Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Внутривенное введение терапевтических наночастиц на модели мышиной глиобластомы

488 просмотров

29 августа 2025 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Kim, B. D., et al. Доставка олигонуклеотидной полезной нагрузки наночастицами в животной модели мультиформной глиобластомы. J. Vis. Exp. (2024)

В этом видео демонстрируется внутривенное введение терапевтических наночастиц мыши-носителю с глиобластомой. Метод обеспечивает адресную доставку через гематоэнцефалический барьер и поддерживает неинвазивную визуализацию для оценки биораспределения наночастиц и терапевтической эффективности при опухолях головного мозга.

Протокол

Все процедуры, связанные с животными моделями, были рассмотрены местным институциональным комитетом по уходу за животными и ветеринарным советом JoVE.

1. Введение MN-anti-miR10b

ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании инъекции делались один раз в неделю в течение 6 недель, начиная с 7 дней после имплантации, но один и тот же протокол может быть использован для различных частот инъекций.

  1. Взвесьте мышь и рассчитайте объем MN (магнитных наночастиц)-анти-miR10b для введения мыши. Дозы MN-anti-miR10b назначаются в концентрации 20 мг Fe (железа)/кг на мышиных моделях GBM (мультиформная глиобластома). Например, мышь массой 20 г получает дозу 80 мкл 5 мг Fe/мл MN-anti-miR10b. Контрольные мыши получают равный объем PBS (фосфатно-солевой буфер), соответствующий этой схеме дозирования.
  2. Приготовьте шприц 28G с дозой MN-anti-miR10b и убедитесь, что в растворе для инъекций нет пузырьков.
  3. Обезболивайте мышь в дозе 2%-4% изофлурана для индукции и 1,5%-2% для поддержания со скоростью потока 1,5 л/мин в индукционной коробке. Переместите мышь к носовому конусу и продолжайте вводить анестезию. Проверьте глубину анестезии и нанесите ветеринарную мазь.
  4. Простерилизуйте хвост салфеткой с 70% изопропанолом и дайте лишнему спирту высохнуть.
  5. Поверните хвост, чтобы расположить боковые хвостовые вены в верхней части хвоста. Затем, нацелившись на вену, введите иглу в хвост и установите вакуум, оттянув поршень назад.
  6. Вводите иглу до тех пор, пока кровь не поступит в шприц, что свидетельствует об успешном поступлении в вену.
  7. Медленно введите MN-anti-miR10b и втяните иглу после полного введения. Надавите на место инъекции марлей до тех пор, пока кровотечение не остановится.
  8. Снимите мышь с носового конуса. Наблюдайте за мышью до полного выздоровления и амбулаторного состояния.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Болюсное введение наночастиц может вызвать респираторный дистресс. Внимательно следите за мышью и немедленно накладывайте легкие компрессии в грудную клетку, если есть признаки респираторного дистресса.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Athymic nude "J:NU" мышиLaboratoryRRID:IMSR_JAX:007850Модель мыши с ослабленным иммунитетом
70% изопропоиловая спиртовая салфеткаCardinalMW-APLМестная антисептическая салфетка для имплантации опухоли и инъекции в хвостовую вену
ИзофлуранCovetrus11695067772Анестезия
Исофруран ВапорайзерSOMNI ScientificVS6002Аппарат для анестезии
Инсулиновый шприц 1CC 29G X 1/2"Becton, Dickinson324704Шприц для инъекции D-люциферина и инъекции наночастиц в хвостовую вену
Jackson

Теги

10bmultiforme