Методическая статья

Претаргетная радиоиммунотерапия: метод адресной доставки терапевтических радионуклидов в опухоли

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Membreno, R., et al. Претаргетная радиоиммунотерапия на основе обратной реакции Дилса-Альдера на основе обратного спроса на электроны. J. vis. Exp. (2019).

Это видео описывает технику претаргетной радиоиммунотерапии или PRIT, в которой иммуноконъюгаты с последующими радиолигандами вводятся для лечения опухолей. Эта радиоиммунотерапия снижает дозы облучения здоровых тканей и использует радионуклиды с очень низким периодом полураспада, несовместимые с векторами на основе антител.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными, были проверены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным наблюдательным советом JoVE.

1. Приготовление huA33-TCO

ПРИМЕЧАНИЕ: Ранее сообщалось о синтезе huA33-TCO. Тем не менее, для удобства читателя, он воспроизведен здесь с поправками на оптимальные условия.

  1. В микроцентрифужной пробирке объемом 1,7 мл приготовьте 125 мкл раствора (E)-циклоокт-4-енил2,5-диоксо-1-пирролидинилкарбоната (TCO-NHS) в сухом диметилформамиде (DMF) в концентрации 40 мг/мл (0,15 М). Этот раствор может быть аликвотирован и заморожен при -80 °C для использования в будущих экспериментах.
  2. В отдельной микроцентрифужной пробирке объемом 1,7 мл приготовьте раствор huA33 в дозе 5 мг/мл в 1 мл фосфатно-солевого буфера (PBS; 2,7 мМ хлорида калия, 137 мМ хлорида натрия и 11,9 мМ фосфата калия, pH 7,4).
  3. Используя малые аликвоты (<5 μл) 0,1 М Na2CO3, отрегулируйте pH раствора антитела от Шага 1,2 до 8,8-9,0. Используйте бумагу для измерения pH или рН-метр с микроэлектродом для контроля рН и следите за тем, чтобы рН не превышал 9,0.
  4. К раствору антитела, описанному в шаге 1.3, медленно добавляют объем, соответствующий 40 молярным эквивалентам TCO-NHS по отношению к количеству антитела. Например, если в растворе содержится 5 мг (30 нмоль) huA33, добавьте 9,0 мкл (1,20 мкмоль) из 40 мг/мл (0,15 М) раствора TCO-NHS.
    заметка: TCO-NHS является гидрофобной. При добавлении его в раствор антитела добавляйте медленно и с перемешиванием, чтобы не допустить выпадения осадка. Не превышайте 10% DMF по объему в конечном реакционном растворе.
  5. Дайте реакции инкубироваться при 25 °C на термомиксере в течение 1 ч при слабом перемешивании (500 об/мин).
  6. Через 1 ч очистите иммуноконъюгат huA33-TCO с помощью предварительно упакованной одноразовой обессоливающей колонки для исключения размера.
    1. Уравновесьте столбец исключения размера в соответствии с описанием поставщика, чтобы удалить все консерванты, присутствующие в столбце во время хранения. Типичная процедура предполагает промывку колонки 5 раз объемом PBS, который соответствует объему колонки: 5 x 2,5 мл PBS.
    2. Добавьте реакционную смесь в столбец исключения размера, отметив объем реакционной смеси.
    3. После того, как реакционная смесь поступила в колонку, добавьте соответствующее количество PBS, чтобы довести общий объем раствора, добавляемого в колонку, до 2,5 мл. Например, если в результате реакции конъюгации общий объем составил 1,3 мл, добавьте в колонку 1,2 мл дополнительного PBS.
    4. Соберите продукт, используя 2 мл PBS в качестве элюента.
      заметка: На этом этапе будет получена окончательная конструкция huA33-TCO в 2 мл PBS, pH 7,4.
  7. Измерьте концентрацию huA33-TCO с помощью УФ-ВИД спектрофотометра, контролирующего длину волны 280 нм. Молярный коэффициент экстинкции для большинства IgG (ε280) составляет 210 000 М-1 см-1.
  8. Если требуется раствор с более высокой концентрацией иммуноконъюгата, сконцентрируйте раствор huA33-TCO с помощью центробежной фильтрующей установки с отсечкой 50 000 молекулярной массы в соответствии с инструкциями производителя.
    заметка: Известно, что многие антитела агрегируются или выпадают в осадок во время концентрации. При попытке провести эту процедуру с новым антителом исследователи должны полагаться на литературу или свой собственный опыт работы с рассматриваемым антителом.
  9. Готовый иммуноконъюгат huA33-TCO храните при температуре 4 °C в темноте, если это необходимо немедленно. Если его планируется использовать более 4 дней в будущем, храните его при температуре -80 °C в темноте.
    заметка: Это приемлемая точка остановки в процедуре. Готовый иммуноконъюгат huA33-TCO должен быть стабильным в течение не менее 6 месяцев при температуре -80 °C в темноте.

2. Синтез Tz-PEG 7-NHBoc

  1. В микроцентрифужной пробирке объемом 1,7 мл растворите 5 мг тетразина N-гидроксисукцинимидилового эфира (Tz-NHS; 12,6 мкмоль) в 0,15 мл безводного диметилсульфоксида (ДМСО).
  2. В отдельной микроцентрифужной пробирке объемом 1,7 мл растворите 8 мг защищенного Boc амино-ПЭГ-полимера, O-(2-аминоэтил)-O'-[2-(Boc-амино)этил]гексаэтиленгликоль (NHBoc-PEG7-NH2; 17,1 мкмоль) в 0,15 мл безводного ДМСО.
  3. В раствор Tz-NHS добавить 3 мкл (21,3 мкмоль, 1,7 молярного эквивалента) триэтиламина (TEA) и тщательно перемешать.
  4. Добавьте раствор розового тетразина в раствор NHBoc-PEG7-NH 2 из этапа 2.2 и инкубируйте реакционную смесь в течение 30 минут при комнатной температуре (RT) с легким перемешиванием.
  5. Через 30 минут разбавьте реакционную смесь в соотношении 1:1 в H2O и очистите ее с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с обратной фазой C18, чтобы отделить любой непрореагировавший Tz-NHS от Tz-PEG 7-NHBoc. Используйте растворители без кислоты, чтобы предотвратить преждевременное удаление защитной группы Boc. Контролируйте Tz-PEG 7-NHBoc и Tz-NHS на длине волны 525 нм.<бр/> заметка: Время удержания в значительной степени зависит от оборудования ВЭЖХ в каждой лаборатории (насосы, колонны, трубки и т. д.), и перед очисткой должен быть проведен соответствующий контроль. Однако, в качестве примера, если использовать градиент от 5:95 MeCN/H2O (оба без какой-либо добавки) до 95:5 MeCN/H2O в течение 30 минут, расход 1 мл/мин и аналитическую колонку C18 размером 4,6 мм x 250 мм, то время удержания Tz-NHS и Tz-PEG 7-NHBoc составляет около 16 минут и 18 минут. соответственно.
  6. Заморозьте собранный элюент ВЭЖХ с помощью жидкого азота и оберните замороженную пробирку для сбора алюминиевой фольгой. Поместите замороженную пробирку для сбора на лиофилизатор на ночь, чтобы удалить подвижную фазу ВЭЖХ. Изделие будет характерного ярко-розового твердого цвета.<бр/> заметка: Если жидкий азот недоступен, заморозьте собранный элюент ВЭЖХ в сухом льду или на ночь в морозильной камере при температуре -80 °C.

3. Синтез Tz-PEG7-NH 2

  1. К продукту из Шага 2.6, Tz-PEG 7-NHBoc, добавьте 1,5 мл дихлорметана (DCM) и переложите этот раствор в небольшую колбу с круглым дном.
  2. Добавьте 0,25 мл трифторуксусной кислоты (ТЖК) по каплям в розовый раствор из Шага 3.1.
  3. Дайте реакции инкубироваться в течение 30 минут при RT с легким перемешиванием.
  4. Через 30 минут испарить растворитель с помощью ротационного выпаривания. Не превышайте температуру водяной бани 37 °C.
  5. Восстановите розовый вязкий продукт в 0,5 мл воды.
  6. Очистите продукт с помощью ВЭЖХ с обратной фазой C18, чтобы отделить Tz-PEG7-NH 2 от предшественника, защищенного Boc. Контролируйте Tz-PEG 7-NHBoc и Tz-PEG7-NH 2 на длине волны 525 нм.<бр/> заметка: Время удержания в значительной степени зависит от оборудования ВЭЖХ в каждой лаборатории (насосы, колонны, трубки и т. д.), и перед очисткой должен быть проведен соответствующий контроль. Однако, в качестве примера, если использовать градиент от 5:95 MeCN/H2O (оба с 0,1% TFA) до 95:5 MeCN/H2O в течение 30 минут, расход 1 мл/мин и аналитическую колонку C18 размером 4,6 мм x 250 мм, то время удержания Tz-PEG 7-NHBoc и Tz-PEG7-NH 2 составляет около 18 мин и 13 мин. соответственно.
  7. Заморозьте собранный элюент ВЭЖХ с помощью жидкого азота и оберните замороженную пробирку для сбора алюминиевой фольгой. Поместите замороженную пробирку для сбора на лиофилизатор на ночь, чтобы удалить подвижную фазу ВЭЖХ. Изделие будет иметь ярко-розовое твердое вещество.
  8. Восстановите продукт из Стадии 3.7, Tz-PEG7-NH 2, со 150 мкл ДМСО и перенесите в микроцентрифужную пробирку объемом 1,7 мл.
  9. Измерьте концентрацию Tz-PEG7-NH 2 с помощью УФ-ВИД спектрофотометра, контролирующего длину волны 525 нм. Коэффициент угасания моляров для Tz-PEG 7-NH2 (ε525) составляет 535 М-1 см-1.

4. Синтез Tz-PEG7-DOTA

  1. Растворите Tz-PEG7-NH 2 (4,5 мг, 6,9 мкмоль) в 0,15 мл ДМСО (или продолжайте использовать раствор, полученный на этапе 3.8).
  2. Добавьте 22 молярных эквивалента TEA (21 μL, 0,15 ммоль) в раствор, содержащий тетразин, начиная с Шага 4.1.
  3. Добавьте 10 мг (14,2 мкмоль) p-SCN-Bn-DOTA в виде твердого вещества и делайте раствор вихревым в течение примерно 2 мин или до полного растворения материала.
  4. Дайте реакции инкубироваться в течение 30 минут при RT с легким перемешиванием.
  5. Через 30 минут разбавьте реакцию 1:1 в H2O и очистите продукт с помощью ВЭЖХ с обратной фазой C18 для удаления непрореагировавшего p-SCN-Bn-DOTA. p-SCN-Bn-DOTA может контролироваться на длине волны 254 нм, в то время как Tz-PEG7-DOTA лучше всего контролируется на длине волны 525 нм.
    заметка: Очевидно, что время удержания в значительной степени зависит от оборудования ВЭЖХ в каждой лаборатории (насосы, колонны, трубки и т. д.), и перед очисткой следует проводить соответствующие проверки. Однако, в качестве примера, если использовать градиент от 5:95 MeCN/H2O (оба с 0,1% TFA) до 95:5 MeCN/H2O в течение 30 минут и аналитическую колонку C18 размером 4,6 x 250 мм, то Tz-PEG7-DOTA и p-SCN-Bn-DOTA имеют время удержания около 15,6 мин и 16,1 мин соответственно.
  6. Заморозьте собранный элюент ВЭЖХ с помощью жидкого азота и оберните замороженную пробирку для сбора алюминиевой фольгой. Поместите замороженную пробирку для сбора на лиофилизатор на ночь, чтобы удалить подвижную фазу ВЭЖХ. Изделие будет представлять собой ярко-розовую пудру.
  7. Восстановите продукт в 0,15 мл ДМСО и измерьте концентрацию с помощью УФ-ВИД спектрофотометра, контролирующего длину волны 525 нм. Коэффициент затухания моляров для Tz-PEG7-DOTA525) составляет 535 М-1 см-1.
  8. Проанализируйте конечное соединение с помощью ядерного магнитного резонанса (ЯМР) и масс-спектрометрии высокого разрешения (HRMS), чтобы убедиться в успешности синтеза. В таблице 1 приведены экспериментально определенные химические сдвиги и молекулярные массы всех соединений, обсуждаемых в данной работе.
  9. Храните очищенный раствор Tz-PEG7-DOTA в темноте при температуре -80 °C.
    заметка: Это приемлемая точка остановки в процедуре. Готовый предшественник Tz-PEG7-DOTA стабилен в течение как минимум 1 года в этих условиях.

5. 177Lu Радиомечение Tz-PEG7-DOTA

ВНИМАНИЕ: Этот шаг протокола включает в себя обработку и манипулирование радиоактивностью. Прежде чем выполнять эти шаги или выполнять любую другую работу с радиоактивностью, исследователи должны проконсультироваться с отделом радиационной безопасности своего учреждения. Примите все возможные меры, чтобы свести к минимуму воздействие ионизирующего излучения.

ПРИМЕЧАНИЕ: При работе с небольшими количествами радиометаллов рекомендуется, чтобы все буферы были свободны от следов металлов, чтобы предотвратить помехи при связывании сайтов координации.

  1. В центрифужную пробирку объемом 1,7 мл добавьте 200 мкл 0,25 М ацетата аммония, отрегулированного аликвотами 1 М HCl до pH 5,5,
    заметка: При использовании для мечения менее 370 МБк активности, объем используемого буфера следует уменьшить до 100 мкл.
  2. Добавьте нужное количество [177Lu]LuCl3 в буферный раствор. Добавленное количество будет зависеть от количества испытуемых в эксперименте и вводимых радиоактивных доз. Рекомендуется добавить 1-2 дополнительные дозы радиоактивности в качестве меры предосторожности, чтобы компенсировать потенциальную потерю радиоактивности во время этапов очистки.
  3. Добавьте Tz-PEG7-DOTA в ДМСО в радиоактивную смесь на Шаге 5.2. Количество Tz-PEG7-DOTA зависит от количества тестируемых испытуемых. Более подробно с этой темой можно ознакомиться в Шаге 6.2.2.2.
  4. Дайте раствору инкубироваться при температуре 37 °C в течение 20 минут.
  5. Убедитесь, что радиоактивное мечение завершено, с помощью радиомгновенной тонкослойной хроматографии (радио-iTLC) с 50 мМ ЭДТА, pH 5,5 в качестве подвижной фазы. Меченый [177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz останется на исходном уровне — Rf = 0 — в то время как свободный [177Lu]Lu3+ будет координироваться ЭДТА и будет перемещаться вместе с фронтом растворителя, Rf = 1.0 (рис. 1B).
  6. Если количественное мечение не достигнуто, добавьте лиганды для координации свободного радиометалла. В качестве альтернативы очистите маркированный [177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz с помощью картриджа C18. Следуйте инструкциям производителя по применению. Пример процедуры приведен ниже.
    1. Подготовьте картридж, медленно пропустив 5 мл этанола через картридж с помощью большого шприца. Затем пропустите 5 мл ацетонитрила, а затем 5 мл деионизированного (DI) H2O.
    2. Наберите раствор радиолиганда из Шага 5.3 в шприц меньшего размера и медленно введите его в картридж C18. Затем промойте картридж 10 мл DI H2O, чтобы удалить все несвязанные [177Lu]LuCl3.
    3. Разбавьте 500 μл этанола. Удалите весь этанол из конечного продукта, пропустив по сосуду с низкой скоростью потока сухой азот или аргон в течение 10-15 минут. Затем ресуспендируют радиолиганд в физиологическом растворе в объеме, определенном на Шаге 6.2.2.2.

6. Исследования in vivo

ВНИМАНИЕ: Как и в разделе 5, этот шаг протокола включает в себя обработку и манипулирование радиоактивностью. Прежде чем выполнять эти шаги, исследователи должны проконсультироваться с отделом радиационной безопасности своего учреждения. Примите все возможные меры, чтобы свести к минимуму воздействие ионизирующего излучения.

  1. Подготовка животных
    1. Самкам атимических голых мышей подкожно имплантируйте 5 x 106 клеток колоректального рака SW1222, суспензированных в 150 мкл смеси клеточной среды и матрикса в соотношении 1:1 (например, Матригель), и дайте им вырасти в ксенотрансплантат размером 100-150 мм3 (через 14-18 дней после инокуляции).
    2. Сортировка животных для эксперимента по биораспределению
      1. Как только опухоли достигнут достаточного размера, определенного с помощью штангенциркуля, отсортируйте животных, чтобы убедиться, что каждая когорта имеет примерно одинаковый средний объем опухоли. Животных можно отличить в каждой клетке по отметинам на хвосте несмываемыми чернилами (одна полоса, две полосы и т.д.).
    3. Сортировка животных для исследования методом лонгитюдной терапии
      1. Как только опухоли достигнут достаточного размера, определенного с помощью штангенциркуля, прикрепите ушные бирки к каждому из животных, чтобы обеспечить правильное отслеживание на протяжении всего эксперимента><. заметка: Цифровые ушные бирки могут отваливаться на протяжении всего эксперимента. В связи с этим рекомендуется систематически сопровождать эти физические метки ушными насечками (т.е. правые, левые, двусторонние, правые x 2, левые x 2).
    4. Отсортируйте животных так, чтобы средний объем опухоли в каждой когорте был примерно одинаковым. Следующий метод сортировки животных может быть выполнен с помощью программы для работы с электронными таблицами.
      1. Перечислите идентификационные номера животных, рисунок ушной выемки и объем опухоли в трех отдельных столбцах.
      2. Отсортируйте данные от наименьшего к наибольшему объему опухоли.
      3. В четвертом столбце присвойте каждому животному номер клетки и циклически пройдитесь по клеткам змеиным образом. Например, если есть 5 клеток, этот столбец будет заполняться «5, 4, 3, 2, 1, 1, 2, 3, 4, 5...» до тех пор, пока всем животным не будет назначена клетка.
      4. После того, как клетки назначены, отсортируйте данные по номеру клетки. Если используются ушные насечки, убедитесь, что каждое животное в данной клетке имеет уникальный рисунок ушных выемок. Если в одной клетке дублируются (две или более одинаковых мышей), поменяйте одну мышь на одну из другой клетки с отсутствующим рисунком, пока в каждой клетке не появятся животные с уникальными узорами ушных выемок.
  2. Рецептуры и инъекции
    заметка: Последовательность инъекций как для биораспределения, так и для терапевтического исследования выглядит следующим образом: сначала вводится huA33-TCO, а затем [177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz через заранее определенный интервал.
    1. Иммуноконъюгат
      1. Разбавьте аликвоту раствора huA33-TCO на стадии 1,9 до концентрации 0,8 мг/мл в 0,9% стерильном физиологическом растворе.
      2. Наберите дозы 150 мкл (100 мкг) раствора huA33-TCO в шприцы, предварительно обработанные 1% бычьим сывороточным альбумином (БСА) в PBS и храните эти шприцы на льду><. заметка: Лечение БСА снижает неспецифическое связывание антитела со стенками шприца.
      3. Прогрейте животное под тепловой лампой в течение 3 минут, чтобы расширить хвостовую вену.
      4. Введите раствор huA33-TCO в хвостовую вену мыши, несущей ксенотрансплантат. Подождите 24 часа (или другой заранее определенный интервал времени), чтобы huA33-TCO накопился в опухоли мыши.
    2. Радиолиганд
      1. Радиометка Tz-PEG7-DOTA, как описано в разделе 5.
      2. Дозы в 150 мкл 0,9% стерильного физиологического раствора, содержащего 1,1 молярного эквивалента Tz-PEG 7-DOTA по отношению к количеству введенного huA33-TCO. Например, если животному вводили 100 мкг (0,67 нмоль) huA33-TCO и получали реакционную смесь [177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz со специфической активностью 12,4 ГБк/мкмоль, то будут подбирать дозы, содержащие 9,14 МБк активности каждая. Это соответствует 0,74 нмоль Tz (1,1 молярного экв. относительно huA33-TCO).
      3. Прогрейте животных под тепловой лампой в течение 3 минут, чтобы расширить хвостовую вену.
      4. Введите дозу радиолиганда в хвостовую вену мыши, несущей ксенотрансплантат. Объем вводимой активности определяется исследователем. Опубликованные данные показали дозозависимое терапевтическое влияние на размер опухоли в диапазоне от 7,4 до 55,5 МБк.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
РИСУНОК 1: (A) Схема радиоактивного мечения [ 177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz; (B) Репрезентативная хроматограмма радио-iTLC, демонстрирующая радиохимическую чистоту >98% [177Lu]Lu-DOTA-PEG7-Tz.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
(E)-циклоокт-4-енил2,5-диоксо-1-пирролидинилкарбонат (TCO-NHS) Сигма-Олдрич764523 Хранить при температуре -80 °C
2,5-диоксо-1-пирролидинил 5-[4-(1,2,4,5-тетразин-3-ил)бензиламино]-5-оксопентаноат (Tz-NHS) Сигма-Олдрич764701Хранить при температуре -80 °C
Ацетонитрил (MeCN) Научный центр ФишераА998-4
Ацетат аммония (NH4OAc) Научный центр ФишераА639-500
Boc-PEG7-амин (O-(2-аминоэтил)-O'-[2-(Bocamino)этил]гексаэтиленгликоль) Сигма-Олдрич70023 Хранить при температуре -20 °C
Дихлорметан (ДХМ) Научный центр ФишераД143-1
Диметилсульфоксид (ДМСО) безводный Научный центр ФишераД12345
Центробежный фильтрующий блок EMD Millipore Amicon Ultra-2 Научный центр ФишераUFC205024
Одноразовые обессоливающие колонны PD-10 от GE Healthcare Научный центр ФишераТел.: 45-000-148
N,N-диметилформамид (ДМФА), безводный Научный центр ФишераAC610941000
Фосфатно-солевой буфер (PBS) Научный центр Фишера70-011-044 (АнглийскийВ 10 раз концентрированный
p-SCN-Bn-DOTA МакроцикликаБ-205 Хранить при температуре -20 °C
Триэтиламин (ТЭА) Научный центр ФишераAC157911000
Трифторуксусная кислота (ТЖК) Научный центр Фишера А116-50
Прибор для измерения опухолей Пейра Пейра ТМ900
)

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

nude

Похожие статьи