Методическая статья

Данио рерио желудочков мозга инъекций

DOI:

10.3791/1218

6 апреля 2009 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

После нейронных формирование трубки, нейроэпителия сужает и складок в то время как трубка наполняется эмбриональной цереброспинальной жидкости (eCSF) с образованием эмбриональных желудочков мозга. Мы разработали эту технику инъекции желудочка лучше визуализировать заполненных жидкостью пространство в отличие от нейроэпителиальных формы в живой эмбрион.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Правильное формирование желудочка мозга в процессе эмбрионального развития мозга необходимы для нормальной функции мозга. Желудочки мозга хорошо сохранились и полости внутри мозга, которые заполнены спинномозговой жидкости. В данио, после нейронных формирование трубки, нейроэпителия претерпевает ряд перетяжек и складок в то время как он наполняется жидкостью в результате чего мозг формирование желудочка. Для того чтобы понять процесс желудочка формирования и нейроэпителиальных меняет свою форму, которые происходят в то же время, нам нужно способ визуализации желудочка пространства по сравнению с мозговой ткани. Тем не менее, характер прозрачных эмбрионах данио делает его трудно отличить от ткани желудочка пространства. Поэтому мы разработали инъекцию желудочков мозга техники, где желудочка пространство заполнено флуоресцентным красителем и изображено светлое и люминесцентной микроскопии. Светлое и флуоресцентные изображения затем обрабатывается и накладывается в Photoshop. Этот метод позволяет для визуализации желудочка пространство с флуоресцентным красителем, по сравнению с формой нейроэпителия в образе светлого. Мозг желудочка инъекций в данио рерио могут быть использованы с 18 часа после оплодотворения до начала личиночной стадии. Мы использовали этот метод широко в наших исследованиях мозга формирование желудочка и морфогенеза, а также для характеристики мозга морфогенеза мутантов (1-3).

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол

Часть 1: Подготовка к микроинъекции

  1. Подготовка к инъекции, потянув капиллярных игл использованием Саттер инструменты игла съемника.
  2. Заполните игла с флуоресцентной краской (такие как Техас-красный Декстран).
  3. Горы иголку в аппарате микроманипулятора и микроинъекции.
  4. Вырезать иглу соответствующего размера под углом для создания скошенных чаевые.
  5. Измерьте размер капли и убедитесь, что он находится между 1-2nl на инъекцию в масле.

Часть 2: Подготовка эмбрионов

  1. Inject эмбрионов 30 минут раньше, чем этап интерес. Например, для исследования желудочков через 24 часа после оплодотворения (HPF), ввести эмбрионов на 23,5 HPF. Этап эмбрионов в соответствии с Киммел и соавт. (4).
  2. Под стереомикроскопа, осторожно удалите хориона с использованием эмбрионов щипцами.
  3. Использование пластиковых блюдо покрытием с 1% агарозы, ткнуть отверстия в агарозном с пластиковыми 1-200 мкл кончика пипетки. Осторожно снимите агарозном заглушки из отверстий использованием щипцов.
  4. Трансфер эмбрионов в зачаточном состоянии СМИ в блюдо агарозы с отверстиями.
  5. Добавить tricaine (производится в соответствии с Уэстерфилд (5)) к СМИ, чтобы обезболить эмбрионов и предотвратить смещение во время эксперимента.
  6. Аккуратно эмбриона хвостом вниз в дыру, и ориентируем его так, что инъекции аппарата находится на задней стороне эмбриона.

Часть 3: Потребители инъекционных желудочков мозга

  1. Чтобы придать желудочков мозга, организовать микроманипуляция установки так, чтобы кончик иглы находится в том же поле зрения, как эмбрион на высокой мощности.
  2. Осторожно введите иглу через тонкие roofplate заднего мозга только сзади r0/r1 hingepoint, не поражая ткани мозга ниже.
  3. Inject достаточно красителя, чтобы полностью заполнить желудочков. Это может занять несколько инъекций, чтобы заполнить пространство желудочка, в зависимости от стадии эмбриона.

Часть 4: изображений

  1. Используя чистую 1% агарозном покрытием блюдо, тыкать новые дыры в блюдо, удалить пробки, а также добавить к tricaine обезболить эмбрионов и предотвращения движения.
  2. Место хвост желудочка впрыском эмбриона в отверстие и положение для спины изображения.
  3. Возьмите изображения с помощью проходящего света.
  4. Это очень важно не двигаться эмбриона или микроскоп.
  5. Изменение параметров микроскопа и принимать изображения с флуоресцентным светом.
  6. Изменение положения эмбриона принять боковые изображения с обеих проходящем свете и флуоресцентного света.
  7. Сохранить изображение в виде файлов формата TIFF для обработки изображений в Photoshop.

Часть 5: Обработка изображений

  1. Для обработки изображений в Photoshop, откройте проходящего света и дневного света изображений одного эмбриона, принятых в том же положении. Будьте уверены, все настройки те же для каждого изображения.
  2. Перетащите флуоресцентные изображения на проходящем свете изображения и выстроить их точно.
  3. С флуоресцентное изображение выбрано, выберите "Изображение", "Корректировка", а затем "Заменить цвет" и изменить черный фон на белый.
  4. В "Заменить цвет" окна настройки "размытости" фактор, вплоть до флуоресцентных изображений выглядит однородным по цвету.
  5. В "Слои" окно, выберите "Multiply", чтобы просмотреть наложения изображений. Ваш желудочка пространстве изображения должны соответствовать передаваемого изображения свет точно.
  6. Сохраните этот файл и повторите для любых других изображений.

Представитель Результаты / Результаты

Правильное желудочка изображения инъекции показано на рисунке 1 панелей н.э., в то время как пример некорректного изображения инъекции показаны на ЕН. Правильное инъекции имеют острые края и не диффузный красителя. Неправильное инъекции, которая возникает, когда игла вводится слишком далеко в желудочке и хитов мозговой ткани ниже, может привести к краситель, который виден за пределами желудочка пространстве и в желтке.

figure-protocol-1

Рисунок 1. Желудочка инъекций 25 HPF диких эмбрионов типа. (AD) Правильный метод инъекции и (EH) неправильным методом инъекции приведены в качестве примеров. (А, Е) Спинной образы светлого с соответствующими флуоресцентные изображения (B, F) и наложение люминесцентных и светлого изображения (C, G) и для правильного и неправильного инъекционные методы показано на рисунке. Стрелками указаны регионы, где краситель вышел за пределы пространства желудочков мозга из-за неправильной инъекции желудочка (см. "Устранение неисправностей"). Передняя находится слева на всех изображениях.

Устранение неполадок:

Проблема Вызывать Средство
Вы давя эмбриона с иглой. Ваша игла слишком тупой или наконечник слишком велик. Начните с новой иглой и не разбить его, как далеко назад. Bevel иглу, чтобы сделать его резким, как иглы шприца.
Краситель всей эмбриона и желтком (см. рис 1E-H). Ваша игла прошла через ткань и не остался в желудочке пространства. Ваша игла не может быть достаточно острым, так что вы не в состоянии контролировать скорость прокола.
Краситель слишком слабы или не в переднем мозге. Вы не использовали достаточно высокого давления для инъекций, или ваша игла не была достаточно далеко впереди достигают переднего мозга, когда вы вводили краситель. Повысьте давление впрыска или разместить иглу чуть более передним во время инъекции. Вы можете поставить иглу через средний мозг, задний мозг границе, если более подробно, что требуется в переднем мозге. Вы также можете просто подождать немного для красителя дальнейшего диффузной до визуализации.
Ваш флуоресцентные изображения темные по краям после замены цветов в Photoshop. Вы забыли изменить "размытости" настройки в окне заменить цвет. Перемещение "размытости" вплоть до прямо в окне заменить цвет.
Игла не будет прокол заднего мозга roofplate. Ваша игла не вырезано должным образом. Сделать новую иглу. Если вы делаете много инъекций вам может понадобиться несколько игл, как они могут получить скучно.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом видео показано, как вводить флуоресцентного красителя (Техас-красный декстрана) в развивающиеся данио желудочков мозга. Этот метод используется для визуализации пространства желудочков мозга в отличие от окружающих нейроэпителия и является чрезвычайно полезным для определения формы желудочка пространства, а также форма окружающие ткани. Это позволяет нам лучше понять процесс образования мозга и желудочки мозга морфогенеза с течением времени в живых эмбрионов. Эта техника является превосходным инструментом для изу...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы хотели бы поблагодарить Лаура Энн Лоури, который разработал эту технику в лаборатории. HS поддерживается NIHMH70926. Дженнифер Gutzman была поддержана CSBI / Merck докторской стипендии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
ЩипцыИнструментFine Science Tools11252-20
Капиллярные трубки (иглы)ИнструментыFrederick Haer and Co.30-30-1
Посуда с агарозным покрытиемИнструментыAgarose (Seakem GTG; Lonza) Посуда (Corning)Агароза (50027) Посуда (430166)Сделайте агарозу примерно на 2-3 мм вглубь чашки, в зависимости от стадии эмбриона, в которую вы вводите
Микроскоп для препарированияCarlZeiss, Inc.
Камера для микроскопа с функцией флуоресценции и программным обеспечением для захвата изображенийTools
1-200 и наконечниками для пипетокToolsСША Scientific, Inc.1111-0806Это идеальный размер, чтобы проделать отверстия в агарозе и обеспечить идеальную посадку эмбрионов.
PhotoshopАнализ изображенийAdobe
Embryo LoopTools Сделайтеих самостоятельно с помощью стеклянной пипетки и волосяной или лески и запечатайте пчелиным воском.
Инструменты для микроинъекторовHarvard ApparatusPL1-100
Needle PullerToolsSutter Instrument Co.Настройки (Heat 785, Pull 70, Velocity 40, Time 70).
Инструменты для микроманипулятораNarishige Международный
флуоресцентный краситель Texas-Red Dextran 70 000 МВтРеагентныемолекулярные зонды, Life TechnologiesD1830Другие молекулярные массы доступны при желании.
Трикаин (этиловый эфир 3-аминобензойной кислоты)РеагентSigma-AldrichA-5040
Реагентдля эмбриональных средпо Вестерфилду (5)

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gutzman, J. H. Formation of the zebrafish midbrain-hindbrain boundary constriction requires laminin-dependent basal constriction. Mech. Dev. 125, 974-983 (2008).
  2. Lowery, L. A. Characterization and Classification of Zebrafish Brain Morphology Mutants. Anat. Rec. (Hoboken). 292, 94-106 (2009).
  3. Lowery, L. A., Sive, H. Initial formation of zebrafish brain ventricles occurs independently of circulation and requires the nagie oko and snakehead/atp1a1a.1 gene products. Development. 132, 2057-2067 (2005).
  4. Kimmel, C. B. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  5. Westerfield, M. The Zebrafish Book: A guide for the laboratory use of zebrafish. , University of Oregon Press. (1995).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Zebrafish Brain VentricleBrain Ventricle InjectionFluorescent Dye InjectionVentricle Space VisualizationNeuroepithelium MorphogenesisMicroinjection ApparatusFluorescent MicroscopyImage Processing PhotoshopEmbryo Staging ProcedureHindbrain Injection Site

Похожие статьи