Обоснование: Рак яичников обычно диагностируют на поздней стадии, когда соотношение заболеваемости и смертности велико, поэтому он остается самым летальным из всех гинекологических злокачественных новообразований среди женщин в США 1,2,3. Серозные опухоли являются наиболее распространенными формами рака яичников 4,5, и трансгенная линия Tg-MISIIR-TAg представляет собой единственную модель мышей, у которых спонтанно развиваются опухоли этого типа. Мыши Tg-MISIIR-TAg экспрессируют трансформирующий регион SV40 под контролем промотора гена рецептора II типа ингибирующего вещества мюллеровых протоков (MISIIR) 6. Были выявлены дополнительные трансгенные линии, которые экспрессируют трансген SV40 TAg, но у которых не развиваются опухоли яичников. Мыши, не склонные к образованию опухолей, имеют типичную для мышей C57Bl/6 продолжительность жизни и являются фертильными. Этих мышей можно использовать в качестве реципиентов сингенеичных аллографтов для опухолевых клеток, выделенных из мышей Tg-MISIIR-TAg-DR26.
Цель: Хотя визуализация опухолей возможна 7, раннее обнаружение глубоко расположенных опухолей у мелких живых животных представляет собой сложную задачу. Для проведения доклинических исследований на иммунологически интактной животной модели серозного рака яичников мы описываем сингенную мышиную модель этого типа рака яичников, которая позволяет проводить визуализацию in vivo, изучать микроокружение опухоли и иммунный ответ на опухоль.
Методы: Сначала мы выделили линию раковых клеток мыши TAg+ (MOV1) из спонтанной опухоли яичника, полученной от 26-недельной самки DR26 Tg-MISIIR-TAg. Затем мы провели стабильную трансдукцию клеток MOV1 с помощью млекопитающего лентивирусного вектора TurboFP635, кодирующего Katushka — дальне-красный мутант красного флуоресцентного белка актинии Entacmaea quadricolor с максимумами возбуждения/эмиссии 588/635 nm 8,9,10. Мы провели ортотопическую имплантацию MOV1Kat в яичник 11,12,13,14 самок мышей Tg-MISIIR-TAg, не склонных к образованию опухолей. Прогрессирование опухоли отслеживали с помощью оптической визуализации in vivo, а микроокружение опухоли анализировали методом иммуногистохимии.
Результаты: Ортотопически имплантированные клетки MOV1Kat развили серозные опухоли яичников. Опухоли MOV1Kat можно было визуализировать с помощью визуализации in vivo в течение трех недель после имплантации (рис. 1); в них наблюдалась инфильтрация лейкоцитами, как это происходит при раке яичников у человека 15 (рис. 2).
Выводы: Мы описываем ортотопическую модель рака яичников, подходящую для визуализации ранних опухолей in vivo благодаря высокой pH-стабильности и фотостабильности Katushka в глубоких тканях. Мы предлагаем использовать эту новую сингенную модель серозного рака яичников для исследований методом визуализации in vivo, а также для мониторинга иммунного ответа опухоли и эффективности иммунотерапии.