Методическая статья

Мышиная модель резекции подвздошной кишки: изучение метаболизма желчи, вызванного илеэктомией, на мышиной модели

1.4K просмотров

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Zhang, R., et al. Вызванное илейэктомией избыточное накопление желчи в кишечнике мыши. J. Vis. Exp. (2017)

Это видео описывает подробный протокол резекции кишечника на мышиной модели. Этот метод дает представление о мальабсорбции, избыточном накоплении и токсичности желчи, вызванной илейэктомией, в кишечнике мыши.

Протокол

1. Илеэктомия и анастомоз

  1. Обезболить мышей изофлураном (2 - 3%) в инкубационной камере мелких животных. Определите адекватную анестезию с помощью техники щипкового пальца ноги, пока животное находится на изофлуране.
  2. Удалите волосы на животе, нанеся средства для эпиляции, и сотрите волосы хирургическими губками, сохраняя анестезию. Поместите мышь на хирургический стол для мелких животных с регулируемой температурой (рис. 1A), чтобы поддерживать температуру тела на уровне 37 °C. Поддерживайте анестезию изофлураном (1–2%) через лицевую маску. Обработайте глаза мыши глазной мазью.
  3. Очистите кожу с помощью повидон-йода и 70% спирта и накройте операционную область брюшной полости стерильной хирургической марлей (рисунок 1Б).
  4. Сделайте разрез живота по средней линии с помощью хирургического скальпеля после того, как анестезия начнет действовать. Используйте аппликатор с ватным наконечником для защиты кишечника и потяните мышцы живота мыши с помощью ретракторов, чтобы полностью открыть и обнажить брюшную полость (Рисунок 1C).
  5. Найдите слепую кишку. Начиная с слепой кишки, осторожно выведите соединенную подвздошную кишку и часть тощей кишки из брюшной полости (рисунок 1D).
    заметка: Слепую кишку можно легко определить благодаря ее большому размеру даже после голодания.
  6. Перевязать верхнюю ветвь верхней брыжеечной артерии шелковым швом 7-0, чтобы перекрыть кровоснабжение подвздошного сегмента, который подлежит иссечению. Цвет подвздошной кишки меняется с розового на темно-фиолетовый после перевязки. (Рисунок 1E - F).
  7. В зависимости от цели эксперимента, с помощью ножниц, вырезают и удаляют 50% или 90% подвздошной кишки.<бр/> заметка: При фиктивной операции не выполняйте перевязку верхней брыжеечной артерии и не удаляйте подвздошную кишку.
  8. Промойте просвет обоих концов подвздошной кишки 0,9% физиологическим раствором.
    заметка: Поскольку оставшаяся неповрежденная подвздошная кишка все еще получает нормальное кровоснабжение из верхней брыжеечной артерии, небольшое количество крови будет вымыто во время процесса. Это также указывает на то, что кровоснабжение подвздошных концов в норме и обеспечивает отсутствие ишемии во время процедуры анастомоза (Рисунок 1G).
  9. Расположите брыжейки на стороне обоих концов подвздошной кишки. Выровняйте брыжейки и сшите концы подвздошной кишки с помощью 8-0 шов (Рисунок 1G - H).
  10. Сшите контралатеральную сторону подвздошной кишки, чтобы подвздошная кишка оставалась анастомозированной естественным образом (Рисунок 1I).
  11. Сшите верхнюю и нижнюю стороны между двумя исходными швами, чтобы тщательно соединить два конца подвздошной кишки вместе (Рисунок 1J).
  12. Убедитесь в отсутствии утечки из места анастомоза после завершения трехэтапной процедуры наложения швов (Рисунок 1G-I). Верните слепую кишку и тонкую кишку в брюшную полость на исходное анатомическое расположение. Промойте область операции теплым 0,9% физиологическим раствором с помощью тупой иглы. (Рисунок 1K).
  13. Закройте разрез мышечного слоя живота швом 6-0. Выровняйте разрез кожи живота с помощью щипцов и зашите кожу живота, чтобы способствовать оптимальному заживлению раны (Рисунок 1L).

2. Послеоперационный уход

  1. Переведите послеоперационных мышей в отделение интенсивной терапии для восстановления. Поместите их в клетку с бумажным постельным бельем на грелке с регулируемой температурой, чтобы продолжить послеоперационное восстановление в течение ночи. Снабжайте мышей мягкой пищей в дополнение к обычной пище и воде.
  2. Вводите бупренорфин (0,05 - 0,1 мг/кг) с подкожным введением каждые 8-12 ч для обезболивания.
    заметка: Усыпляйте мышей с помощью CO2, если они тяжело больны.
  3. В конечной точке принесите в жертву мышей, использующих передозировку изофлурана, и при необходимости соберите образцы (раздел 3).

3. Оценка избыточного скопления желчи, вызванного илэктомией

  1. Взвесьте и препарируйте мышей через день после резекции 0% (фиктивная), 50% или 90% подвздошной кишки.
  2. Удалите желудочно-кишечный тракт и взвесьте его. Рассчитайте отношение массы ГИ к массе тела, чтобы оценить тяжесть мальабсорбции и избыточного накопления желчных солей.
  3. Перенесите желудочно-кишечные тракты в конические пробирки объемом 15 мл и разрежьте их на короткие сегменты с помощью ножниц. После резки центрифугируйте при давлении 3 000 x g в течение 10 минут. Перенесите надосадочную жидкость (жидкость для желудочно-кишечного тракта, содержащую желчные соли) в чистую трубку.
  4. Измерьте общий объем и массу жидкости в желудочно-кишечном тракте и рассчитайте отношение массы жидкости к массе желудочно-кишечного тракта для дальнейшей оценки избыточного накопления желчи в желудочно-кишечном тракте.
  5. Определить общее количество желчи в надосадочной жидкости методом анализа желчных кислот.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

figure-results-1
Рисунок 1: Хирургические процедуры илеэктомии. (А) Поддерживайте температуру тела с помощью регулируемого по температуре хирургического стола для мелких животных. (B) Накройте операционную область стерильной марлей после подготовки кожи брюшной полости. (C) Обнажите тонкую кишку через разрез на животе по средней линии. (D) Слепая кишка (выделена белой пунктирной линией) отмечена для опред...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
С57BL/6JЛаборатория Джексона
Диссекционный микроскопОлимпСЗ61Для хирургии
Регулятор температуры животногоPhysitemp Instruments, IncТКАТ-2ЛВДля контроля температуры тела
Изофлуран анестетик вапорайзерВетЭкип911104Для анестезии
Щипцы для рассеченияFine Science Tools, Inc.11274-20Для хирургии
ножницыФайн Сайенс Инструментс, Инк14084-08Для хирургии
ИглодержательРобоз Хирургический Инструмент Ко.Сервер RS-7882Для хирургии
Микроножи-игольчатое лезвиеНаучный центр Фишера10318-14Для хирургии
6-0 шовный материал из мононитиЭтикон1698ГДля подтяжки кожи живота
7-0 шелковый шовЭтикон766ГДля лигирования
8-0 шовный материал из мононитиЭтикон1714ГДля анастомоза
Хирургические губкиКорпорация DynarexNo 3333Для хирургии
Маленькие аппликаторы с ватными наконечникамиНаучный центр ФишераТел.: 23-400-118Для хирургии
ИзофлуранПирамал Хэлскесс Лимитед66794-013-25Для анестезии
Бупренорфина гидрохлоридРекитт-Бенкизер Фармасьютикалз12496-0757-1 (АнглийскийДля обезболивания
0,9% хлорида натрия для инъекцийБ. Браун Медикал Инк.0264-7800-10 (АнглийскийДля промывки/впрыска
Повидон раствор для приготовления йодаКорпорация Dynarex1413Для подготовки кожи
Ветеринарная мазь PuralubeВетеринарные препараты Dechra17033-211-38Для защиты глаз
Лосьон для удаления волосЧерч и Дуайт Ко., Инк.Для подготовки кожи
Отделение интенсивной терапииТермоКерFW-1Для восстановления после операции
Набор для анализа общей желчной кислотыДиагностика GenzymeДЗ042А-К01Для анализа желчных кислот
) ) г.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи