Это видео описывает оптогенетические методы активации генетически модифицированных соматосенсорных нейронов и записи вызванных поведенческих реакций с помощью высокоскоростной видеокамеры.
Protocol
1. Монтирование личинок для экспериментов по поведению
Приготовьте агарозу с низким содержанием плавления 1,5% в ddH2O и храните в нагревательном блоке при температуре 42 °C, чтобы предотвратить его затвердевание.
С помощью стеклянной пастеровской пипетки перенесите одну из предварительно отсеянных личинок в пробирку с 1,5% низкоплавкой агарозой с минимальным количеством синей/зародышевой воды.
Перенесите личинок в капле агарозы на небольшую чашку Петри.
Под препарирующим микроскопом расположите личинку спинным ходом вверх.
Когда агароза застынет, отрежьте агарозу тонким бритвенным лезвием (скальпель #11), оставив клин агара вокруг всей личинки.
Сделайте два диагональных надреза по обе стороны от желтка; следите за тем, чтобы не поцарапать личинку.
Заполните область вокруг агарозы зародышем/голубой водой.
Вытяните агарозу в сторону от туловища и хвоста личинки (рисунок 1).
2 . Подготовка высокоскоростной камеры и программного обеспечения для обработки изображений
Установите высокоскоростную камеру на препарирующий прицел.
Подключите камеру к компьютеру.
Включите компьютер.
Включите высокоскоростную камеру.
Откройте программное обеспечение для работы с видео/изображениями (Мы используем программное обеспечение для работы с изображениями AOS и опишем процедуры его использования здесь, но другое программное обеспечение для обработки изображений также приемлемо).
Отрегулируйте настройки камеры соответствующим образом (т.е. 1 000 кадров в секунду (кадров в секунду), 50% буфер триггера или другие предпочтительные настройки).
Начните запись.
3. Активируйте одиночные нейроны с помощью лазера с длиной волны 473 нм
Подключите стимулятор, лазер и оптический кабель.
Включите стимулятор.
Установите стимулятор на максимум 5 Вольт и длительность импульса 5 мс.
Включите лазер в соответствии с инструкцией производителя.
С помощью препарирующего микроскопа расположите кончик оптического кабеля рядом с клеточным телом нейрона с экспрессией ChEF-tdTomato (рис. 1).
Подайте импульс синего света для активации сенсорных нейронов.
Записывайте поведение с помощью высокоскоростной камеры со скоростью 500 или 1 000 кадров в секунду.
Повторяйте эксперимент по желанию, подождая 1 минуту между каждой активацией, чтобы избежать привыкания. (Мы записываем как минимум три реакции для каждого нейрона).
Чтобы выпустить личинок, подденьте щипцами агарозу, стараясь не травмировать животное. Этому животному можно позволить развиваться дальше, и процедуру можно повторить на более ранней стадии, чтобы охарактеризовать развитие поведения. Эмбрион также может быть повторно установлен для конфокальной визуализации активированной клетки с высоким разрешением, чтобы коррелировать поведение с клеточной структурой, как описано ниже.
Перенесите личинку в культуральную тарелку со свежей голубой/эмбриональной водой. Мы используем 24-луночный планшет для отслеживания отдельных личинок.
Representative Results
Materials
Low Melt agarose
Sigma
A9045
or equivalent
Petri dish (100×15 mm)
Any
Any
Non-Sterile scalpel blades
Fine Scientific Tools, Inc.
10011-00
or equivalent
blue/embryo water
10 L ddH2O 0.6 g Instant Ocean 6 drops methylene blue
High speed camera
AOS Technologies, Inc.
X-PRI (130025-10)
or equivalent
Glass Pasteur pipette
Fisher
1367820B
or equivalent (10-15 mm diameter)
473 nm portable laser
Crystal lasers
CL-473-050
or higher power, with TTL option
S48 Stimulator
Astro-Med, Inc. Grass Instrument division
S48K
or equivalent
Tricaine
Sigma
A5040
200 μm optic fiber
ThorLabs
AFS200/220Y-CUSTOM
Patch Cord, Length: 3 m, End A: FC/PC, End B: FC/PC, Jacket: FT030
50 μm optic fiber
ThorLabs
AFS50/125Y-CUSTOM
Patch Cord, Length: 3 m, End A: FC/PC, End B: FC/PC, Jacket: FT030