Name: In vitro e in vivo de imagens Gene Reporter bioluminescência de células estaminais embrionárias humanas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-05-02T17:59:00.000+00:00
Duration: 12 min 19 s
Description: Aprenda a rastrear a proliferação de células-tronco embrionárias humanas in vivo usando técnicas de imagem bioluminescente. Este método permite avaliar de forma não invasiva o comportamento celular após transplante em modelo murino.

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Graças a Tim Doyle, PhD e do Centro de Stanford para In Vivo Imaging para assistência com a imagem de bioluminescência. Também graças à Ngan Huang, PhD para compartilhar sua técnica sobre células-tronco co-injeção com uma solução matriz. Por último, graças a Steve Felt, Ph.D. de assistência com cuidados animais veterinária.

<ol><li> Construção de Gene Double Fusion Reporter <ol><li> A fim de realizar imagem de bioluminescência de células estaminais embrionárias humanas, é preciso primeiro obter células que expressam de forma estável um gene repórter luciferase, como vaga-lume luciferase dirigido por um promotor constitutivo como Ubiquitina ou EF1a. </li><li> O foco deste protocolo é em aplicações gene repórter, então os procedimentos detalhados não são fornecidos aqui. No entanto, a estratégia geral do nosso laboratório é usar um vetor de construção de dupla fusão que contém firefly luciferase (flutuações) e proteína verde fluorescente melhorada (EGFP) separados por um espaçador dentro pCDNA 3.1 +. </li><li> Resumidamente, o nosso gene de fusão dupla foi originalmente localizada a jusante do promotor citomegalovírus em pCDNA 3.1 (+), de modo que o fragmento foi retirado 3,3 kbp usando NdeI e NotI digestão e finais blunt ligada no sítio múltiplo de clonagem de uma auto-inativação SIN ( ) vector lentiviral, sob controle de um promotor da ubiquitina. </li></ol></li><li> Transdução lentiviral <ol><li> hESCs pode ser transduzidas 3-5 dias após a passagem de uma multiplicidade de infecção (MOI) de 10 (título viral de cerca de 107 incubadas com 106 células). </li><li> O estoque viral descongeladas podem ser adicionados diretamente à mídia CTEh fresco. </li><li> Atualizar o media 12 e 24 horas depois. </li><li> Após 48 h, a eficiência de transdução pode avaliados qualitativamente por meio de microscopia de fluorescência. Posteriormente, FACS pode ser usada para isolar as células infectadas. </li></ol></li><li> HESCs cultura e Introdução à Imagem Set-up <ol><li> Cultura da sua luciferase hESCs positiva no alimentador sem condições. Normalmente, seguir o protocolo WiCell padrão e utilizar placas de 6 poços revestida em fator de crescimento reduzida Matrigel, usando meios condicionados ou comercial, alimentador de mídia livre. </li><li> De detectar as células luciferase positivo, você precisará ter a sonda repórter D-luciferina já preparado. Para fazer isso luciferina alíquota, em mL 1-1,5 preparações numa concentração final de 45 mg / mL. Manter as alíquotas a -20 ° C, quando não em uso e evitar a exposição à luz, cobrindo com toalha de papel quando não estiver em armazenamento. </li><li> Para visualizar as células luciferase positivo, usamos IVIS 50 e 200 IVIS Imaging Systems (Xenogen Corporation, Alameda, CA). Este último sistema inclui um aparelho integrado isoflourane e câmara de indução para a anestesia temporária de pequenos animais. </li></ol></li><li> Na geração de imagens vitro bioluminescência de hESCs <ol><li> In vitro para a imagem de bioluminescência, é importante manter condições estéreis. Portanto, o sistema de imagem deve ser estéril, de preferência em uma sala de cultura celular. </li><li> Antes de imagem, remova a mídia de células e adicionar PBS suficiente apenas para cobrir as células. Por exemplo, adicione 1 mL de PBS a cada poço de uma placa de 6 poços contendo o seu CTEh culturas. </li><li> A proporção de D-Luciferina a PBS deve ser 1:100, então adicionar 10 mL de descongelado D-Luciferina a cada poço da placa de 6 poços. </li><li> Espere um minuto, em seguida, tomar uma imagem usando um tempo de exposição de um segundo. Se o sinal é fraco, aumentar o intervalo de exposição e tente novamente. </li><li> O sinal bioluminescente reflete o número de células, por isso os ensaios de quantificação pode ser realizada sinal de que se correlacionam com os números de celulares diferentes. </li></ol></li><li> Preparação de rato e células injetando para in vivo de imagens <ol><li> Gene repórter de imagem fornece um método de alto rendimento, barato e sensível para rastreamento de células após o transplante ao longo de dias, semanas e até meses. Isto é especialmente importante uma vez que as células-tronco transplantadas freqüentemente formam teratomas, são rejeitadas pelo sistema imunológico do hospedeiro, ou simplesmente morrer. </li><li> O método mais simples para geração de imagens a formação de teratoma in vivo é injetar hESCs que expressam o gene repórter luciferase vagalume para as costas de camundongos SCID e adquirir imagens bioluminescentes com o sistema IVIS. </li><li> Quando você está pronto para o transplante de células, use dispase ou colagenase para soltar as células, lave várias vezes, e suspendê-las em uma mistura 1:1 de fator de crescimento reduzido Matrigel e DMEM. Normalmente nós primeiro mix as células com DMEM refrigerados e depois adicionar no Matrigel. Para cada local de injeção subcutânea, injetamos 200.000 células suspensas em um volume 5-10 ul da mistura matrigel / DMEM. O número de células pode ser ajustada dependendo da sua aplicação. Lembre-se de manter tudo em gelo antes da injeção. </li><li> Uma vez que as células estão prontas, anestesiar o rato, colocando-o na caixa de indução com isoflurano fluxo ligado. Depois de 1-5 minutos, o mouse está dormindo e pode ser colocado na mesa de operação contínua com isoflurano. </li><li> Porque pele naturalmente auto-fluorescente e pode obscurecer a imagem de bioluminescência, teremos de remover o cabelo do lado de trás do mouse. A maneira mais fácil de fazer isso é usar um barbeador elétrico, mas você também pode usar depilação-géis. Limpe com álcool para esterilizara pele depois </li><li> Em seguida, elaborar a sua suspensão de células em uma seringa. 23-27 agulhas funcionam melhor que elas não irão entupir com as células. Se a agulha é muito grande (&lt;23 gauge) no trato agulha pode deixar um grande buraco através do qual as células podem vazar para fora. </li><li> Injetar as células sob a pele em volta do mouse. Porque a pele é bem solta, use o polegar eo indicador para comprimir e estender a área que deseja injetar. Injetar sob a pele, tomando cuidado para não perfurar muito profundamente. Além disso, tente manter a agulha deslizando para fora do local de injecção enquanto pressiona o êmbolo: isso vai impedir a criação de um buraco na pele através do qual as células podem vazar se você tentar injetar novamente. </li><li> Depois que as células são injetadas, esperar algumas horas para permitir que o mouse para acordar e correr ao redor antes de voltar a anestesiar a imagem de bioluminescência. Fazê-lo evita toxicidade isoflurano. </li></ol></li><li> Em imagem de bioluminescência vivo de células transplantadas <ol><li> Para imagens de toda a bioluminescência de animais, fazemos uma injeção intraperitoneal de D-luciferina em 375 peso corporal mg / kg. Pesar o animal para calcular a dose antes da injeção. </li><li> Injetar o D-luciferina no peritônio, ao largo da linha média. Tenha cuidado para não ir muito fundo ou você pode danificar os órgãos internos. Se o rato começa a acordar, coloque-o novamente na caixa de knockout e esperar um minuto ou dois. Para camundongos, a bioluminescência máximo ocorre geralmente 15-40 minutos após a injeção. </li><li> Lembre-se de colocar papel preto fosco na caixa de imagem para ajudar a absorver toda a luz não é emitida pela hESCs. Posicione o mouse (até backside) na câmara de imagem com isoflurano, em cima do papel preto. Comece com um tempo de exposição de 10 segundos. Se o sinal é saturado, tente diminuir o tempo de exposição, se demasiado fraco, aumentar a exposição. </li><li> Uma vez que o tempo de exposição do sinal foi otimizado para o seu mouse, as imagens começam a tomar a cada minuto até que o sinal atinge um máximo. Este é o melhor feito usando o software de imagem para selecionar &quot;regiões de interesse (ROI)&quot;, que cobrem seus locais de injecção. Ao monitorar a intensidade do sinal em cada ROI você pode facilmente determinar quando o sinal começa a diminuir, indicando que a intensidade máxima do sinal foi atingido. A máxima do sinal deve ser utilizado como seus dados final. </li><li> Quando estiver satisfeito com suas imagens, remova o mouse de isoflurano e permitir que ele acorda em sua gaiola. Normalmente, o mouse deve acordar em 15 minutos. </li><li> Bioluminescência imagem gene repórter pode ser repetida diariamente, semanalmente e mensalmente durante o tempo que o hESCs sobreviver no animal. Sinal de um teratoma desenvolvimento irá aumentar exponencialmente ao longo do tempo, tipicamente da ordem de semanas, como o hESCs começam a proliferar. </li><li> Após o curso de tempo desejado de imagens bioluminescência é adquirido, o animal pode ser sacrificado e secções de tecido usado para histologia. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Em comparação com outras modalidades, tais como PET e RM, a bioluminescência tem resolução espacial limitada penetração nos tecidos e reduzido devido à energia relativamente fraca de fótons emitidos (2-3 eV); por estas razões que até agora não foi aplicável em animais de grande porte. No entanto, a bioluminescência tem a vantagem de ser de baixo custo, alto rendimento, e não-invasivo, tornando-se altamente desejável para in vivo com células-tronco de rastreamento em pequenos animais. Genes não bioluminescência-repórter, como construções de ...

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s Eagle Modificado&amp;rsquo;Meio DMEM</td><td></td><td>Hyclone</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD Matrigel&amp;#8482; Matriz da Membrana Basal</td><td>Fator de crescimento reduzido (opcional: sem vermelho de fenol)</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Meio de Manutenção mTeSR1 para Células-Tronco Embrionárias Humanas</td><td></td><td>Tecnologias de Células-Tronco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Salina Fosfato Tamponada (PBS)</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-Luciferina de vaga-lume, sal potássico</td><td></td><td>Biosynth International, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Solução de colagenase IV</td><td></td><td></td><td></td><td>Dissolva 30 mg de colagenase tipo IV em 30 mL de meio DMEM-F12. Filtre esterilmente e armazene a 4 graus Celsius.</td></tr><tr><td>Pipetas Pasteur assadas</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultura de tecidos tratadas, de 6 poços</td><td></td><td>Techno Plastic Products</td><td>92006</td><td></td></tr></tbody></table>

in vitro e in vivo de imagens gene reporter bioluminescência de células estaminais embrionárias humanas

In vitro and in vivo Bioluminescence Reporter Gene Imaging of Human Embryonic Stem Cells

A descoberta de células estaminais embrionárias humanas (hESCs) aumentou drasticamente as ferramentas disponíveis para cientistas médicos interessados ​​em medicina regenerativa. No entanto, a injeção direta de hESCs e células diferenciadas de hESCs, em organismos vivos até agora tem sido dificultada pela morte celular significativa, a formação de teratoma, e rejeição imune do hospedeiro. Compreensão do comportamento em CTEh vivo após o transplante exige técnicas de imagem inovadora para monitorar longitudinalmente localização CTEh, proliferação e viabilidade. A imagem molecular tem dado investigadores um meio de alto rendimento, baixo custo, e sensível para o rastreamento na proliferação celular vivo ao longo de dias, semanas e até meses. Este avanço tem aumentado significativamente a compreensão da cinética espaço-temporal de enxerto CTEh, proliferação e formação de teratoma, nos indivíduos que vivem. Um grande avanço em imagem molecular tem sido a extensão dos ensaios não-invasivo gene repórter da biologia molecular e celular em plataformas in vivo modalidade multi-imagem. Estes genes repórter, sob controle de promotores e potenciadores de engenharia que se aproveitam da maquinaria transcricional da célula hospedeira s, são introduzidas nas células usando uma variedade de métodos de vetor e vetor não. Uma vez na célula, genes repórter pode ser transcrita ou constitutivamente ou apenas sob determinadas condições biológicas ou celular, dependendo do tipo de promotor usado. Transcrição e tradução de genes repórter em proteínas bioativas é detectada com instrumentação, sensível não-invasiva (por exemplo, câmeras CCD) usando o sinal de geração de sondas, tais como D-luciferina. Para evitar a necessidade de luz de excitação para rastrear as células-tronco in vivo como é necessário para imagens de fluorescência, bioluminescência repórter sistemas de imagem gene exigem apenas uma sonda exogenamente administrada para induzir a emissão de luz. Firefly luciferase, derivado do Photinus firefly pyralis, codifica uma enzima que catalisa D-luciferina ao opticamente metabólito ativo, oxiluciferina. Atividade óptica pode ser monitorada com uma câmera CCD externa. Estavelmente transduzidas células que carregam o repórter construir dentro de seu DNA cromossômico vai passar o repórter construção de DNA para as células filhas, que permitam um acompanhamento longitudinal de sobrevivência e proliferação CTEh in vivo. Além disso, como expressão do produto do gene repórter é necessário para a geração do sinal, apenas as células viáveis ​​pai e filha vai criar sinal de bioluminescência; células apoptóticas ou morto, não. Neste vídeo, os materiais e métodos específicos necessários para a proliferação de rastreamento de células-tronco e formação de teratoma com a imagem de bioluminescência será descrito.

Com o crescente interesse em terapias com células-tronco, técnicas de imagem molecular são ideais para monitorar o comportamento de células-tronco após o transplante. Genes repórter luciferase permitiram não-invasivo de avaliação, repetitiva de sobrevivência da célula, localização e proliferação in vivo. Este vídeo vai demonstrar como controlar a proliferação CTEh em um rato vivo.

In vitro e in vivo de imagens Gene Reporter bioluminescência de células estaminais embrionárias humanas

A descoberta de células-tronco embrionárias humanas (hESCs) aumentou drasticamente as ferramentas disponíveis para cientistas médicos interessados em medicina regenerativa...

In vivo, a formação de teratoma é o padrão ouro para determinar a pluripotência de uma célula ou sua capacidade de formar as três camadas germinativas. Os teratomas também representam um grande obstáculo para o transplante de células-tronco, e atualmente pouco se sabe sobre sua formação em termos de cinética de crescimento. Uma vez que células indiferenciadas são implantadas no ambiente hospedeiro, o desenvolvimento de repórteres bioluminescentes, transdução gênica e fotografia com dispositivos acoplados por carga ultra-sensíveis, ou câmeras CCD, permitiu a avaliação não invasiva e repetitiva da localização, migração, proliferação e diferenciação celular in vivo.Neste vídeo, demonstraremos um protocolo detalhado para rastrear efetivamente a proliferação de células-tronco embrionárias humanas transplantadas em um camundongo vivo. Olá, sou Kit Wilson do laboratório de Joseph Wu, nos Departamentos de Medicina e Radiologia da Universidade de Stanford. Hoje mostraremos os procedimentos para imagens de células-tronco embrionárias humanas, tanto in vitro quanto após o transplante em um camundongo vivo.Esses procedimentos incluem as seguintes etapas: imagem de bioluminescência in vitro de

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Biologia

Aqui, descrevemos os métodos para construir, visualizar e quantificar as reações bioluminescentes de ambos vagalume e Renilla enzimas luciferase expressos em células de câncer de mama metastático durante o seu crescimento e...

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Este artigo descreve uma sequência otimizada de eventos para imagiologia multimodal de enxertos celulares no cérebro de roedores por meio de: (i) na bioluminescência vivo e ressonância magnética, e (ii) a análise post mortem histológica. A combinação destas modalidades de imagem em um único animal permite uma avaliação do enxerto celular com alta resolução, sensibilidade e especificidade.

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Nós descrevemos um ensaio repórter de fluorescência para rapidamente identificar e caracterizar genes que regulam a manutenção do mouse células-tronco embrionárias e auto-renovação.

Oct4GiP Ensaio Reporter para o Estudo de genes que regulam o mouse Manutenção células-tronco embrionárias e auto-renovação

Relógios circadianos funcionam no interior das células individuais, ou seja, são células-autónomo. Aqui, descrevem métodos para a geração de modelos de células autónomas relógio usando não-invasiva, com base em tecnologia de luciferase bioluminescência em tempo real. Células repórter fornecer tratáveis, sistemas modelo funcional para estudar biologia circadiano.

Monitorização das células-autônomas Ritmos relógio circadiano de expressão genética dos Repórteres Bioluminescência luciferase

Este artigo descreve a administração...

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Fonte: Weber, R. Z., et al., Transplante intracerebral e rastreamento de bioluminescência in vivo de células progenitoras neurais humanas no cérebro de camundongos. J. Vis. Exp. (2022)Este vídeo demonstra o método para imagens de bioluminescência in vivo de células progenitoras neurais humanas geneticamente modificadas injetadas em um cérebro de camundongo. O processo envolve injeção de luciferina, preparação de imagens e detecção de sinais bioluminescentes das células transplantadas no local...

Imagem de bioluminescência in vivo de células progenitoras neurais humanas em um cérebro de camundongo

Este protocolo descreve o desenvolvimento, a expansão, e in vivo de imagens de células NK derivadas de hESCs e iPSCs.

Desenvolvimento, expansão e<em&gt; In vivo</em&gt; Monitorização das células NK humanas de células estaminais embrionárias humanas (hESCs) e e induziu células-tronco pluripotentes (iPSCs)

acompanhamento ao vivo de células progenitoras da retina WT individuais em fundos genéticos distintos permite a avaliação da contribuição das células de sinalização não autónomo durante a neurogênese. Aqui, uma combinação de silenciamento de genes, através de transplante de geração quimera embrião e na imagiologia de lapso de tempo in vivo confocal foi utilizada para este propósito.

In vivo de imagens de Gene Transgenic Expressão em Individual Retinal Progenitores em embriões Zebrafish Quimérico para estudar celular Influências não-autônomos

Células de tronco neural/progenitor apresentam várias dinâmicas de expressão de componentes de sinalização notch que levam a diferentes resultados de eventos celulares. Essa expressão dinâmica pode ser revelada pelo monitoramento em tempo real, não pela análise estática, usando um sistema de imagem de bioluminescência altamente sensível que permite a visualização de mudanças rápidas nas expressões gênicas.

Imagens de bioluminescência em tempo real da dinâmica de sinalização de notch durante a neurogênese de Murine

Descrevemos o transplante intraparenquimal de células progenitoras neurais transduzidas com um vetor de repórter duplo expressando proteína fluorescente verde-luciferase (GFP) no cérebro do camundongo. Após o transplante, o sinal de luciferase é repetidamente medido usando bioluminescência in vivo e células enxertadas expressas por GFP identificadas em seções cerebrais usando microscopia de fluorescência.

Transplante intracerebral e rastreamento de bioluminescência in vivo de células progenitoras neurais humanas no cérebro do camundongo

Os ritmos circadianos, que existem na maioria dos organismos, regulam a organização temporal dos processos biológicos. Os organoides 3D surgiram recentemente como um modelo in vitro fisiologicamente relevante. Este protocolo descreve o uso de repórteres bioluminescentes para observar ritmos circadianos em organoides, possibilitando investigações in vitro de ritmos circadianos em sistemas multicelulares.

Monitoramento de oscilações circadianas com um repórter de bioluminescência em organoides

Aprenda a rastrear a proliferação de células-tronco embrionárias humanas in vivo usando técnicas de imagem bioluminescente. Este método permite avaliar de forma não invasiva o comportamento celular após transplante em modelo murino.

In vitro e in vivo de imagens Gene Reporter bioluminescência de células estaminais embrionárias humanas

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