Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.
1. Внутриутробная трансдукция
- Приготовьте аденоассоциированный вирус типа 1 (AAV1), кодирующий желаемую мишень (4 x10 11 вирусных частиц/мкл AAV1) в фосфатно-солевом буфере (PBS) при pH 7,4. Добавьте 0,1 мг/мкл Fast Green и поддерживайте смесь AAV1-Fast-Green при температуре 37 °C.
- Подготовьте тонкий капиллярный наконечник нужной формы (длина 8 мм, внешний диаметр 80 мкм и внутренний диаметр 50 мкм) с помощью съемника микропипеток (настройки: давление = 500, нагрев = 700, вытягивание = 0, скорость = 80, время = 200, см. Таблицу материалов). Разломайте кончик капилляра так, чтобы он составлял 4-5 мм.
- Соберите аспираторную трубку (44 см x 0,7 см) с капиллярным наконечником и отасуньте в капилляр 15 мкл смеси AAV1-Fast-Green.
- Поддерживайте постоянную физиологическую температуру тела животных на уровне 37 °C на протяжении всей процедуры.
- Поместите беременную мышь C57Bl/6 (эмбриональный день 14,5) в прединкубационную камеру и обезболите мышь газообразным 4% изофлураном (с объемным расходом воздуха 0,6-0,8 л/мин).
- Подкожно вводят бупренорфин (0,1 мг/кг массы тела).
- Поместите мышь под наркозом на предварительно подогретую хирургическую пластину (37 °C).
- Нанесите на глаза лубрикант.
- Наденьте мышь на анестезиологическую маску (газообразный 1,5 % изофлуран с объемным расходом воздуха 0,6-0,8 л/мин) на операционную пластину и побрейте область кожи живота. Протрите выбритую область 3X 75% этанолом, а затем раствором бетадином.
ПРИМЕЧАНИЕ: Постоянно следите за дыханием мыши, находящейся под наркозом. Отрегулируйте концентрацию газа изофлуран в соответствии с характером вдоха-выдоха мыши. - Проверьте отсутствие подошвенного рефлекса, сдавливая фаланги задней лапы мыши.
- Вскрыть брюшную полость, захватив кожу изогнутыми зубчатыми щипцами радужной оболочки (10 см) и разрезав кожу по медианной линии прямыми ножницами из карбида вольфрама (10 см), а затем, захватив стенку брюшины прямым пинцетом Дюмонта (12 см, 0,2 мм х 0,12 мм) и разрезав стенку вдоль белой линии прямыми ножницами Ванны (8 см).
- Поместите кусочек фенестрированной парафиновой пленки на брюшное отверстие и зафиксируйте пленку с обоих концов микромоскитными кровоостанавливающими щипцами (12,5 см, изогнутыми).
- Обнажите рога матки с помощью ложечкообразного приспособления, чтобы избежать повреждения эмбрионов внутри маточных рогов. Капните несколько капель PBS (37 °C) на рога матки и осмотрите эмбрионы на предмет повреждений или пороков развития внутри маточного мешка.
- Задокументируйте порядок и положение эмбрионов в рогах матки. Осторожно переверните эмбрионы внутрь маточного мешка до тех пор, пока не будет достигнуто желаемое положение для инъекции.
- Введите 1-2 мкл смеси AAV1-Fast-Green, визуально осмотрев место инъекции (например, желудочки мозга) и проникновение красителя под стереомикроскопом.
- Задокументируйте введенные эмбрионы и поместите рога матки с введенными эмбрионами обратно в брюшную полость.
- Капните несколько капель PBS (37 °C) в брюшную полость. Закройте полость, зашив стенку брюшины (используйте полиамидные шовные материалы размера 6-0) и кожу (используйте полиамидные шовные материалы размера 3-0) с помощью москитных кровоостанавливающих щипцов Холстеда (12,5 см, изогнутые). В качестве альтернативы используйте простой прерывистый узор или шов/скобки из нержавеющей стали, чтобы закрыть брюшную полость и кожу.