Методическая статья

Децеллюляризация жировых пакетов молочных желез: получение гидрогелей с внеклеточным матриксом из жировых пакетов молочных желез

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Alves et al., Изучение эффектов облучения нормальных тканей с использованием гидрогелей с внеклеточным матриксом. J. Vis. Exp. (2019).

Это видео описывает технику получения гидрогелей внеклеточного матрикса путем децеллюляризации мышиных жировых пакетов молочной железы после облучения ex vivo для исследований in vitro. Этот гидрогель помогает имитировать среду тканей молочной железы in vivo после лучевой обработки для изучения поведения опухолевых клеток.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Децеллюляризация

ПРИМЕЧАНИЕ: Эта процедура была адаптирована из ранее опубликованных методов, ориентированных на децеллюляризацию жировой ткани, которые включали ионное детергентное средство дезоксихолата натрия, а не додецилсульфат натрия для эффективного удаления ДНК.

  1. В 1-й день снимите замороженные жировые прокладки или МФУ с температурой -80 °C и разморозьте при комнатной температуре.
  2. После оттаивания кратковременно высушите МФУ на деликатной рабочей салфетке. Взвесьте МФУ с помощью аналитических весов.
  3. С помощью щипцов с ножницами или скальпелем разделите ткань на образцы размером 3 мм x 3 мм x 3 мм для исследования неповрежденного ECM и оставшейся ткани для производства гидрогеля><. заметка: Количество образцов зависит от количества методов тестирования, например, ниже описан сбор двух образцов: один для заделки парафина (шаг 1.5) и один для замораживания в криостатной среде для заделки, если это необходимо (см. Таблицу материалов и шаг 1.6).
  4. Взвесьте ткани. При заделке в парафин для сруба перейдите к шагу 1.5. При замораживании в криостате закладной среды для разреза перейдите к шагу 1.6.
  5. В химическом колпаке погрузите ткань в 10% нейтральный буферизованный формалин (NBF) (см. Таблицу материалов) на 24 часа при 4 °C. Промойте 3 раза в PBS по 5 минут каждый. Погрузите ткань в 30% сахарозу на 48 часов при температуре 4 °C.
    1. Взвесьте ткань теперь, когда этот кусок был удален. Перейдите к шагу 1.6.
  6. Поместите детали МФУ в химическую вытяжку в кассету с маркировкой, подготовленную криостатной средой для встраивания. Добавьте еще криостатную среду для встраивания, чтобы покрыть ткань.
    1. Поместите кассету в стакан с 2-метилбутаном (см. Таблицу материалов), который предварительно охлаждается жидким азотом. В стакане должно быть достаточно 2-метилбутана, чтобы покрыть дно, но недостаточно для погружения кассеты, потому что закладочная среда криостата не должна касаться 2-метилбутана. Дайте кассете постоять в 2-метилбутане до тех пор, пока среда для встраивания криостата не замерзнет и не станет непрозрачной.
    2. Заверните кассету (кассеты) в фольгу, наклейте этикетку и оставьте при температуре -80 °C до тех пор, пока она не будет использована для секционирования.
      заметка: Ткани, помещенные непосредственно в среду для встраивания криостата, были срезаны с температурой 5 мкм, в то время как ткани, инкубированные в сахарозе, были срезаны с точностью до 30 мкм для сохранения морфологии адипоцитов.
  7. С помощью щипцов вручную массируйте оставшиеся ткани.
    заметка: Кусочки салфетки также могут быть помещены в 10% NBF на 24–48 часов, промыты в PBS и оставлены в 70% этаноле до погружения в парафин. После встраивания можно использовать срезы размером 5 мкм для окрашивания гематоксилином и эозином (H & E) (см. раздел 2 ниже).
  8. Поместите МФУ в посуду по 6 см с 5 мл 0,02% трипсина/0,05% раствора ЭДТА. Выдерживать при 37 °C в течение 1 ч. Распылите и протрите посуду 70% этанолом перед помещением в инкубатор.
  9. Используйте фильтры 0,7 мм для промывки МФУ деионизированной (DI) водой, трижды вылив воду на ткань. Используйте щипцы для ручного массажа ткани между мытьем.
  10. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте. Поместите салфетки в предварительно автоклавный стакан, содержащий мешалку соответствующего размера. Насыпьте салфетки 60 мл 3% t-октилфеноксиполиэтоксиэтанола (см. Таблицу материалов) на 1 г ткани и перемешивайте в течение 1 ч при комнатной температуре. Используйте минимум 20 мл.
  11. Слейте салфетку и содержимое в ситечко. Промойте стакан водой DI и вылейте на салфетки. Повторите еще два раза. Используйте щипцы для ручного массажа ткани между полосканиями.
  12. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте. Поместите салфетки и перемешайте батончики обратно в те же стаканы, и залейте 60 мл 4% дезоксихолевой кислоты на 1 г ткани. Перемешивайте в течение 1 часа при комнатной температуре. Используйте минимум 20 мл.
  13. Слейте салфетку и содержимое в сетчатое ситечко. Промойте стакан водой DI и вылейте на салфетки. Повторите еще два раза. Используйте щипцы для ручного массажа ткани между полосканиями.
  14. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте.
  15. Поместите салфетки в тот же стакан с пресной деионизированной водой с добавлением 1% пенициллин-стрептомицина. Плотно накрываем парафиновой пленкой. Оставьте на ночь при температуре 4 °C.
  16. Вымойте ситечки и стаканы для использования на следующий день.
  17. На 2-й день слейте содержимое стакана в ситечко. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте.
  18. Поместите МФУ в одну и ту же мензурку с мешалкой соответствующего размера. Налейте 60 мл 4% раствора этанола/0,1% надуксусной кислоты на 1 г ткани. Используйте минимум 20 мл. Перемешивайте в течение 2 часов при комнатной температуре.
  19. Слейте салфетку и содержимое в ситечко толщиной 0,7 мм. С помощью щипцов вручную массируйте ткани. Поместите содержимое обратно в стакан. Промойте салфетку, накрыв ее 60 мл 1x PBS на 1 г салфетки. Используйте минимум 20 мл. Перемешивайте 15 минут при комнатной температуре. Повторите один раз.
  20. Слейте салфетку и содержимое в ситечко толщиной 0,7 мм. С помощью щипцов вручную массируйте ткани. Переложите содержимое обратно в стакан. Промойте салфетку, покрыв ее 60 мл деионизированной воды на 1 г салфетки. Используйте минимум 20 мл. Перемешивайте 15 минут при комнатной температуре. Повторите один раз.
  21. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте. Слейте салфетку и содержимое в ситечко. С помощью щипцов вручную массируйте ткани.
  22. Переложите содержимое обратно в стакан. Покройте ткани 60 мл 100% н-пропанола на 1 г ткани. Используйте минимум 20 мл. Перемешивайте в течение 1 часа при комнатной температуре.
  23. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте. Слейте салфетку и содержимое в ситечко толщиной 0,7 мм. С помощью щипцов вручную массируйте ткани.
  24. Переложите содержимое обратно в стакан. Промойте салфетку, покрыв ее 60 мл деионизированной воды на 1 г салфетки. Используйте минимум 20 мл. Перемешивайте 15 минут при комнатной температуре. Повторите три раза.
  25. Слейте салфетку и содержимое в ситечко. Повторите шаги 2.3–2.6 для сбора кусочков ткани для инкубации сахарозы и замораживания в среде для закладки криостата.
  26. Коротко просушите ткань на деликатной работе, протрите и взвесьте. Поместите в пробирку объемом 15 мл с маркировкой. Заморозьте до -80 °C на ночь.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
10% нейтральный буферизованный формалин, кубик с краном ВВР16004-128
2-метилбутан Альфа Аэсар19387
Бычий сывороточный альбумин Сигма-ОлдричА1933-25Г
Фосфатно-солевой буфер Дульбекко Gibco14040133
Fisher Healthcare Tissue-Plus O.C.T. Compound Научный центр Фишера Тел.: 23-730-571Среда для встраивания криостата
Кимтех Наука Кимвайпс Кимберли КларкДеликатные салфетки для работы
n-пропанол (без перекиси/ секвенирование), биореагенты Fisher Научный центр ФишераБП1130-500
PBS (10X), pH 7,4 Quality Biological, Inc.Тел.: 119-069-151 Фосфатно-солевой буфер
Пенициллин-стрептомицин Gibco15140-122
Надуксусная кислота Сигма-Олдрич 77240-100МЛ
Тритон х-100 Сигма-Олдрич Х100-100МЛ т-октилфеноксиполиэтоксиэтанол
Трипсин-ЭДТА (0,25%), фенол красный GibcoNo 25200-056
Ричард-Аллан Scientific Signature серия гематоксилин 7211Ричард-Аллан Сайентифик7211
Ватман качественная фильтровальная бумага, 4 сорт ватман 1004-110Качественная фильтровальная бумага 4 класса
Ксилолы (сертифицированные ACS), Fisher Chemical Научный центр ФишераХ5-5
г.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Triton X 1001

Похожие статьи