Method Article

Анализ плюрипотентных стволовых клеток с помощью Cryosections из эмбриоидные тела

DOI:

10.3791/2344

December 8th, 2010

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Плюрипотентных стволовых клеток, растущих в виде суспензии дифференцироваться в эмбриоидных тел (ЭТ). Здесь показано, как получить высокое качество EB cryosections полезны для изучения клеточных и молекулярных аспектов эмбриогенеза, сохраняя при этом свою организацию как агрегаты.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эмбриональных стволовых (ЭС) клеток плюрипотентные клетки, полученные из внутренней клеточной массы бластоцисты ранней стадии эмбрионов млекопитающих 1. Важный этап в дифференцировку ЭС клеток образование эмбриоидные тела (ЭТ) агрегатов 2, 3. Е. Б. Формирование на основе спонтанной агрегации, когда ES клетки культивируют в не сторонник пластин. Трехмерная резюмирует Е. Б. многие аспекты раннего эмбриогенеза млекопитающих и дифференцироваться в трех зародышевых листков: эктодермы, мезодермы и энтодермы 4.

Иммунофлуоресценции и гибридизация широко используются методы выявления целевых белков и РНК присутствуют в клетках тканей раздел 5, 6, 7. Здесь мы приведем простой метод для получения высоких cryosections качество эмбриоидных органов. Этот подход опирается на пространственную ориентацию EB вложения в октябре следуют cryosection техники. В результате разделов может быть подвергнут широкий спектр аналитических процедур для характеристики популяции клеток, содержащих определенные белки, РНК или ДНК. В этом смысле подготовка EB cryosections (10 мкм) являются необходимыми инструментами для анализа окрашивания гистологии (например, гематоксилином и эозином, DAPI), иммунофлюоресценции (например Oct4, нестин) или на месте гибридизации. Эта техника также может помочь понять аспекты эмбриогенеза в отношении поддержания три-мерной сферической структуры ЭТ.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Фиксация и Криоконсервация

Плюрипотентные стволовые клетки культивировали на эмбриональных фибробластов мыши (MEF) инактивированные митомицином С и поддерживается в DMEM/F12 дополнена с 20% нокаут сыворотке замены (КСР) и 8ng / мл фактора роста фибробластов (FGF-2). Для того, чтобы вызвать образование EB H9 клетки были переданы не соблюдают блюд и культивировали в течение 7 дней, поддерживаться в DMEM/F12 дополнена с 15% КСР 8.

Обратите внимание (!): Этот метод может быть использован для ЭТ получена в результате любого эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток.

  1. Сбор ЭТ от культуры блюдо с пипеткой.
  2. Передача ЭТ в 15 мл коническую трубку и ждать, пока материал опускается на дно трубки.
  3. Удаление средних и исправить ЭТ с 4% параформальдегида (PFA) решение в PBS в течение 30 минут при комнатной температуре.
    Обратите внимание (!): Для восстановления на месте антиген гибридизации должно быть сделано для того, чтобы избежать перекрестной реакции с антителами ссылку в связи с использованием PFA 6,7.
  4. Удалить PFA раствора и промыть PBS в течение 5 мин.
  5. ЭТ должны быть помещены в серийное разведение PBS-буферных растворах сахарозы (10, 20 и 30%, в последовательности) при 25-28 ° С, каждое решение должно быть заменено каждые 30 мин. Материал может быть в наличии в 30% растворе сахарозы при температуре 4 ° С до вложение ногу с октября

2. Ткань вложения, руководство и морозильные

  1. Осторожно собрать ЭТ из тюбика. Разряд столько раствора сахарозы насколько это возможно.

    Обратите внимание (!): Очень важно, чтобы смочить внутреннюю стенку наконечник с раствором сахарозы перед сбором EBS. Эта процедура может избежать EB быть присоединены к концу.
  2. Место ЭТ в форму и удалить остатки раствора сахарозы с фильтровальной бумаги.

    Обратите внимание (!): Очень важно, чтобы не заполнить форму с ЭТ, чтобы избежать дублирования.
  3. Заполните форму с октября медленно, стараясь не повторно приостанавливать EBS. После этого, поместите все EB в центре плесени и удаления пузырьков с пипеткой.
  4. Умеренно агитировать за 15 минут.
  5. Surround плесень с дробленым сухой лед, чтобы заморозить пробы. Октября должны быть полностью заморожены. На данный момент блоки могут храниться при температуре -70 ° С, в течение не менее одного года.

3. Cryosectioning Техника

  1. Удалить замороженных блоков от -70 ° C и место на криостате ранее охлаждают при температуре от -18 до -21 ° C.

    Обратите внимание (!): Температура вне этого диапазона может привести к неприятности, как разделы керлинг, плавки или трещин.
  2. Отсоедините блок октября из формы и поместите его в криостате поддержки за счет добавления новых октября
  3. Важно, чтобы ориентировать блок должным образом и привести его в соответствие параллельно краю лезвия.

    Обратите внимание (!): Как ЭТ меньше, чем другие образцы тканей, этот шаг является чрезвычайно важным, чтобы минимизировать потери материала.
  4. Октябрь блоки должны быть секционного поверхностно, пока поверхность плоскости получается. В шлифах (10 мкм) из ткани образца должны быть приняты и установлены на стеклах ранее окрашенных с 200 мг / мл поли L лизин (10 мкл на слайд) 9,10.

    Обратите внимание (!): Чтобы избежать torned разделы обратить внимание на какой-либо ущерб на лезвие.
  5. Все разделы должны быть воздушно-сухой в течение 1 часа при комнатной температуре, а затем использоваться или храниться при температуре -70 ° С до использования.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Описанный здесь метод обеспечивает простой в последующей протокол для получения PFA фиксированных тонких срезов криостат эмбриоидные тела полезно для иммунофлуоресценции и на месте гибридизации. В результате cryosections позволяют изучать клеточные и молекулярные аспекты человеческой эмбриональной дифференциации стволовых клеток, при сохранении их структуры и организации, агрегатов.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана Fundação де Ампаро Pesquisa сделать Estado-ду-Риу-де-Жанейро (FAPERJ), Conselho Насьональ де Desenvolvimento Científico электронной Tecnológico (CNPq) и Национальным институтом Ciencia электронной Tecnologia (INCTC). Мы благодарны Бруно С. Паулсен и Алине Фернандес М. Б. для изображений.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
D (+) Реактив сахарозыVetec228
ПараформальдегидныйреактивRieden-de Haë n16005
Раствор PBSРеагентLGC Biotecnology13-30259.05
Поли-L-лизина гидробромидРеагент Sigma-AldrichP2636200 мг/мл в воде
Ткань-Tek O.C.T. СоставнойреагентСакура FinetekP2636
сахарозы10% раствор сахарозы в PBS w/v
Реагентсахарозы20% раствор сахарозы в PBS с
реагентомсахарозы30% раствор сахарозы в PBS с
конической трубкойинструментTechno Plastic Изделия9101515 мл коническая трубка
Шейкер для тарелокИнструментБиомиксер
Инструмент КриостатИнструмент Leica MicrosystemsCM 1850
Пресс-форма для платформы OCTИнструментПластиковая форма для платформы
Раствор раствор в растворе

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Thomson, J. A., Itskovitz-Eldor, J., Shapiro, S. S., Waknitz, M. A., Swiergiel, J. J., Marshall, V. S., Jones, J. M. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-117 (1998).
  2. Itskovitz-Eldor, J., Schuldiner, M., Karsenti, D., Eden, A., Yanuka, O., Amit, M., Soreq, H., Benvenisty, N. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6, 88-95 (2000).
  3. Kurosawa, H. Methods for inducing embryoid body formation: in vitro differentiation system of embryonic stem cells. J Biosci Bioeng. 103, 389-398 (2007).
  4. Conley, B. J., Young, J. C., Trounson, A. O., Mollard, R. Derivation propagation and differentiation of human embryonic stem cells. Int J Biochem Cell Biol. 36, 555-567 (2004).
  5. Moon, I. S., Cho, S. J., Jin, I., Walikonis, R. A simple method for combined fluorescence in situ hybridization and immunocytochemistry. Mol Cells. 24, 76-82 (2007).
  6. Daneshtalab, N., Doré, J. J., Smeda, J. S. Troubleshooting tissue specificity and antibody selection: Procedures in immunohistochemical studies. J Pharmacol Toxicol Methods. 61, 127-135 (2009).
  7. Krenacs, L., Krenacs, T., Stelkovics, E., Raffeld, M. Heat-induced antigen retrieval for immunohistochemical reactions in routinely processed paraffin sections. Methods Mol Biol. , 588-5103 (2010).
  8. Nones, J., Spohr, T. C., Furtado, D. R., Sartore, R. C., Paulsen, B. S., Guimarães, M. Z., Rehen, S. K. Cannabinoids modulate cell survival in embryoid bodies. Cell Biol Int. 12, 399-408 (2010).
  9. Huang, W. M., Gibson, S. J., Facer, P., Gu, J., Polak, J. M. Improved section adhesion for immunocytochemistry using high molecular weight polymers of L-lysine as a slide coating. Histochemistry. 77, 275-279 (1983).
  10. Kuenzi, M. J., Sherwood, O. D. Immunohistochemical localization of specific relaxin-binding cells in thecervix, mammary glands, and nipples of pregnant rats. Endocrinology. 136, 1367-1373 (1995).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Embryoid BodiesCryosection TechniqueImmunofluorescence AnalysisIn Situ HybridizationEmbryonic Stem CellsOCT EmbeddingSucrose CryoprotectionParaformaldehyde FixationTissue SectioningGerm Layer Differentiation

Related Articles