Методическая статья

Анализ кальция Биолюминесценция для функционального анализа Mosquito ( Aedes aegypti) И Tick ( Rhipicephalus MicroPlus) G-белком рецепторы

17.3K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/2732

⸱

20 апреля 2011 г.

 ,  ,  , 
1Department of Entomology, Texas A&M University (TAMU), 2Department of Molecular and Cellular Medicine, Texas A&M University (TAMU)

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол содержит инструкции по клональной-клеточной селекции линии и анализа биолюминесценции кальция для анализа структуры и активности синтезированных членистоногих нейропептидов на их родственные GPCRs. Этот анализ может быть использован для deorphanization рецепторов и структура-активность для исследования отношения синтетический аналог дизайн и пептид / наркотиков привести открытие.

Аннотация

Гормональные рецепторы членистоногих являются потенциальными мишенями для новых пестицидов, так как они регулируют многие важные физиологические и поведенческие процессы. Большинство из них относятся к суперсемейству рецепторов, сопряженных с G-белками (GPCRs). Мы сосредоточились на характеристике кининовых рецепторов членистоногих клещей и комаров. Кинины членистоногих представляют собой многофункциональные нейропептиды с миотропным, диуретическим и нейротрансмиттерным действием. В данной работе описан метод систематического анализа зависимости «структура — активность» кининов насекомых на двух гетерологических системах, экспрессирующих кининовые рецепторы. Мы предоставляем важную информацию, необходимую для разработки биостабильных аналогов кининов, способных нарушать диуретические, миотропные и/или пищеварительные процессы у клещей и комаров.

Кининовые рецепторы южного бычьего клеща Boophilus microplus (Canestrini) и комара Aedes aegypti (Linnaeus) были стабильно экспрессированы в mammalian клеточной линии CHO-K1. Функциональный анализ этих рецепторов проводили с помощью биолюминесцентного планшетного анализа уровня кальция, который измеряет внутриклеточную биолюминесценцию для определения уровня цитоплазматического кальция при воздействии пептидов на данные рекомбинантные клетки. В этом методе используется белок экворин — фотобелок, выделенный из люминесцентных медуз. Мы провели транзиентную трансфекцию плазмиды экворина (mtAEQ/pcDNA1) в клеточные линии со стабильной экспрессией кининовых рецепторов. Затем клетки обрабатывали кофактором целентеразином, который образует комплекс с внутриклеточным экворином. Эта связь разрывается в присутствии кальция, при этом излучается свет, интенсивность которого соответствует концентрации кальция. Поскольку кининовый рецептор передает сигнал через высвобождение внутриклеточного кальция, интенсивность сигнала коррелирует с активностью пептида.

Данный протокол представляет собой синтез нескольких ранее описанных протоколов с внесенными изменениями; в нем содержатся пошаговые инструкции по созданию линий млекопитающих клеток со стабильной экспрессией GPCR с последующим проведением функциональных планшетных анализов (Staubly et al., 2002 и Stables et al., 1997). Используя эту методологию, мы смогли создать стабильные клеточные линии, экспрессирующие кининовые рецепторы комаров и клещей, сравнить активность трех кининов комаров, определить критические аминокислотные позиции для взаимодействия лиганда с рецептором и провести полуавтоматический скрининг библиотеки пептидов. Поскольку кинины насекомых подвержены быстрой ферментативной деградации эндогенными пептидазами, их использование в качестве инструментов для борьбы с вредителями или в эндокринологических исследованиях сильно ограничено. Поэтому мы также протестировали аналоги кинина, содержащие амино-изомасляную кислоту (Aib), для повышения их активности и биостабильности. Этот устойчивый к пептидазам аналог является важным перспективным соединением для разработки биостабильных аналогов кининов насекомых и может помочь в создании стратегий борьбы с членистоногими на основе нейропептидов.

Протокол

1. Создание стабильных клеточных линий

  1. Клонировать ваши GPCR интересов и вставьте его в вектор экспрессии включающий 5 'Козак консенсусной последовательности (GCCA / GCCATGG) вокруг стартовый кодон для оптимального связывания рибосом в системе млекопитающих (Козак, 1986). Здесь мы используем плазмиды pcDNA3.1/Bm-KR за тик кининовой рецепторов, и плазмиды pcDNA3.1/Aedae-KR для комаров рецепторов кининовой (Holmes и др., 2003;. Pietrantonio и др., 2005.). PcDNA3.1 (-) вектор кодирует ампициллину отбора у бактерий и неомицин (G418) сопротивления для выбора в клетках млекопитающих.
  2. Расти СНО-К1 пустых ячеек (без плазмид) (АТСС, Манассас, Вирджиния, США) или другую нужную линию клеток в Т-25 колбе (BD Falcon) при 37 ° С в 5% СО 2 инкубатора увлажненный (Holmes и др. ., 2003). Все дальнейшие инкубации должно быть сделано в этих условиях, если не указано иное. Поддерживать пустых ячеек в ростовой среде (F12K среде с 10% эмбриональной телячьей сыворотки) с 1X противогрибковым антибиотикам (Invitrogen, Калифорния).
  3. Чтобы разделить клетки, разогреть все решения до 37 ° C. Удалить старые среды в Т-25 колбы и промыть 5 мл PBS, а затем удалить PBS. Для trypsinize клетки, добавьте 2 мл PBS-Трипсин-EDTA (34 мл PBS, 2 мл 7,5% бикарбоната натрия, 4 мл 10X трипсина-EDTA) в течение 2 мин. Добавьте 3 мл среды и аспирации среду вверх и вниз, смешать клетки. Передача среды с клетками в конической трубе и центрифуги в течение 2 мин при температуре ~ 200-300 г (1.000 оборотов в минуту). Удалите супернатант и вновь приостановить клетки в 5 мл среды. Развести ресуспендировали клетки концентрации 1:05 или 1:10 свежей средой и передачи 5 мл в новые Т-25 колбу.
  4. После клетки растут здоровыми (около 2-3 дней), семян CHO-K1 клеток в Т-25 колб культуре ткани и выращивать их на ночь в ростовой среде без антибиотиков, пока они примерно на 30% сливной (примерно 18 часов). Степень слияния может быть определена путем наблюдения клеток под перевернутой флуоресцентной микроскопии.
  5. Подготовка следующей смеси для каждого образца:
    1. Комбинат 1-2 мкг ДНК (например: использование 4μl из 265μg/μl pcDNA3.1/Aedae-KR) с 100 мкл Opti-MEM я уменьшил сыворотки Средняя (Invitrogen).
    2. Смешать 6 мкл реагента липофектина (InvitrogenTM) в 100 мкл F12K бессывороточной среде, что делает соотношении 1:1 из липофектина с ДНК. Инкубируйте при комнатной температуре в течение 30-45 мин.
    Аккуратно перемешайте решений от 1.5.1 с 1.5.2 по каплям моды (общий объем = 200 мкл). Дайте постоять при комнатной температуре в течение 10-15 мин.
  6. Удалите старый средний рост из клеток и промыть клетки с 5 мл F12K бессывороточной среде, а затем удалить F12K бессывороточной среды. В 15 мл трубки, осторожно перемешать трансфекции смесь в 1,8 мл свежей среды F12K в каплям моды. Затем, промывают клетки с шага 1.5 с PBS и добавить это новое решение для трансфекции клеток. Инкубируйте в течение 18 часов.
  7. Изменение средних F12K средний плюс 10% эмбриональной телячьей сыворотки без антибиотиков и инкубировать в течение ночи. Разделение на две клетки Т-25 колб с F12K средний плюс 10% эмбриональной телячьей сыворотки без антибиотиков еще на 18 часов (для разделения клетки см. шаг 1.3).
  8. Замените среду с селективной средой (F12K средний плюс 10% эмбриональной телячьей сыворотки с 800μg/ml генетицину, Invitrogen). Культуры клеток с использованием селективной среде в течение 3-4 недель. Со временем это будет выбрать для клеток, которые стабильно включены плазмиды в их геномной ДНК. Дальнейшая поддержка клеток с использованием обслуживание среды (F12K средний плюс 10% эмбриональной телячьей сыворотки с 400μg/ml генетицину). Периодически замораживания клеточных линий с соотношением 1:1 замораживания средств массовой информации (селективной среде с 20% ДМСО), чтобы предотвратить потери в случае неожиданного загрязнения.
  9. Выбор клональных клеточных линий: в качестве первого шага, trypsinize и центрифуги клетки шагом 1,8 с обеспечением среде, как в шаге 1.3. Повторное приостановить клеток в 5 средних обслуживание мл, принимать по 0,5 мл ячейки приостановить и добавить 4,5 мл свежей среды, техническое обслуживание, чтобы сделать 10-кратным разбавлением. Трансфер 10-кратным разбавлением на 12 лунки 96-луночного планшета, добавив 100 мкл в каждую лунку, чтобы выбрать для одиночных клеток.
  10. Продолжайте делать 10x серийные разведения этих клеток для теоретического окончательное приостановление одной клетки на 100 мкл (как правило, конечное разведение будет находиться в диапазоне от 10 -11 до 10 -19; общее количество 10x серийные разведения составляет ~ 19) . Сразу же после каждого разбавления, передача 100 мкл разведения на 12 скважинах 96 ячейках. После 18 часов инкубации, соблюдать 96-луночных под перевернутой света флуоресценции или скважин микроскопом и отметить, что по всей видимости, содержать только одну ячейку или содержать две клетки, которые, очевидно, разделились из одной единственной клетки. Продолжайте наблюдение каждый день, и изменение среды каждые три дня.
  11. Когда скважин на 80% confluЛОР (около недели), промыть отмечен скважин с 200 мкл PBS и trypsinize их с 100 мкл PBS-трипсина-EDTA решение. Передача клетки от каждого отмечен также в одну лунку 6-луночный планшет с 1 средний обслуживание мл. Вырастить эти клетки в течение 3 дней, после чего передача клеток в отдельных T25 колбу. Проверьте эти клетки, используя анализ кальция биолюминесценции с агонистом пептидов (см. раздел 2).
  12. Выберите один из клеточной линии шагом 1,11 с самым высоким ответ в пластине анализа биолюминесценции кальция и выполнять во второй раз одну ячейку выбор следующие шаги 1.9-1.11. Периодически замораживания клеточных линий.
  13. Из вторичного выделения, описанных в пункте 1.12, выбрать 2-3 клеточные линии с высоким ответ в пластине анализа биолюминесценции кальция и поддерживать их в культуре для дальнейших анализов биолюминесценции кальция пластины. Следите за проход чисел. Время от времени, замораживать клеточные линии с раннего проходы так, что вы всегда можете вернуться к ним, если клеточных линий с более проходов прекратить выполнение последовательно.

2. Пластины кальция биолюминесценции анализа

  1. Лигировать репортер гена в вектор экспрессии. Здесь мы использовали aequorin плазмиды mtAEQ/pcDNA1 (подарок от доктора. CJP Grimmelikhuijzen и Майкл Уильямсон, Копенгагенский университет, Дания). Преобразование плазмиды в E. кишечной клетки MC1061/PS (Invitrogen) и очищать их с помощью QIAprep спина miniprep комплект (Qiagen Inc.) На заключительном этапе вымывается плазмиду с Tris буфера без ЭДТА, а не воды.
  2. Расти клеточных линиях, начиная с шага 1,13 выразить желаемое рецепторов в поддержании среды. Когда клетки на 90% сливающиеся, trypsinize, центрифуги, а затем снова приостановить клетки в 5 мл обслуживания среды как в шаге 1.3. Развести клетки (около 10 раз с сохранением среды) и подсчитать количество клеток с сотовыми счетчик (Bright-Line Hemacytometer) под микроскопом. Настройте номер ячейки примерно 2 х 10 5 клеток / мл (в среднем 20 ячеек в одном из 9 квадратов показали в Hemacytometer). Семенной 2 мл разбавленной клеток в средствах массовой информации в каждую лунку шесть хорошо пластины. Инкубируйте в течение 24 часов (клетки должны составить около 60% слияния после инкубации).
  3. Изменение информации в 6 пластины скважин OPTI-MEM среде. Для каждой скважины, смешайте 96 мкл OPTI-MEM с 4 мкл FuGENE 6 Трансфекция реагента (Roche Biochemicals) в микроцентрифужную трубку и пусть сидят при комнатной температуре в течение 5 мин. Добавить 1 мкг aequorin / pcDNA 1 плазмида ДНК в каждой пробирке, а затем аккуратно встряхнуть образца в течение 1 мин, инкубировать при комнатной температуре в течение 15-20 мин. Добавить каждой смеси в каждую лунку в моде в то время как по каплям осторожно встряхивая и пластины. Инкубируйте пластин в течение 6 часов и изменение средних F12K среде, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки без антибиотика.
  4. После инкубации клеток в шесть хорошо пластине в течение 24 часов, trypsinize, центрифугу и вновь приостановить клетки шагом 1.3. Граф номер ячейки до 400000 клеток / мл, как шаг 2,1 и передачи 100 мкл (всего 40000 cells/100 мкл) в каждую лунку 96-луночного белой тонкой нижней планшет (Costar 3610). Инкубируйте в течение еще 24 часов, пока около 80% слияния ячейки. Это оптимальная концентрация клеток для биолюминесценции анализа.
  5. Подготовка 90μl/well из кальция, свободных средств массовой информации DMEM (Invitrogen), содержащий 5 мкМ coelenterazine (Invitrogen) в темноте (coelenterazine является светочувствительным). Возьмите пластину с 2,4, удалите старые медиа и добавьте эту 90μl в каждую лунку. Инкубируйте пластин в течение 3 часов в темноте при 37 ° С и 5% CO 2, после чего клетки пластины готовы к тестированию.

3. Эксплуатация прибора и анализа данных

  1. Каждый читатель биолюминесценции пластина отличается. Мы выполняем наши методом с использованием NOVOstar (BMG Labtechnologies) ридер в bioluminensence режиме. Если вы используете другой инструмент, необходимо адаптировать протокол.
  2. Чистки ридер насосов (или премьер-НАСОСЫ) перед использованием. Выключите свет в комнате, прежде чем положить пластинку на пластине держателя. Как только пластина держателя закрыл, включить свет.
  3. Солюбилизации пептидов (в 1,5 мл Eppendorf трубки) в кальция, свободных средств массовой информации DMEM. Установить "Аспирируйте Глубина» и «определение местоположения» пептида раствор перед использованием. Вызов ячейки с 10 мкл (10x) различной концентрации пептидов (FFFSWG-NH2, Aedes-К1-3, или другой желаемой пептид) и сразу же начать запись светового излучения. Мы создали инструмент для записи светового излучения (465 нм) для каждой скважины каждые 2 секунды в течение всего времени 50 секунд.
  4. Обязательно укажите положительного контроля, такие как активный аналоговый (аналоговый FFFSWGa была использована, Taneja-Bageshwar и соавт., 2009) и отрицательного контроля, такие как вектор только трансфекции клеток. Отрицательного контроля необходимо во время анализа данных, чтобы установить базовые порога (см. представитель результатов).Не связаны, неактивный пептид также может быть добавлен в качестве отрицательного контроля.
  5. После запуска завершен, промывайте инструмент насоса (или премьер-насосы), то место вашего следующего образца пептида. Сохраните данные и промыть насос снова.
  6. Обработка данных: Передача данных светового излучения из каждой лунки в лист Microsoft Excel данных.
  7. Вставить данные из Excel в Призма программного обеспечения от 4,0 GraphPad Software Inc (Сан-Диего, Калифорния, США). Различных концентрациях пептида по оси Х и биолюминесценции единиц Y-оси. Для нормализации данных, участок лог-ответ кривой. Выберите нелинейной регрессии кривая соответствует анализа (сигмоидального доза-реакция уравнения с переменным наклоном), чтобы получить реакции на концентрацию кривые для каждого пептида. Программа участки значения, в конце концов и дает ЕС 50.
  8. Каждый эксперимент следует повторить три раза для анализа данных.

4. Представитель Результаты:

При выраженных в СНО-К1 клетки, комаров Aedes aegypti кининовой рецептор вел себя как multiligand рецепторов и функционально ответил на таких низких концентрациях, как 1 нМ из трех endogenours Aedes кинины, Aedae кинины 1-3, испытаны отдельно использованием пластин кальцием биолюминесценции анализа . На рисунке 1 показано, что ранг порядке потенции полученный Aedae-К-3> Aedae-К-2> Aedae-K-1, основанного на соответствующих ЭК 50 значений Aedae-К-3, 16,04 нм; Aedae-K- 2, 26,6 нМ и Aedae-К-1, 48,85 нм, что было статистически значимо отличается (P <0,05) (Pietrantonio и соавт., 2005).

Мы также использовали этот анализ, чтобы определить, какие кининовой остатков имеют решающее значение для кининовой пептид-рецепторного взаимодействия. Пептиды насекомых кининовой доля С-концевой пентапептида, который представляет минимальную последовательность, необходимые для биологической активности, также известный как ядро. В таблице 1, кининовой аналогов основных пептида были синтезированы, как аланин серии замена основных кининовой пентапептида FFSWGa и проверены пластины кальцием биолюминесценции анализа (Taneja-Bageshwar и соавт., 2006). Мы обнаружили, что аминокислоты Phe 1 и Trp 4 имеют существенное значение для деятельности насекомых кинины для обоих рецепторов.

Анализ также может быть использован для тестирования пептидов предназначен для расширения биостойкость. Таблица 2 показывает, предназначенные кининовой аналогов содержащие аминокислоты изомасляной кислоты (AIB) проверено на тик рекомбинантный рецептор кининовой и Рисунок 2 показывает активность сравнение шести альфа-амино изомасляной аналогов кислоты на рецепторы тик кининовой выражения СНО-К1 клеточной линии от кальция биолюминесценции пластины анализа (Taneja-Bageshwar и соавт., 2009). Гексапептид аналоговых FFFSWGa добавляется для положительного контроля для активности рецепторов. Аналоговые FF [Айб] WGA привел более активно, чем это гексапептид аналогового управления. Аналоговый с двумя заменами aminoisobutyric кислота, [Айб] FF [Айб] WGA, был самым мощным из двойной замены аналогов испытания (табл. 2 и рис 2).

Дополнительные примеры того, как этот анализ был и может быть применен видеть Нахмана и Pietantonio (2010), Нахмана и соавт. (2009), Taneja-Bageshwar и соавт. (2008a), а Taneja-Bageshwar и соавт. (2008b).

Рисунок 1
Рисунок 1. Оценка Aedes кинины эффективной концентрации (ЕС 50) на СНО-К1 E10 клеток кальцием биолюминесценции пластины теста. Оси ординат в реакции на концентрацию кривых была получена из биолюминесценции единиц выражается в процентах от максимальной реакция, наблюдаемая для каждого пептида. Данные точки представляют собой в среднем по шесть повторяет, полученные в ходе трех независимых экспериментах. Столбики показывают стандартную ошибку. () Оценка Aedae-K1 ЕС 50 = 48 нМ. (В) Оценка Aedae-K2 ЕС 50 = 26 нМ. (C) Оценка Aedae-K3 ЕС 50 = 16 нМ. ЭК 50 Aedae-K3 <ЭК 50 Aedae-K2 <ЭК 50 Aedae-К1, р <0,05. Статистический анализ и графики были с программным обеспечением GraphPad Призма 4.0.

Рисунок 2
Рисунок 2. Активность сравнение шести альфа-амино изомасляной аналогов кислоты на тик кининовой рецептор выразив СНО-К1 клеточной линии на пластине анализа биолюминесценции кальция. Оси ординат представляет процент максимальной единицы биолюминесценции для каждого аналогового выраженное в процентах биолюминесценции наблюдается при концентрации по сравнению с максимальным реакция, наблюдаемая среди всех протестированных концентраций для каждого аналога. Статистический анализ и графики были выполнены с GraphPad программного обеспечения Призма 4.0.

Тик линии клеточного рецептора Mosquito рецепторов клеточной линии
Пептиды ЭК 50 (нм) Максимальный отклик биолюминесценции на 1 мМ ЭК 50 (нм) Максимальный отклик биолюминесценции на 1 мМ
AFSWGa Я Я Я Я
FASWGa 586 5600 Н. Д. 400
FFAWGa 64 12800 621 3050
FFSAGa Я Я Я Я
FFSWAa 417 10600 2800 1830
FFSWGa 590 10800 Н. Д. 525
FSWGa Я Я Я Я
FFSWa Я Я Я Я
FFSWG-OH Я Я Я Я
FFFSWGa 259 13000 562 10000
FF [Айб] WGA 29 12700 445 9300

Таблица 1. Расчетное потенции (ЕС 50) и максимальный ответ биолюминесценции всех пептидов протестирован на клещей и комаров рецепторов трансфекции клеточных линий *.

* ЕС 50 оценки концентрации, необходимой, чтобы вызвать полумаксимальной ответ. Я: не активизированы, если биолюминесценции ответа составляет менее 300 единиц (уровень вектор-только трансфекции клеток). : Положение, когда соответствующие остатки в пептидных FFSWGa был заменен аланина. Н. Д.: аналоговый была протестирована, но либо не очень активны или не активны в нижней molarities, таким образом, EC50 не может быть определен.

K-Айб-1 [Айб] FF [Айб] WGA
K-Айб-2 [Α MeF] FF [Айб] WGA
K-Айб-3 Ас-R [Айб] FF [Айб] WGA
K-Айб-4 Ас-R [β3F] FF [Айб] WGA
K-Айб-5 [Айб] RFF [Айб] WGA
K-Айб-6 [AIB-AIB-AIB-Айб] RFF [Айб] WGA

Таблица 2. Кининовой аналогов (К), содержащего аминокислоты изомасляной кислоты (AIB) проверено на тик рекомбинантный кининовой рецепторов. Ac: ацетил; α мне: α метил-фенилаланин; β3F: β3-фенилаланин;: амида.

Обсуждение

Мы были в состоянии выполнять функциональные характеристики первого рецептор нейропептида обнаружил из паукообразных (клещи, клещи и пауки), рецептор тик кининовой, с помощью этого протокола. Этот метод имеет три основных приложений. Во-первых, методика может быть применена для рецепторов deorphanization путем измерений лиганд деятельности. Во-вторых, анализ может решить лиганд-рецепторных структур и активности (SAR). В-третьих, методы могут быть использованы в лекарственных препаратах. Кроме того, этот протокол может быть использован для изучения активности агонистов или антагонистов практически на любой GPCR. Мы начинаем адаптировать этот протокол для скрининга малых библиотек. Линия клеток мы использовали не выражает вездесущий белка G G 16. Нам не нужно, потому что членистоногих кининовой рецепторов сигнал через Gq белка и внутриклеточный каскад кальция и они сохраняют эту сигнализацию свойства в клетках млекопитающих, как показано здесь.

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Др. CJP Grimmelikhuijzen и Майкл Уильямсон из Университета Копенгагена (Дания) ценятся за предоставление aequorin плазмиды. Наш сотрудник, доктор Рональд Дж. Нахмана из ARS-USDA (штат Техас, США), признается для синтеза пептидов и за предоставление читателю NOVOstar пластины.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Название реагента Компания Номер в каталоге Комментарии (необязательно)
DMEM Invitrogen ABCD1234
СНО-К1 клетки АТСС CCL-61 Манассас, Вирджиния, США
F12K среда Invitrogen 21127
Эмбриональной телячьей сыворотки Sigma-Aldrich F0643
Трипсин-EDTA (10x) Invitrogen 15400
Антибиотик-противогрибковым Invitrogen 15240
Opti-MEM я Уменьшение среднего сыворотки Invitrogen 31985
Липофектина реагент Invitrogen 18292-011
Генетицину Invitrogen 10131035
MC1061/P3 Ultracomp Invitrogen C663-03
QIAprep спина miniprep комплект Qiagen ООО 19064
FuGENE 6 Трансфекция реагента Roche 11 814 443 001
96-луночного белой тонкой пластины microtitere дно Costar 3610
бескальциевой DMEM СМИ Invitrogen 21068
Coelenterazine Invitrogen C-2944
Яркий-Line Hemacytometer Хауссер Научные Horsham, PA
NOVOstar BMG Labtechnologies
Призма программного обеспечения 4,0 GraphPad программного обеспечения ООО Сан - Диего, Калифорния, США
Т-25 и Т-75 Колбы BD Сокол 353014 и 353135

Ссылки

  1. Kozak, M. An analysis of 5'-noncoding sequences from 699 vertebrate messenger RNAs. Nucleic Acids Research. 15, 8125-8148 (1987).
  2. Nachman, R., Pietrantonio, P. V. Interaction of mimetic analogs of insect kinin neuropeptides with arthropod receptors. Neuropeptide systems as Targets for Parasite and Pest Control. Geary, T. , Landes Bioscience. Madamme Curie Library. (2010).
  3. Nachman, R. J., Pietrantonio, P. V., Coast, G. M. Towards the development of novel pest management agents based upon insect kinin neuropeptide analogs. Annals of the New York Academy of Sciences. , 1163-11251 (2009).
  4. Taneja-Bageshwar, S., Strey, A., Isaac, R. E., Coast, G. M., Zubrzak, P., Pietrantonio, P. V., Nachman, R. J. Biostable agonists that match and/or exceed the activity of insect kinins on recombinant arthropod GPCRs. General and Comparative Endocrinology. 162, 122-128 (2009).
  5. Taneja-Bageshwar, S., Strey, A., Kaczmarek, K., Zabrocki, J., Pietrantonio, P. V., Nachman, R. J. Comparison of insect kinin analogs with cis-peptide bond, type VI-turn motifs identifies optimal stereochemistry for interaction with a recombinant arthropod kinin receptor from the southern cattle tick Boophilus microplus. Peptides. 29, 295-301 Forthcoming.
  6. Taneja-Bageshwar, S., Strey, A., Zubrzak, P., Williams, H., Reyes-Rangel, G., Juaristi, E., Pietrantonio, P. V., Nachman, R. J. Identification of selective and non-selective, biostable beta-amino acid agonists of recombinant insect kinin receptors from the southern cattle tick Boophilus microplus and mosquito Aedes aegypti. Peptides. 29, 302-309 Forthcoming.
  7. Taneja-Bageshwar, S., Strey, A., Zubrzak, P., Pietrantonio, P. V., Nachman, R. J. Comparative structure-activity analysis of insect kinin core analogs on recombinant kinin receptors drom southern cattle tick Boophilus microplus (Acari: Ixodidae) and mosquito Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 62, 128-140 (2006).
  8. Pietrantonio, P. V., Jagge, C., Taneja-Bageshwar, S., Nachman, R. J., Barhoumi, R. The mosquito Aedes aegypti (L.) leucokinin receptor is a multiligand receptor for the three Aedes kinins. Insect Molecular Biology. 14, 55-67 (2005).
  9. Holmes, S. P., Barhoumi, R., Nachman, R. J., Pietrantonio, P. V. Functional analysis of a G protein-coupled receptor from the Southern cattle tick Boophilus microplus (Acari: Ixodidae) identifies it as the first arthropod myokinin receptor. Insect Molecular Biology. 12, 27-38 (2003).
  10. Staubli, F., Jorgensen, T. J. D., Cazzamali, G., Williamson, M., Lenz, C., Sondergaard, L., Roepstorff, P., Grimmelikhuijzen, C. J. P. Molecular identification of the insect adipokinetic hormone receptors. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 99, 3446-3451 (2002).
  11. Stables, J., Green, A., Marshall, F., Fraser, N., Knight, E., Sautel, M., Milligan, G., Lee, M., Rees, S. A bioluminescent assay for agonist activity at potentially any G-protein coupled receptor. Analytical Biochemistry. 252, 115-126 (1997).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

GPCRCHO K1

Похожие статьи