDNA Remover</td><td>Toyobo</td><td>FSQ-301</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>RNAiso Plus reagent</td><td>Takara</td><td>9108</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Small vial (Test tube 12 mL)</td><td>Sarstedt</td><td>REF 58.487</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Small vial plug</td><td>Chiyoda Science Co., ltd.</td><td>QD-S4</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Spatula</td><td>As One Corporation</td><td>6-522-02</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Square petri dish</td><td>Eiken Chemical Co., Ltd.</td><td>64-2192-55, AW2000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Leica Microsystems</td><td>lvesta3 (C-Mount)</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Nikon Solutions Co., Ltd.</td><td>SMZ1000</td><td>dsRNA injection</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express RNAi System</td><td>Promega</td><td>P1700</td><td>dsRNA synthesis</td></tr><tr><td>Thermal Cycler Dice Real Time System</td><td>Takara</td><td>TP815</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Thermal Cycler GeneAtlas</td><td>Astel</td><td>G02</td><td>dsRNA synthesis, qRT-PCR</td></tr><tr><td>THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix</td><td>Toyobo</td><td>QPS-201</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>TissueLyser II</td><td>Qiagen</td><td>Not availavle</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Vitamin C, L-Ascorbic Acid</td><td>Nacalai Tesque, Inc.</td><td>03420-65</td><td>Rearing</td></tr><tr><td>Welch's grape 100 juice</td><td>Asahi Soft drinks Co., Ltd.</td><td>32390</td><td>Infection assay&nbsp;</td></tr><tr><td>Yeast</td><td>Asahi Group Foods, Ltd.</td><td>HB-P02</td><td>Rearing</td></tr></tbody></table>

protocolos para criação eficiente e análise funcional da vespa endoparasitoide asobara japonica e seu hospedeiro drosophila melanogaster

Protocols for Efficient Rearing and Functional Analysis of the Endoparasitoid Wasp Asobara japonica and its Host Drosophila melanogaster

Protocolos para Criação Eficiente e Análise Funcional da Vespa Endoparasitoide Asobara japonica e seu hospedeiro Drosophila melanogaster

Parasitism is a biological interaction in which one organism exploits the body or resources of another (the host), resulting in substantial damage or ...

protocols-for-efficient-rearing-functional-analysis-endoparasitoid

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Fopius arisanus é um parasitóide de ovos-larvas de moscas da fruta Tephritid que é utilizado com sucesso no controle biológico dessas pragas importantes tropical. Descrevemos aqui um protocolo otimizado para a criação de F. arisanus em pequena escala, utilizando materiais facilmente disponíveis.

Um protocolo Optimizado para Criação Fopius arisanus, Um parasitóide de Frutas Tephritid Flies

Parasitóide (parasita) vespas constituem uma classe importante de inimigos naturais de insetos, incluindo...

Uma Introdução à Vespas parasitas de<em&gt; Drosophila</em&gt; E Resposta Imune a antiparasitários

O circuito de alimentação em larvas de Drosophila melanogaster serve um modelo simples, mas poderosa que permite mudanças na taxa de alimentação a ser correlacionada com alterações no circuito neural stomatogastric. Este circuito é composto por neurónios serotonérgicos centrais que enviam projecções para os ganchos na boca, bem como o tubo digestivo anterior.

Análise Funcional do circuito de alimentação das larvas em Drosophila</i

Aqui, apresentamos um protocolo para quantificar a evitação de indivíduos estressados. Este paradigma é poderoso, mas fácil de usar, e pode ser usado para avaliar a influência de genes e ambiente em um tipo de interação social em Drosophila melanogaster.

Ensaio simples para Quantificação de Prevenção Social Drosophila melanogaster

Fornecemos um protocolo detalhado para um ensaio de comprimento de caminho de forrageamento de Drosophila melanogaster. Discutimos a preparação e manuseio de animais de teste, como realizar o ensaio e analisar os dados.

Forrageamento Protocolo Caminho de comprimento para<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Larvas

As moscas adultas de Drosophila melanogaster têm sido amplamente utilizadas como organismos modelo para investigar os mecanismos moleculares subjacentes às respostas imunes inatas antimicrobianas e estratégias de infecção microbiana. Para promover o estágio da larva D. melanogaster como um sistema modelo adicional ou alternativo, uma técnica de injeção larval é descrita.

Melanogaster drosophila Protocolo de injeção de larvas

O presente protocolo descreve o método de criação de insetos de peste tortricida nos laboratórios. Os procedimentos para distinguir o sexo dos insetos e extrair ácidos nucleicos para sequenciamento de alto rendimento são estabelecidos usando duas pragas tortricidas.

Criação em massa e estudos moleculares em insetos de peste de Tortricidae

Ganaspis brasiliensis-a larval parasitoide de Drosophila suzukii (uma praga global de cultura de frutas invasivas)-- foi aprovado ou é considerado para introdução na Europa e nos Estados Unidos para o controle biológico desta praga. Este artigo fornece protocolos para a criação em pequena escala e em larga escala deste parasitoide.

Métodos de Criação do Parasitoide Ganaspis brasiliensis, um Agente promissor de controle biológico para a Drosophila suzukii invasiva

Embriões de vespas Nasonia foram dissecados de pupas de Lucillia sericata após parasitização por 12-24 h e lavados com álcool e solução de hipoclorito de sódio a 10% para obtenção de embriões livres de germes. Após a criação dos embriões livres de germes e fornecimento de meio de criação de Nasonia para crescimento e desenvolvimento in vitro, adultos de Nasonia livres de germes foram obtidos.

Otimizando o procedimento de criação de vespas livres de germes

Este artigo descreve a manutenção laboratorial (incluindo acasalamento e alimentação) da mosca díptera inferior Bradysia (Sciara) coprophila.

Manutenção laboratorial da Bradisia (Sciara) coprophila da mosca dos dípteros inferiores: um novo / antigo organismo modelo emergente

University of Tsukuba.  O objetivo deste protocolo é facilitar a análise funcional das interações parasitoide–hospedeiro em Asobara japonica e Drosophila melanogaster. Por meio de métodos otimizados de criação, um ensaio de infecção com oviposição única e knockdown gênico mediado por RNAi.

Protocolos para Criação Eficiente e Análise Funcional da Vespa Endoparasitoide Asobara japonica e seu hospedeiro Drosophila melanogaster

Explorar mais vídeos