Методическая статья

Введение терапевтического агента в мозг бодрствующего грызуна с помощью микроинъекций

29 августа 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Источник: Poland, R. et al. Микроинъекция мозга грызунов для изучения молекулярных субстратов мотивированного поведения. J. Vis. Exp. (2015)

В этом видео для точной доставки лекарств используется наполненная водой установка для микроинъекций, состоящая из шприца и трубки микроинжектора. Крысе с предварительно имплантированной направляющей канюлей проводят целенаправленную микроинъекцию в мозг, что позволяет точно вводить терапевтические агенты бодрствующим животным с минимальным повреждением тканей.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

  1. Подготовка шприца для микроинъекций и микроинъектора к инъекции:
    1. Зафиксируйте каждый газонепроницаемый шприц для микроинъекций в стойке насоса для микроинъекций.
    2. Поместите кончик газонепроницаемого шприца в стерильную воду, содержащуюся в небольшой лодке для взвешивания, и осторожно взмахните поршнем, чтобы смазать внутреннюю проволоку. Равномерно потяните поршень до упора на насосе, чтобы наполнить его водой.
    3. Наденьте трубку PE20, подключенную к микроинъектору, на иглу 26 G (коричневая ступица), прикрепленную к шприцу объемом 1 мл, наполненному стерильной водой. Распылите стерильную воду через микроинъектор и проверьте форму и расстояние распыления.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Вода должна разбрызгиваться очень далеко и прямо из наконечника микроинжектора. Если струя не прямая, место впрыска будет неправильным.
    4. Поместите стерилизованный микроинъектор на стерильное поле.
    5. Сдвиньте трубку с иглы, удерживая трубку микроинъектора в вертикальном положении, чтобы предотвратить капание воды, а также разрежьте трубку ниже области, поврежденной иглой.
    6. Слегка сдвиньте поршень шприца для микроинъекций вперед, чтобы создать каплю на конце иглы, и наденьте заполненную водой трубку PE20 (которая подключена к микроинъектору) на иглу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Это создаст соединение жидкость-жидкость, которое обеспечит соответствующее обратное давление, которое может сместить засор, который может образоваться на кончике микроинжектора.
    7. Полностью выдвиньте поршень вперед, чтобы подготовиться к загрузке образца и убедиться, что в микроинъекторе не осталось следов этанола.
    8. Проверьте настройку на наличие утечек, прикоснувшись к капле воды, образовавшейся на кончике микроинъектора, к чистой лабораторной салфетке несколько раз.
  2. ПРИМЕЧАНИЕ: При прикосновении к лабораторной салфетке должно образоваться только одно мокрое пятно. Если капель стало больше, значится утечка в системе.
  3. Избегайте утечек, контролируя нанесение суперклея и обрезая трубку PE20 острыми ножницами или лезвием бритвы в любое время, когда трубка PE20 удаляется из любого соединения.
  4. Оттяните поршень шприца назад на 0,2 мкл, создавая пузырь между стерильной водой в трубке PE20 / микроинъекторе и раствором, который нужно впрыснуть.
  5. ПРИМЕЧАНИЕ: Этот пузырь предотвращает разбавление инъекции, загрязнение воды и позволяет контролировать процесс впрыска, поскольку он будет перемещаться во время впрыска. Должен быть получен одинарный твердый пузырь.
  6. Поместите микроинъектор в реагент, который нужно впрыснуть, и медленно потяните поршень шприца до упора.
  7. Подготовка животного к инъекции:
  8. Прижмите грудь крысы к груди экспериментатора. Очистите область вокруг канюль ватным аппликатором, смоченным в 70% этаноле (v/v).
  9. ПРИМЕЧАНИЕ: При правильном обращении мышей можно аккуратно удерживать в чашеобразной руке. В противном случае может потребоваться загривка.
  10. Снимите обтюраторы с помощью небольших щипцов и поместите их в весовую лодку с 70% этанолом (v/v).
  11. Выполнение инъекций:
  12. Поместите заполненный микроинъектор в канюлю. Нажмите кнопку «Старт» на насосе микровпрыска и следите за движением пузырьков.
  13. ПРИМЕЧАНИЕ: Может потребоваться легкое давление, чтобы гарантировать, что микроинъекторы не поднимутся. Пузырь должен равномерно продвигаться вперед и полностью входить в микроинжектор.
  14. Извлеките микроинъекторы из канюли и замените обтюраторы после завершения инъекции и прохождения периода диффузии после инъекции.
  15. ПРИМЕЧАНИЕ: Типичное время диффузии после инъекции составляет 2–4 минуты для фармакологических реагентов и 2–10 минут для вирусов. Если оставить микроинъектор в постинфузионном периоде, инъекция не будет возвращаться обратно вверх по канюлям, а не диффундировать в ткани. Разместите обтюраторы на боковой стороне наполненной этанолом весовой лодки, чтобы дать этанолу стечь, прежде чем снова вставлять его в канюлю.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Канюля-трубкаAmazon Supply/ мелкие деталиHTXX-26T-6026 калибра, гипотрубка S/S 316-TW 26GA
обтюраторAmazon Supply/ мелкие деталиGWXX-0080-30-0533 калибра, провод S/S 316LVM 0.008 IN
Провод микроинъектораMicroGroup33RW 30433 калибр
Super GlueLoctite3924ACЖидкость, не гель, можно автоклавный
микроинъектор Пластиковая трубкаBecton Dickson427406PE20
Средний вес ГемостатикиWorld Precision Instruments501241-G
ЛинейкаFisher09-016150 мм
ЩипцыToelting52100-77Dumont, Dumostar
Ротационный инструментDremmel285Двухскоростной
отрезной дискMcMaster Carr360215/16" x 0.025"
Микроинъекционный насосHarvard ApparatusPhD 2000
мкл стеклянный шприцHamilton7001KHТип иглы: 25s/2.75"/3
Аппликаторс хлопковым наконечникомFisher23-400-101
Lab WipesKimwipes34133
Operant SoftwareCoulbournGraphic State
Operant ChambersCoulborunhabitest
1

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи