Методическая статья

Приготовление образцов опухолей, залитых формалином и парафином: протокол сохранения образцов тканей и цитологических образцов немелкоклеточного рака легкого (НМРЛ)

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Ilié, M., et al. Использование концентрата антител 22C3 Anti-PD-L1 на биопсийных и цитологических образцах пациентов с немелкоклеточным раком легкого.J. Vis. Exp. (2018).

Этот протокол описывает подготовку образцов опухолей, встроенных в парафин с фиксированным формалином, которые используются для сохранения образцов тканей и цитологических образцов немелкоклеточного рака легкого (НМРЛ)

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Подготовка образцов опухолевой ткани

  1. Фиксация опухолевой ткани в 10% нейтральном буферном формалине (НБФ) в кассете.
    заметка: Опухолевая ткань из проксимальных опухолей легких обычно получают с помощью бронхоскопии, выполняемой под умеренной седацией пульмонологом или специалистом по легким. При периферических поражениях и диффузных заболеваниях легких показана трансбронхиальная или игольчатая биопсия. Эти процедуры обычно проводятся в операционной или отделении интенсивной терапии.
  2. Встроить кассету в парафин.
    заметка: Фиксация может быть достигнута путем перфузии или погружения сразу после диссекции и обычно занимает 8–10 часов. Фиксирующий объем должен быть в 15–20 раз больше объема образца. Не рекомендуется фиксировать биопсию ткани более чем на 10 ч, поскольку чрезмерная фиксация может вызвать маскировку антигена. Скорость фиксации составляет около 1 мм/ч при комнатной температуре.
  3. Проникните в неподвижный образец ткани с помощью воска в тканевый процессор (см. Таблицу материалов).
    заметка: Обезвоживание проводится в трех спиртовых ваннах с увеличением концентраций 70%, 85% и 90%. Вода окончательно удаляется тремя заключительными ваннами с абсолютным спиртом. Очищение проводится в трех ваннах с толуолом, а инфильтрация воска – в ваннах с горячим воском (44–60 °C).
  4. Вставьте ткань в форму, заполненную расплавленным парафином (см. Таблицу материалов) и дождитесь застывания.
  5. Разрез залитой парафином ткани толщиной 3 мкм на микротоме.
  6. Перенесите парафиновую ленту на положительно заряженное предметное стекло микроскопа (см. Таблицу материалов).
  7. Высушите предметное стекло в течение 1 часа при температуре 37 °C.
    Примечание: Храните срезы ткани при температуре 2–8 °C (предпочтительно) или при комнатной температуре до 25 °C для сохранения антигенности и окрашивания в течение 15 дней после среза.

2. Подготовка цитологических образцов

  1. Соберите бронхиальные промывки в консервирующий раствор (см. Таблицу материалов).
    заметка: Для этого используется стандартная бронхоскопическая методика.
    1. Промывайте распределение бронхов, из которых берется проба. Соберите средства для стирки в чистую емкость. Наклейте на контейнер этикетку, указав имя и фамилию пациента, дату рождения и источник образца.
  2. Переложите бронхиальные промывки в коническую пробирку объемом 50 мл и добавьте 2 г порошка DL-дитиотреитола (см. Таблицу материалов), переведите пробирку в течение 30 минут, а затем центрифугируйте при 250 х г в течение 5 минут при комнатной температуре.
  3. Удалите надосадочную жидкость и добавьте 10 мл муколитического раствора (см. Таблицу материалов).
  4. Встряхните образец в течение 20 минут на средней скорости (уровень 9) и центрифугируйте его при 250 x g в течение 5 минут при комнатной температуре.
  5. Удалите надосадочную жидкость и поместите клеточную гранулу в пробирки для сбора, содержащие 10% ТБЧ.
  6. Добавьте 4 капли реагента для подготовки клеточного блока (см. Таблицу материалов) в клеточную гранулу.
  7. Перенесите клеточную гранулу в кассету, зафиксируйте ее в 10% NBF и загрузите парафином для подготовки и разрезания клеточного блока (см. шаги 1.1–1.7).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
НоваПреп HQ1НовацитNAКонсервирующий раствор для
Цитологические препараты
Новапреп® HQ+ BНовацитNAМуколитический раствор
Салфетка-Тек ВИП 6Сакура6042 VIP 6
Tissue-Tek TEC 5 Ткань<бр /> Встраиваемая консольная системаСакура5229 ТЭК 5
Предметное стекло микроскопа
СуперФрост Плюс
Thermo Fisher Scientific4951ПЛЮС4
DL-порошок дитиотреитолаСигма-ОлдричД3801
Heidolph Multi Reax Вихревой шейкерThermo Fisher ScientificТел.: 13-889-410
Цитоблок ШандонаThermo Fisher Scientific7401150

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Formalin Fixed Paraffin EmbeddedTissue Sample PreparationCytology Sample ProcessingNon Small Cell Lung CancerBronchial Wash CytologyDL Dithiothreitol TreatmentMucolytic Solution LiquefactionCell Block PreparationParaffin Wax EmbeddingMicrotome Sectioning

Похожие статьи