Методическая статья

Слоистый монтаж агара: подготовка живых эмбрионов данио-рерио к долговременной визуализации с помощью инвертированного микроскопа

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Upadhyay S., et.al. Метод многослойного монтажа для длительной покадровой конфокальной микроскопии целых эмбрионов данио-рерио. J. Vis. Exp. (2020).

В этой статье описывается метод монтирования живых эмбрионов данио-рерио для долгосрочной визуализации. Этот метод является экономически эффективным и простым в выполнении с использованием обычных микроскопических чашек со стеклянным дном для визуализации на инвертированном микроскопе. Монтаж производится слоями агарозы в разной концентрации.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка эмбрионов

  1. После спаривания соберите эмбрионы в E3 в чашке Петри и инкубируйте их при температуре 26,5 °C в течение примерно 28 часов перед посадкой.
    заметка: Это замедляет развитие эмбрионов, так что в начале визуализации эмбрионы находятся примерно на стадии 30 сомитов.
  2. Обезболить эмбрионы в 0,016-0,020% трикаином в Е3. Чтобы подавить пигментацию, добавьте ПТУ в концентрации 200 мкМ.
  3. Дехорионировать эмбрионы с помощью щипцов под препарирующим микроскопом. С помощью двух щипцов возьмитесь за хорион и аккуратно раздвиньте его, чтобы освободить эмбрион.

2. Монтаж в агарозе

ПРИМЕЧАНИЕ: Разработанный метод монтажа требует двух разных концентраций низкоплавкой агарозы в E3 с 0,02% трикаина и PTU по мере необходимости. Первый раствор агарозы содержит оптимальную концентрацию агарозы, при которой искажение и подвижность минимальны. Оптимизация описана в шаге 5 ниже.

  1. Нагрейте агарозные растворы для двух слоев (концентрация, определенная на шаге 5 ниже, и 1%) до 65 °C. Дайте агарозе остыть примерно до 30 °C непосредственно перед посадкой, чтобы эмбрион не пострадал от тепла. Для монтажа используйте посуду со стеклянным дном 35 мм с крышкой No 0 стеклянным дном. Покровное стекло, прикрепленное к дну посуды, создает неглубокий углубление 10 мм (глубиной около 1,2 мм), в которое будет помещен эмбрион.
    заметка: В этом случае концентрация с наименьшей подвижностью и искажениями составляла от 0,025 до 0,040% агарозы.
  2. Аккуратно поместите дехорионизированный эмбрион одной из его боковых сторон к дну чашки с помощью стеклянной пипетки или микропипетки. Если вы используете микропипетку, разрежьте внешнюю часть наконечника, чтобы увеличить размер отверстия в соответствии с размерами эмбриона (рисунок 1A). Осторожно удалите остатки E3 с помощью микропипетки.
  3. Добавьте первый раствор агарозы в небольшое углубление, созданное покровным стеклом, прикрепленным к дну посуды, чтобы покрыть зародыш (слой 1) (рисунок 1B). Следите за тем, чтобы агароза закрывала маленькую лунку, но не переполняла ее.
  4. Накройте маленькую лунку покровным стеклом (22 мм x 22 мм) (Рисунок 1C), чтобы создать узкое заполненное агарозой пространство с зародышем между двумя покровными стеклами.
  5. Нанесите слой 1% раствора агарозы поверх покровного стекла по всему дну посуды (слой 2) (рисунок 1D). По мере затвердевания этого слоя он удерживает покровное стекло на месте.
  6. Наполните оставшуюся часть чашки веществом E3, содержащим 0,02% трикаина, чтобы поддерживать водный баланс в организме (слой 3) (рисунок 1E).
    заметка: В этой конфигурации покровное стекло и 1% агароза защищают нижний слой от разбавления.

3. Оптимизация агарозного раствора для слоя 1

  1. Чтобы определить оптимальную концентрацию агарозы для слоя 1, используйте подход многомасштабного сеточного поиска. Монтируют эмбрионы в возрастающих концентрациях агарозы в диапазоне от 0,01% до 1% с последующей покадровой визуализацией ограничения роста и подвижности эмбрионов в поле зрения. Определите концентрации, при которых искажение и подвижность минимальны.
  2. Для дальнейшей оптимизации концентрации агарозы зародыши используют более тонкий диапазон концентраций агарозы (например, от 0,025 до 0,040% агарозы) в зависимости от концентрации, которая оказалась наилучшей на стадии 3.1 (например, 0,025%, 0,028%, 0,031% и т.д.).
    заметка: В нашей лаборатории оптимальная концентрация агарозы составляла около 0,03%.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Рисунок 1: Описание способа монтажа. (А) Добавьте эмбрион данио-рерио в маленькое углубление, созданное стеклянным дном в чашке диаметром 35 мм. (Б) Добавьте слой агарозы 1 в маленькую лунку, чтобы покрыть эмбрион. (C) Осторожно поместите покровное стекло на маленькую лунку. (D) Добавьте слой агарозы 2 на все дно формы диаметром 35 мм. (E) Добавьте E3 в блюдо. (F) Схематический чертеж поперечного сечения монтажной устано...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Легкоплавкая агарозаСигма-Олдрич, МиссуриА9414Хранить растворенный раствор при температуре 4 °C
Посуда со стеклянным дном 35 мм с защитным колпачком No 0 и диаметром стеклянного дна 10 ммКорпорация MatTek, МассачусетсP35GCOL-0-10-С
Трикаин (MS-222)Сигма-Олдрич, МиссуриЕ10521Хранить растворенный раствор при температуре 4 °C
N-фенилтиомочевина (ПТУ)Сигма-Олдрич, МиссуриП7629Хранить растворенный раствор при температуре -20 °C
DMC4500 цифровой микроскопЛейкаNA
Микрозащитное стекло 22x22 мм ВВР48366 067

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

PTU

Похожие статьи