Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Внутривенное введение терапевтических наночастиц на модели мышиной глиобластомы

507 просмотров

⸱

29 августа 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Kim, B. D., et al. Доставка олигонуклеотидной полезной нагрузки наночастицами в животной модели мультиформной глиобластомы. J. Vis. Exp. (2024)

В этом видео демонстрируется внутривенное введение терапевтических наночастиц мыши-носителю с глиобластомой. Метод обеспечивает адресную доставку через гематоэнцефалический барьер и поддерживает неинвазивную визуализацию для оценки биораспределения наночастиц и терапевтической эффективности при опухолях головного мозга.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

1. Введение MN-anti-miR10b

ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании инъекции делались один раз в неделю в течение 6 недель, начиная с 7 дней после имплантации, но один и тот же протокол может быть использован для различных частот инъекций.

  1. Взвесьте мышь и рассчитайте объем MN (магнитных наночастиц)-анти-miR10b для введения мыши. Дозы MN-anti-miR10b назначаются в концентрации 20 мг Fe (железа)/кг на мышиных моделях GBM (мультиформная глиобластома). Например, мышь массой 20 г получает дозу 80 мкл 5 мг Fe/мл MN-anti-miR10b. Контрольные мыши получают равный объем PBS (фосфатно-солевой буфер), соответствующий этой схеме дозирования.
  2. Приготовьте шприц 28G с дозой MN-anti-miR10b и убедитесь, что в растворе для инъекций нет пузырьков.
  3. Обезболивайте мышь в дозе 2%-4% изофлурана для индукции и 1,5%-2% для поддержания со скоростью потока 1,5 л/мин в индукционной коробке. Переместите мышь к носовому конусу и продолжайте вводить анестезию. Проверьте глубину анестезии и нанесите ветеринарную мазь.
  4. Простерилизуйте хвост салфеткой с 70% изопропанолом и дайте лишнему спирту высохнуть.
  5. Поверните хвост, чтобы расположить боковые хвостовые вены в верхней части хвоста. Затем, нацелившись на вену, введите иглу в хвост и установите вакуум, оттянув поршень назад.
  6. Вводите иглу до тех пор, пока кровь не поступит в шприц, что свидетельствует об успешном поступлении в вену.
  7. Медленно введите MN-anti-miR10b и втяните иглу после полного введения. Надавите на место инъекции марлей до тех пор, пока кровотечение не остановится.
  8. Снимите мышь с носового конуса. Наблюдайте за мышью до полного выздоровления и амбулаторного состояния.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Болюсное введение наночастиц может вызвать респираторный дистресс. Внимательно следите за мышью и немедленно накладывайте легкие компрессии в грудную клетку, если есть признаки респираторного дистресса.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Athymic nude "J:NU" мышиLaboratoryRRID:IMSR_JAX:007850Модель мыши с ослабленным иммунитетом
70% изопропоиловая спиртовая салфеткаCardinalMW-APLМестная антисептическая салфетка для имплантации опухоли и инъекции в хвостовую вену
ИзофлуранCovetrus11695067772Анестезия
Исофруран ВапорайзерSOMNI ScientificVS6002Аппарат для анестезии
Инсулиновый шприц 1CC 29G X 1/2"Becton, Dickinson324704Шприц для инъекции D-люциферина и инъекции наночастиц в хвостовую вену
Jackson

Теги

гематоэнцефалический барьердоставка наночастицолигонуклеотидная нагрузкаинъекция в хвостовую венумагнитные наночастицыанти-микроРНК-10bглиобластома multiforme