Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Анализ органоидов предстательной железы: метод культивирования ex vivo на основе матричного геля для изучения дифференцировочной способности эпителиальных клеток предстательной железы

3.2K просмотров

⸱

30 апреля 2023 г.

В этой статье

Аннотация

Источник: Crowell, P. D. et al. Оценка дифференцировочной способности эпителиальных клеток предстательной железы мыши с использованием органоидной культуры. J. vis. Exp. (2019)

В этом видео мы демонстрируем культивирование изолированных эпителиальных клеток предстательной железы мыши с использованием метода культивирования на основе матрицы гелеобразного кольца. Этот подход может предоставить дополнительную информацию о дифференцировочной способности эпителиальных клеток предстательной железы к формированию трехмерных железистых структур в ответ на генетические или фармакологические манипуляции.

Протокол

1. Осаждение отсортированных клеток эпителия предстательной железы в первичную культуру органоидов мыши — ВРЕМЯ: 2-3 ч (за исключением подготовки пластин с поли-HEMA-покрытием)

ПРИМЕЧАНИЕ: Пластины покрыты Poly-HEMA для предотвращения образования 2D-колонии на поверхности лунки под матричным гелем. Приготовьте планшеты с покрытием Poly-HEMA за 1 день до осаждения отсортированных клеток базального или люминального эпителия предстательной железы в культуру органоидов мыши. Разморозьте 1 мл аликвот матричного геля с пониженным фактором роста, далее именуемого матричным гелем, на льду за 2 ч до выполнения шага 1.1. Y-27632 (ингибитор ROCK) следует добавлять в органоидные среды мышей непосредственно перед этапом 1.1. Выполните на льду шаги 1.1-1.8.

  1. Гранулируйте клетки в пробирках с круглым дном объемом 5 мл центрифугированием при 800 x g в течение 5 мин при 4 °C и аспирируйте надосадочную жидкость.
  2. Промойте клеточную гранулу в 500 мкл мышиной органоидной среды (табл. 1).
  3. Гранулируйте клетки центрифугированием при 800 x g в течение 5 минут при 4 °C и отсасывайте надосадочную жидкость.
  4. Ресуспендируется в органоидных средах мыши при плотности клеток 1000 клеток/мкл.
  5. Для приготовления мастер-смесей смешайте эпителиальные клетки, взвешенные в органоидной среде мыши, с матричным гелем для получения окончательной смеси, содержащей 25% клеток/среды и 75% матриксного геля. Базальные клетки обычно имеют концентрацию 100-2000 клеток/80 μл, тогда как люминальные клетки обычно имеют концентрацию 2000-10000 клеток/80 μл. Плотность покрытых ячеек варьируется в зависимости от предполагаемого дня сбора материала и желаемого последующего применения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Охладите пробирку соответствующего размера для ожидаемого объема мастер-микса за 5 минут до подготовки мастер-микса. Чтобы матричный гель не затвердел во время работы, крайне важно охладить наконечник пипетки, пипетируя матричный гель 3-4 раза перед переносом его в новую пробирку.
  6. Добавьте 80 мкл матричной смеси геля и клеток на лунку 24-луночного планшета. Рекомендуется пипетировать каплю на нижнюю половину стенки лунки, избегая при этом прямого контакта с покрытием Poly-HEMA. После добавления матричного геля поверните пластину, чтобы смесь матричного геля и клеток образовала кольцо вокруг края лунки.
  7. Поместите 24-луночный планшет в инкубатор с температурой 37 °C 5% CO2 правой стороной вверх на 10 минут, чтобы матричный гель частично затвердел.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Начните нагревать органоидную среду мыши при 37 °C сразу после помещения 24-луночного планшета в инкубатор.
  8. После инкубации в течение 10 минут переверните 24-луночный планшет вверх дном и инкубируйте еще 50 минут, чтобы матричный гель полностью затвердел.
  9. Добавьте 350 мкл предварительно подогретой органоидной среды мыши по каплям в центр каждой лунки.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для сохранения целостности матричного геля крайне важно избегать матричного гелевого кольца при добавлении среды.
  10. После добавления среды верните 24-луночный планшет в инкубатор с 5%CO2 при температуре 37 °C.

2. Пополнение органоидных сред мыши — ВРЕМЯ: 10-15 мин на 24-луночный планшет

ПРИМЕЧАНИЕ: Существующие среды следует заменять на свежие каждые 48 часов. Перед каждой сменой среды предварительно прогревайте органоидные среды мыши. Не стоит добавлять ингибитор ROCK в среды, используемые для восполнения.

  1. Наклоните 24-луночный планшет под углом 45° и аккуратно удалите существующую среду из центра каждой лунки с помощью пипетки P1000, избегая матричного гелевого кольца.
  2. Добавьте 350 мкл предварительно подогретой органоидной среды мыши, как показано в шаге 1.9. Рекомендуется добавлять больший объем среды (до 1 мл) к органоидам, культивируемым дольше 5 дней, чтобы предотвратить быстрое истощение ключевых питательных веществ и факторов роста.

Таблица 1: Инструкция по приготовлению мышиной органоидной среды

компонент

концентрация

В-271х (разбавить из 50х концентрата)
ГлутаМАКС1х (разбавить из 100х концентрата)
N-ацетил-L-цистеин1,25 мМ
Нормоцин50 мкг/мл
Рекомбинантный человеческий EGF, не содержащий животных50 нг/мл
Рекомбинантный человеческий ноггин100 нг/мл
R-спондин 1-кондиционированная среда10% кондиционированная среда
А83-01200 нМ
ДГТ1 нМ
Y-27632 дигидрохлорид (ингибитор ROCK)10 μМ
Усовершенствованный DMEM/F-12Базовые носители
R-спондин 1-кондиционированная среда генерируется, как описано в Drost et al. После добавления всех компонентов, фильтр стерилизует мышиную органоидную среду с помощью фильтра 0,22 мкм. Ингибитор ROCK добавляется только во время создания культуры и прохождения органоидов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Конфликт интересов не декларируется.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Фетальная бычья сыворотка (FBS) сигма Ф8667
Добавка B-27 (50x), без сыворотки Thermo Fisher Scientific 17504044
Усовершенствованный DMEM/F-12 Thermo Fisher Scientific 12634010
μ-Тарелка 35 мм, высокая Там же81156
Мембранная матрица Matrigel GFR КорнингКБ-40230С
Пенициллин-стрептомицин (10 000 ЕД/мл) Thermo Fisher Scientific Тел.: 15-140-122
Поли(2-гидроксиэтилметакрилат) (Поли-ГЕМА) сигма П3932-25Г
Y-27632 дигидрохлорид (ингибитор ROCK) Селлек Кемикал С1049-50МГ
А83-01 Токрис 2939
(DiHydro)тестостерон (5αАндростан-17β-ол-3-он) сигма А-8380
ГлутаМАКСThermo Fisher Scientific 35050061
Нормоцин Thermo Fisher Scientific АНТ-НР-1
Рекомбинантный человеческий EGF, не содержащий животныхПепроТех АФ-100-15
Рекомбинантный человеческий ноггинПепроТех 120-10С
RPMI 1640 Средний, HEPES (cs of 10)Thermo Fisher Scientific22400105
Остановка ингибитора фосфатазыThermo Fisher Scientific78428
Полный коктейль ингибиторов протеазысигма 11836145001
Тритон Х-100сигмаХ100-5МЛ
Звуковой ДисмембраторThermo Fisher ScientificФБ120
г.

Больше статей

Трехмерные железистые структурыбазальные эпителиальные клеткилюминальные эпителиальные клеткипланшет с клеточным репеллентомсреда для выращивания органоидов мышистромально-васкулярная фракция