1. Извлечение белка лизата из органоидов предстательной железы для вестерн-блоттинга — ВРЕМЯ: 2,5-4 ч
ПРИМЕЧАНИЕ: Перед сбором органоидов для экстракции белкового лизата, подготовьте и предварительно подогрейте среды, содержащие рассеивание (Таблица 1).
- Удалите среду из каждой лунки, наклонив 24-луночный планшет под углом 45° и аккуратно удалив существующую среду из центра каждой лунки с помощью пипетки P1000, избегая матричного гелевого кольца.
- Для сбора органоидов повторно продуйте матричный гель, пипетируя 1 мл дезпазосодержащей среды непосредственно на матричное гелевое кольцо до тех пор, пока все кольцо не будет смещено, и перенесите в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл.
ПРИМЕЧАНИЕ: Крайне важно избегать прямого контакта с лунками с покрытием Poly-HEMA. Прямой контакт может привести к загрязнению собранного материала Poly-HEMA, что может негативно сказаться на выживаемости клеток.
- Поместите микроцентрифугу объемом 1,5 мл в инкубатор с 5%CO2 при температуре 37 °C на срок от 30 минут до 1 часа, чтобы обеспечить полное разложение матричного геля путем диспажа.
- Измельчите органоиды центрифугированием при давлении 800 x g в течение 5 минут при RT и удалите надосадочную жидкость с помощью микропипетки.
- Добавьте фосфатно-солевой буфер (PBS) в органоидную гранулу и осторожно взбейте ее.
ПРИМЕЧАНИЕ: Недостаточная ресуспендия органоидной гранулы может привести к загрязнению органоидного материала остаточными диспазами или матричным гелем.
- Гранулируйте органоиды центрифугированием при 800 x g в течение 5 минут при RT и удалите надосадочную жидкость с помощью микропипетки.
- Быстро заморозьте гранулы органоидов, поместив каждую пробирку в раствор, содержащий сухой лед и метанол. Храните пробирку (пробирки) до будущего использования при температуре -80 °C. В качестве альтернативы извлеките лизат белка сразу после шага 1.6.
- Ресуспендируйте гранулы органоидов в 100 мкл буфера для лизиса белка (табл. 1) на 10 мкл объема упакованной клетки. Проведите по экрану, чтобы подтвердить.
ПРИМЕЧАНИЕ: При возобновлении работы после быстрой заморозки убедитесь, что буфер для лизиса белка размораживается, прежде чем удалять образцы с температуры -80 °C, так как буфер для лизиса должен быть немедленно добавлен в образцы для предотвращения активности фосфатазы и протеазы.
- Инкубируйте образцы в буфере для лизиса белка на льду не менее 45 мин.
ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется проводить ультразвуковую обработку перед инкубацией на льду для повышения эффективности восстановления ядерного белка; Тем не менее, ультразвук не требуется. Если ультразвуковая обработка не проводится, перейдите к шагу 1.10.
- Для обработки ультразвуком погрузите трубки во влажный лед и аккуратно приложите наконечник звукового дисмембратора к микроцентрифужной трубке. Ультразвуковая обработка в течение 40 с на частоте 20 кГц.
- Приступайте к вестерн-блоттингу, следуя установленным протоколам.
Таблица 1: Инструкция по приготовлению ключевых растворов
| Рецепты |
| Диспазсодержащие среды | 1 мг/мл диспаза + 10 мкМ ингибитор ROCK в усовершенствованном DMEM F12. Фильтр простерилизовать с помощью фильтра 0,22 мкм. |
| Диссоциативные медиа | 10% FBS + 1x Пенициллин-стрептомицин в RPMI 1640. Фильтр простерилизовать с помощью фильтра 0,22 мкм. |
| Буфер для лизиса белка | RIPA буфер + ингибиторы фосфатазы + ингибиторы протеазы |
| Решение для блокировки | 10% FBS в PBS с 0,2% Triton X-100 |