Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Обнаружение АФК с помощью окрашивания DCFH-DA: Измерение общего АФК в клеточных линиях колоректального рака

5.8K просмотров

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Kim, H., et al. обнаружение общих активных форм кислорода в адгезивных клетках путем окрашивания 2',7'-дихлордигидрофлуоресцеином диацетата. J. Vis. Exp. (2020).

Это видео описывает протокол определения общего количества активных форм кислорода (АФК) в клетках с использованием диацетата 2',7'-дихлордигидрофлуоресцеина (DCFH-DA). Этот метод позволяет визуализировать локализацию АФК в адгезивных клетках с помощью флуоресцентного микроскопа и в дальнейшем количественно оценить интенсивность АФК с помощью считывателя флуоресцентных пластин

.

Протокол

1. Посев клеток

  1. Засейте 2 x 105 клеток колоректального рака HCT116 в лунку в 24-луночный планшет и поддерживайте клетки в модифицированной среде Dulbecco Eagle (DMEM) в течение ночи при температуре 37 °C.
  2. Замените питательную среду средой, содержащей 100 мкМ сульфат железа (ФС) или 10 мкМ доксорубицин (ДОКС), или без таковой и инкубируйте в течение 24 ч.

2. Подготовка решения DCFH-DA

  1. Растворите 4,85 мг DCFH-DA в 1 мл диметилсульфоксида (ДМСО) до получения 10 мМ исходного раствора.
  2. Разбавить исходный раствор предварительно подогретым DMEM в рабочий раствор с концентрацией 10 мкМ непосредственно перед добавлением в лунки.
  3. Вихревой рабочий раствор в течение 10 с.

3. Окрашивание DCFH-DA

  1. Удалите содержащую препарат среду и умойтесь один раз DMEM.
  2. Добавьте 500 μL рабочего раствора DCFH-DA в каждую лунку и инкубируйте при 37 °C в течение 30 минут.
  3. Снимите рабочий раствор DCFH-DA. Умойтесь один раз с DMEM и 2x с 1x фосфатно-солевым буфером (PBS).
  4. Добавьте 500 мкл 1x PBS в каждую лунку.

4. Получение изображений и измерение интенсивности

  1. Сделайте репрезентативные флуоресцентные изображения для каждой лунки с помощью канала зеленого флуоресцентного белка (GFP) на флуоресцентном микроскопе.
  2. После получения изображений удалите PBS и добавьте 200 мкл буфера для радиоиммунопреципитации (RIPA) в каждую лунку.
  3. Инкубировать на льду в течение 5 минут, затем собрать лизат клеток в пробирки объемом 1,5 мл.
  4. Центрифуга при 21 130 x g в течение 10 мин при 4 °C.
  5. Перенесите 100 мкл надосадочной жидкости на черный 96-луночный планшет и измерьте интенсивность флуоресценции с помощью флуоресцентного микропланшетного ридера с длиной волны возбуждения 485 нм и длиной волны излучения 530 нм.
  6. Перенесите 1 мкл надосадочной жидкости в прозрачный 96-луночный планшет, содержащий 100 мкл 1x раствора для анализа белка, чтобы измерить концентрацию белка с помощью анализа Брэдфорда.
  7. Нормализуйте интенсивность флуоресценции с концентрацией белка.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
2',7'-дихлорфлуоресцеина диацетатCayman Chemical, Анн-Арбор, МичиганNo 20656
Доксорубицина гидрохлоридTCI America, Портленд, ОрегонД4193-25МГ
Модифицированный Eagle Medium от DulbeccoCorning, Корнинг, Нью-Йорк45000-304
Система автоматической визуализации Invitrogen EVOS FLThermo Fisher Scientific Уолтем, МассачусетсAMAFD1000или любой другой флуоресцентный микроскоп
Анализ белка раствором БрэдфордаBio-Rad, Геркулес, Калифорния5000001
Считыватель микропланшетов SpectraMax M2Молекулярные приборы, Раднор, Пенсильвания89429-532или любой другой флуоресцентный микропланшетный ридер
Гептагидрат сульфата железаVWR, Раднор, Пенсильвания97061-542

Теги